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Sauvage Blocking PCR Combiné avec le séquençage direct comme méthode très sensible pour la détection de basse fréquence Somatic Mutations

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DOI :

10.3791/55130

29 mars 2017

Dans cet article

Résumé

La PCR bloquante de type sauvage suivie d’un séquençage direct offre une méthode très sensible de détection des mutations somatiques à basse fréquence dans une variété de types d’échantillons.

Résumé

la détection et l'identification précise des mutations à basse fréquence peut être problématique lors de l'évaluation de maladie résiduelle après le traitement, le dépistage des nouvelles mutations de résistance au cours du traitement, ou lorsque les patients ont peu de cellules tumorales circulantes. PCR blocage de type sauvage suivi par une analyse de séquençage offre une sensibilité élevée, la flexibilité et la simplicité comme une méthodologie permettant de détecter ces mutations à basse fréquence. En ajoutant un oligonucleotide conçu sur mesure d'acide nucléique verrouillé dans une nouvelle ou déjà établie essai de séquençage à base de PCR classique, des sensibilités de l'ordre de 1 allele mutant dans un fond de 1000 WT alleles peuvent être atteints (1: 1000). artefacts de séquençage associés à des événements de désamination généralement trouvés dans des tissus inclus dans la paraffine fixés au formol peut être remédié en partie par l'utilisation de l'uracile glycosylase d'ADN au cours des étapes d'extraction. Le protocole optimisé de détection est spécifique ici pour la mutation MyD88, mais peut servir de modèle pour concevoir toutedosage WTB-PCR. Avantages du test WTB-PCR sur les autres essais couramment utilisés pour la détection de mutations à basse fréquence incluant allèle spécifique PCR et PCR en temps réel quantitative comprennent moins les occurrences de faux positifs, une plus grande souplesse et la facilité de mise en œuvre, et la capacité de détecter à la fois connue et des mutations inconnues.

Introduction

Le séquençage Sanger a toujours été l'étalon-or dans les tests pour les mutations somatiques connues et inconnues. L' une des limitations de séquençage de Sanger est sa limite de détection (~ 10 - allèle mutant de 20% dans un fond de WT) 1. Ce niveau de sensibilité est inapproprié pour la détection de mutations somatiques de bas niveau qui peuvent être présents dans des échantillons de tissus de patients prémalignes ou avec peu de cellules tumorales circulantes, ou lorsque la moelle osseuse (BM) est inégale. Cela rend également l' évaluation de la maladie résiduelle après le traitement ou la détection des mutations de résistance ém....

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Protocole

Déclaration éthique: Tous les tests des échantillons humains a été réalisée après obtention de l'approbation Institutional Review Board (IRB).

1. Extraction de l'ADN à partir de tissu FFPE, du sang périphérique et de moelle osseuse Aspirer

  1. Pour la moelle osseuse du tissu FFPE avec le kit d'extraction d'ADN FFPE
    1. Commencer avec le tissu FFPE de lames non colorées (5 - 10 parties à 5 - épaisseur de 10 um).
      REMARQUE: si début de copeaux de tissu, utiliser 3 - 6 sections à 5 - épaisseur de 10 pm et passer à l'étape 1.1.6.
    2. Placez les diapositives dans un panier de diapositives et de prépa....

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Résultats

Une vue d' ensemble conceptuelle de WTB-PCR lors de l' extension est présentée sur la figure 1. Étant donné qu'un seul mésappariement de nucleotide dans l'hybride ADN-bloqueur diminue considérablement sa température de fusion (AT m = 20 - 30 ° C), l' amplification de l'allèle WT est bloqué tandis que l' ADN matrice mutant est libre de compléter l' extension 17. De cette manière, l'ADN mutant est ampli.......

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Discussion

Le dosage WTB-PCR décrit ici utilise un ensemble générique d'amorces avec un oligo blocage conçu pour bloquer l' amplification de l' ADN WT pendant l' extension (Figure 1). Le produit WTB-PCR est ensuite séquencée pour l'analyse mutationnelle. L'utilité de WTB-PCR / Sanger réside dans sa simplicité, de haute sensibilité, et à haut débit. En utilisant les directives décrites ici, la plupart des tests basés sur Sanger existants peuvent être simplement modifiés par l'ajout d'.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Les auteurs n’ont aucune reconnaissance.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
1,5 ou 2 mL Tubes à centrifuger Safe-LockEppendorf05-402-25
100 % alcoolVWR89370-084Qualité histologique ; 91,5 % Éthanol, 5 % Alcool isopropylique, 4,5 % Alcool méthylique
3730XL SéquenceurABIou équivalent
Agencourt AMPure XPBeckman CoulterA63881Pour la purification PCR à billes magnétiques
Aluminium feuilles d’étanchéitéGeneMateT-2451-1Pour PCR et stockage à froid
BigDye Terminator v3.1 Kit de séquençage de cycleLife Technologies4337455Pour le séquençage bidirectionnel. Avec 5x Centrifugeuse tampon de séquençage
Série 5804Rotor EppendorfA-2-DWP (pour plaque PCR)
Plaque froide pour plaques à 96 puitsEppendorfZ606634
DNAse, sans RNAse, eau
(100 mM)Invitrogen10297-117
DynaMag-96 Aimant à jupe latéraleThermo Fisher Scientific12027Pour une utilisation dans la purification PCR.
Éthanol absoluSigmaE7023200 proof, pour la biologie moléculaire
Site web Exiqon Oligo Toolswww.exiqon.com/oligo-tools
FastStart Taq DNA polymérase (5 U/µ ; L)Roche12032937001With10x tampon de réaction PCR concