La cartographie du site de liaison d'un aptamère sur ATP utilisant MicroScale thermophorèse

Summary

La thermophorèse à l’échelle microscopique (MST) est une technologie sensible pour caractériser les interactions aptamère-cible. Ce manuscrit décrit un protocole MST pour caractériser les interactions aptamère-petites molécules.

Abstract

La caractérisation des interactions moléculaires en termes de paramètres de liaison de base tels que l’affinité de liaison, la stœchiométrie et la thermodynamique est une étape essentielle en sciences fondamentales et appliquées. La thermophorèse à l’échelle microscopique (MST) est une méthode biophysique sensible permettant d’obtenir ces informations importantes. S’appuyant sur un effet physique appelé thermophorèse, qui décrit le mouvement des molécules à travers des gradients de température, cette technologie permet la détermination rapide et précise des paramètres de liaison en solution et permet le libre choix des conditions tampons (du tampon aux lysats/sérums). La MST utilise le fait qu’une molécule non liée présente un mouvement thermophorétique différent de celui d’une molécule qui est en complexe avec un partenaire de liaison. Le mouvement thermophorétique est altéré au moment de l’interaction moléculaire en raison des changements de taille, de charge et de coquille d’hydratation. En comparant les profils de mouvement de différents rapports moléculaires des deux partenaires de liaison, des informations quantitatives telles que l’affinité de liaison (pM à mM) peuvent être déterminées. Même les interactions difficiles entre des molécules de petite taille, telles que les aptamères et les petits composés, peuvent être étudiées par MST. En utilisant l’interaction modèle bien étudiée entre l’aptamère d’ADN DH25.42 et l’ATP, ce manuscrit fournit un protocole pour caractériser les interactions aptamère-petites molécules. Cette étude démontre que la MST est très sensible et permet de cartographier le site de liaison de l’aptamère de l’ADN de 7,9 kDa à l’adénine de l’ATP.

Introduction

L'interaction entre les molécules est la base de la nature. Par conséquent, les scientifiques dans de nombreux domaines de la recherche fondamentale et appliquée tentent de comprendre les principes fondamentaux des interactions moléculaires de différents types. MicroScale thermophorèse (MST) permet aux scientifiques d'effectuer la caractérisation précise rapide, rentable et de qualité contrôlée des interactions moléculaires en solution, avec un libre choix de tampons. Il y a déjà plus de 1000 publications en utilisant MST, à partir de 2016 seulement, décrivant les différents types d'analyses, y compris des projections de la bibliothèque, les validations d'événements, des essais de compétition, et les expériences de liaison avec plusieurs partenaires de liaison ^1-8. En général, le MST permet l'étude des paramètres de liaison classiques, tels que l'affinité de liaison (pM ​​mM), stoechiométrie, et de la thermodynamique, de tout type d'interaction moléculaire. Un grand avantage de MST est la possibilité d'étudier des événements de liaison indépendants de la taille des partenaires d'interaction. Même chalinteractions lenging entre les petites aptamères d'acides nucléiques (15-30 nt) et des cibles telles que des petites molécules, des médicaments, des antibiotiques, ou métabolites peuvent être quantifiés.

Les technologies actuelles state-of-the-art pour caractériser les interactions aptamère-cibles sont soit en laboratoire intense et très complexe ou ne parviennent pas à quantifier les interactions aptamère-petite molécule ^9,10. Surface Plasmon Resonance (SPR) à base de dosages ^11,12 et approches colorimétriques vraiment sans étiquette, comme Calorimétrie titration isotherme (ITC) ^13-15, élution isocratique ^16, l' équilibre fi ltration ^17,18, en ligne de sondage ^19, gel - passer des tests, arrêt - fl ux fl uorescence spectroscopie ^20,21, anisotropie de fluorescence (FA) ^22,23, une seule molécule fl uorescence imagerie ^24,25, et Bio-couche interférométrie (BLI) ²⁶ sont également soit imprécis ou incompatible avec la molécule d'aptamères-petite interactions. Autres principal enjeux de ces méthodes sont une faible sensibilité, une consommation élevée de l'échantillon, l'immobilisation, les limitations de transport de masse sur les surfaces, et / ou des restrictions de mémoire tampon. Seules quelques-unes de ces technologies offrent des contrôles intégrés pour l'agrégation et d'adsorption des effets.

MST représente un outil puissant pour les scientifiques de surmonter cette limitation pour étudier les interactions entre les aptamères et les petites molécules ^27-29, ainsi que d' autres cibles telles que les protéines ^30-33. La technologie repose sur le mouvement de molécules à travers des gradients de température. Ce mouvement dirigé, appelé "thermophorèse," dépend de la taille, la charge, et la coquille d'hydratation de la molécule ^34,35. La liaison d'un ligand à la molécule directement altérer au moins l'un de ces paramètres, ce qui entraîne une mobilité thermophorétique changé. Ligands avec de petites tailles peuvent ne pas avoir un impact considérable en termes de changement de taille de la non liée à l'état lié, mais ils peuvent avoir dr effets Amatic sur la coque et / ou la charge hydratation. Les changements dans le mouvement thermophorétique des molécules après interactions avec le partenaire de liaison permet la quantification des paramètres de liaison de base ^{2,7,34,36,37.}

Comme cela est représenté sur la figure 1A, le dispositif MST est constitué d'un laser infrarouge focalisé sur l'échantillon à l' intérieur des tubes capillaires en verre optique en utilisant les mêmes que pour la détection de la fluorescence. Le mouvement thermophorétique de protéines via le fl uorescence intrinsèque de tryptophanes ⁶ ou d'un partenaire d' interaction ^3,8 marqué par fluorescence peut être surveillée tandis que le laser établit un gradient de température (AT de 2-6 ° C). La différence de température dans l' espace, AT, conduit à l'épuisement ou l' accumulation de molécules dans le domaine de température élevée, qui peut être quantifiée par la Soret coef fi cient (S _T):

g "/>

c représente la concentration à _chaud dans la région chauffée et _froid c est la concentration initiale dans la zone froide.

Comme le montre la figure 1B, un exemple typique de résultats expérimentaux MST dans un profil de mouvement MST (trace de temps), composé de différentes phases, qui peuvent être séparés par leurs échelles de temps respectives. La fluorescence initiale est mesurée au cours des 5 premières secondes en absence de gradient de température pour définir la fluorescence de départ précis et pour vérifier photoblanchiment ou photoenhancement. Le saut de température (T-Jump) représente la phase dans laquelle les changements de fluorescence avant le mouvement thermophorétique. Cette diminution initiale de la fluorescence dépend des changements de chaleur dépendant de fl uorophore rendement quantique. La phase de thermophorèse suit, dans laquelle les baisses de fluorescence (ou augmente) en raison du mouvement thermophorétique des molécules jusqu'à ce que la distribution à l'état d'équilibre est atteint.Le tjump inverse et rétrodiffusion concomitante de molécules fluorescents peuvent être observées comme indiqué dans la figure 1B après le laser est éteint. Pour accéder aux paramètres de liaison de base, différents rapports molaires des partenaires d'interaction sont analysées et comparées. En règle générale, 16 rapports différents sont étudiés dans une expérience MST, tandis que la molécule visible optique est maintenue constante et est alimentée avec une quantité croissante du ligand non marqué. L'interaction entre les deux partenaires de liaison induit des changements dans la thermophorèse, et donc dans la fluorescence normalisée, F _norme, qui est calculé comme suit:

F _chaud et _froid F représentent en moyenne fl intensités uorescence au dé fi nies points de temps des traces du MST. Les affinités de liaison (K _d ou CE ₅₀ valeurs) peuvent être calculées par curve montage (figure 1C).

Dans l'ensemble, le MST est un outil puissant pour étudier les interactions moléculaires de toute nature. Ce manuscrit propose un protocole pour caractériser l'interaction difficile entre la petite triphosphate molécule d'adénosine (ATP; 0,5 kDa) et le 25-nt court ADNss aptamère DH25.42 (7,9 kDa). Au cours du manuscrit, le site de liaison de l'aptamère sur la molécule d'ATP est mappée vers le bas pour le groupe adénine de l'ATP.

Protocol

1. Préparation de l'aptamère de travail Stock

1. Suivez les instructions du fabricant et de dissoudre l'oligonucléotide (5-Cy5-CCTG GGGGAGTATTGCGGAGGAAGG-3, la séquence de référence ¹⁸⁾ dans l' eau, pour atteindre une concentration finale de 100 uM.
2. Préparer la solution de travail en diluant aptamère l'oligonucléotide actions pour 200 nM avec un tampon de liaison (Tris 20 mM, pH 7,6, NaCl 300 mM, MgCl2 ₅ mM, 0,01% de Tween 20).
3. Incuber le mélange pendant 2 min à 90 ° C, laisser refroidir l'échantillon immédiatement vers le bas sur la glace, et d'utiliser l'échantillon à température ambiante.

2. Préparation de la dilution de la série Ligand

1. Pour chaque ligand (adénosine triphosphate (ATP), l'adénosine diphosphate (ADP), l'adénosine monophosphate (AMP), l'adénine, la guanosine triphosphate (GTP), cytosine triphosphate (CTP), désoxyadénosine triphosphate (dATP), et S-adénosyl méthionine (SAM) ; 10 mM chacun), préparer une série diluti 16 étapesdans 200 micro-tubes de réaction ul.
   NOTE: Centrifugation des stocks de ligand pendant 5 min à 14000 xg peut aider à éliminer les agrégats. Faible volume des tubes à faible réaction de liaison sont recommandés pour éviter l'adsorption de molécules sur les parois du tube.
2. Commencer avec une concentration maximale d'au moins 50 fois supérieure à l'affinité estimée et réduire la concentration en ligand de 50% à chaque étape de dilution.
   REMARQUE: L'outil concentration finder mis en œuvre dans le logiciel de contrôle simule les données de liaison et aide à trouver la plage de concentration juste pour la série de dilution.
3. Remplir 20 pi de ligand stock (10 mM) dans le tube 1. Ajouter 10 pi de tampon de liaison de l'aptamère dans des tubes de réaction micro 2-16.
4. Transfert 10 pi de tube 1 à tube 2 et bien mélanger par pipetage de haut en bas plusieurs fois. Transférer 10 pi au tube suivant et répétez cette dilution pour les tubes restants.
5. Jeter l'excès de 10 ul du dernier tube. Évitez tout bUffer effets de dilution. Le tampon dans le tube 1 et 2-16 dans les tubes doivent être identiques.

3. Préparation du mélange final de réaction

1. Préparer les réactions de liaison individuelles avec un volume de 20 pi (10 pi de solution de travail aptamère + 10 pl de la dilution du ligand respectif) afin de minimiser les erreurs de pipetage. Un volume de seulement 4 pi est suf fi sante pour fi ll le capillaire.
2. Ajouter 10 ul de la solution de travail 200 nM aptamère à 10 ul de chaque dilution du ligand et bien mélanger par pipetage de haut en bas plusieurs fois.
3. Incuber les échantillons pendant 5 min à température ambiante et fi ll les échantillons dans les capillaires classiques en plongeant les capillaires dans l'échantillon. De plus longs temps d'incubation peuvent être nécessaires pour certaines interactions; cependant, 5 minutes est suffisante pour la plupart. Touchez les capillaires que sur les côtés, pas sur la partie centrale, où la mesure optique sera prise.
4. Placer les capillaires th SUR DESe plateau capillaire et démarrer le périphérique MST.

4. À partir de l'appareil MST

NOTE: Le dispositif fournit deux logiciels pré-installés, le "logiciel pour la configuration technique des conditions expérimentales et de contrôle '' analyse« logiciel pour l'interprétation des données produites.

1. Avant de placer le bac capillaire dans le dispositif MST, démarrez le logiciel de commande et de régler la température globale souhaitée en sélectionnant '' activer le contrôle manuel de la température "dans le '' contrôle de la température" menu déroulant. Ajuster la température à 25 ° C de cette manière.
   REMARQUE: Les instruments peuvent être MST 22-45 ° C, à température contrôlée.
2. Attendez que la température pour atteindre le niveau attendu, puis placer le plateau capillaire dans le dispositif MST.
3. Réglez le canal LED '' rouge "pour les colorants Cy5 et ajuster la puissance LED pour obtenir un fl uorescencsignal e de 300 à 1000 unités de fluorescence au niveau du dispositif MST avec un capteur standard. 25% de la puissance LED est utilisé dans cette étude.
   NOTE: 6.000 à 18.000 unités de fluorescence sont recommandées pour le MST avec un capteur à haute sensibilité.

5. Capillaire Numériser

1. Effectuer une analyse capillaire pour vérifier les différents aspects de la qualité de l'échantillon en choisissant la position capillaire sur le logiciel de «contrôle» et en cliquant sur "start cap scan" avant de commencer la mesure MST.
2. Inspecter l'analyse capillaire pour la fluorescence d'amélioration / trempe et les effets de collage (U ou aplatie pics) dans le logiciel.
   NOTE: Plus de détails sur la détection et la manipulation de la fluorescence et les effets de collage peuvent être trouvés dans la discussion.

6. MST Mesure

NOTE: Avant de commencer la mesure MST, assurez-vous d'exclure coller des effets, l'amélioration / effets de trempe, ouerreurs de pipetage, et veiller à ce que l'analyse capillaire indique que le signal de fluorescence est suffisante. Pour plus de détails, voir la discussion.

1. Affecter les concentrations de ligand de la série de dilution à la position respective dans le capillaire "logiciel" "contrôle Considérons l'étape de dilution du mélange de l'aptamère et un ligand. (1: 1).
2. Entrez la plus forte concentration de ligand (5 mM) pour capillaire # 1, sélectionnez le type de dilution correct (ici, 1: 1), cliquez sur la concentration maximale, et utiliser la fonction de glisser pour attribuer automatiquement les concentrations restantes dans les capillaires # 2- 16. La concentration la plus faible est 152,6 nm.
3. Entrer la concentration de l'aptamère fluorescents (ici 100 nM) dans la section respective du logiciel de commande.
4. Utilisez les paramètres par défaut, qui détectent la fl uorescence pendant 5 secondes, enregistrer le MST pendant 30 secondes, et enregistrer la fluorescence pendant encore 5 secondes après l'inactivation du laser t o surveiller la diffusion arrière de molécules.
5. Régler la puissance du laser à 20%, dans la partie correspondante du logiciel de commande.
   NOTE: Afin de recevoir le meilleur rapport signal-bruit et éviter les effets non spécifiques, une puissance laser de 20-40% est recommandé. Dans certains cas, une puissance laser plus élevée peut être nécessaire pour obtenir une bonne séparation des molécules non liées et liées.
6. Enregistrer l'expérience après avoir sélectionné le dossier de destination et démarrer la mesure MST en appuyant sur le bouton '' de mesure Démarrer MST ".
   REMARQUE: Le fichier .ntp sera généré dans le dossier de destination. Grâce à cette configuration, une mesure dure 10-15 min.
7. Répétez la procédure expérimentale au moins deux fois pour une détermination plus précise de la valeur CE _50.
   NOTE: Afin de tester la reproductibilité technique, les mêmes capillaires peuvent être numérisés à plusieurs reprises (répétitions techniques).

7. MST Analyse des données

nt "> NOTE: Le logiciel d'analyse permet à l'analyse des données sur la fl y pendant la mesure Le logiciel d'analyse trace les traces de temps MST et des changements dans la normalisation de fluorescence (F _norme) par rapport à la concentration de ligand ^37..

1. Démarrez le logiciel d'analyse MST (MO.Affinity Analysis) et charger le fichier .ntp à partir du dossier de destination. Sélectionnez "MST" comme le type d'analyse dans le menu de sélection des données.
   NOTE: En cas d'effets de fluorescence ligand-dépendante, la fluorescence initiale peut être choisie pour l'analyse.
2. Ajouter la course technique ou biologique respective (s) à une nouvelle analyse par glisser-déposer ou en appuyant sur le bouton "+" en dessous de la course expérimentale respective.
3. Appuyez sur le bouton d'information ci-dessous la course expérimentale respective pour obtenir des informations sur les propriétés de l'expérience, des traces du MST, analyse capillaire, la forme capillaire, fluorescence initiale, et le taux de blanchiment.
   NOTE: Ces données brutes peuvent alalors être inspecté dans les étapes ultérieures de l'analyse.
4. Inspecter visuellement les traces du MST pour l'agrégation et de précipitation effets, visibles comme des bosses et des pointes.
   NOTE: Pour plus d'informations sur la détection et le traitement des effets d'agrégation, lisez la discussion.
5. Inspecter visuellement l'analyse capillaire et le capillaire forme overlay pour les effets d'adsorption, visible sous forme de pics aplatis ou en forme de U. Inspecter visuellement l'analyse capillaire et la fluorescence initiale pour les effets de fluorescence. Inspecter visuellement le taux de blanchiment pour les effets photoblanchiment.
6. Passez en mode dose-réponse et modifier le paramètre d'analyse en mode "expert" en appuyant sur la touche correspondante. Sélectionnez "T-Jump» comme stratégie d'évaluation MST.
7. Sélectionnez le modèle "Hill" pour la courbe fi Prép. Les paramètres de liaison seront automatiquement calculés. Normaliser les données en choisissant le type respectif de la normalisation dans le menu "comparer les résultats". Export de lales données soit en tant .xls ou .pdf.
   NOTE: Le tableau ci-dessous le graphique de liaison résume les paramètres de liaison calculés.

Results

Dans cette étude, le MST a été appliquée pour caractériser le site de liaison de l'aptamère ADN DH25.42 ¹⁸ sur l' ATP. Contrairement à d' autres études caractérisant l'interaction de l' ATP ou d' ATP mimant les petites molécules avec des protéines marquées de façon aléatoire avec un ou plusieurs fluorophores ^38-40, cette étude comprend une version marquée de l'aptamère 7,9 kDa ADNsb avec une molécule Cy5 sur l'extrémité 5 ' . Différents dérivés de l'ATP et des moléc...

Discussion

Les contrôles de qualité:

l'adhérence non spécifique / adsorption de l'échantillon de matériau sur les surfaces, ainsi que des effets d'agrégation, ont une influence considérable sur la qualité des données d'affinité. Cependant, seulement quelques technologies state-of-the-art offrent des options précises et rapides pour surveiller et éviter ces effets. MST offre des contrôles de qualité intégrés qui détectent et aident à surmonter ces problèmes, permettant l'optimisation de...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
		de liaison d’aptamère	20 mM Tris pH 7,6 ; 300 mM NaCl ; 5 mM MgCl2 ; 0,01 % Tween-20
Aptamère ATP marqué par fluorescence	IDT, Louvain, Belgique		séquence : DH25.42 50-Cy5-CCTGGGGGAGT- ATTGCGGAGGAAGG-3
ATP	Sigma Aldrich, Allemagne  ;	A2383	10 mM de solutions mères stockées à - 20 ° ; C
ADP	Sigma Aldrich, Allemagne  ;	A2754	10 mM de solutions mères stockées à - 20 ° ; C
AMP	Sigma Aldrich, Allemagne  ;	A2252	10 mM de solutions mères stockées à - 20 ° ; C
Adenine	Sigma Aldrich, Allemagne  ;	A8626	10 mM de solutions mères stockées à - 20 ° ; C
SAM	Sigma Aldrich, Allemagne  ;	A7007	10 mM de solutions mères stockées à - 20 ° ; C
dATP	Sigma Aldrich, Allemagne  ;	11934511001	10 mM de solutions mères stockées à - 20 ° ; C
CTP	Sigma Aldrich, Allemagne  ;	C1506	10 mM de solutions mères stockées à - 20 ° ; C
GTP	Sigma Aldrich, Allemagne  ;	G8877	10 mM de solutions mères stockées à - 20 ° ; C
Monolithe NT.115  ;	NanoTemper Technologies, Munich, Allemagne	MO-G008	Bleu/Rouge Channel Dispositif MST avec détecteur standard, Monolith NT115 pico est un appareil MST avec détecteur haute sensibilité
Piles Monolith NT.115 Standard	NanoTemper Technologies, Munich, Allemagne	MO-K002
Tubes PCR Eppendorf	Eppendorf, Allemagne	30124537
Logiciel de contrôle Monolith. 2.1.33, préinstallé sur l’appareil	NanoTemper Technologies, Munich, Allemagne
MO.affinity analysis v2.1.1	NanoTemper Technologies, Munich, Allemagne
Kaleidagraph 4.5.2	Synergy Software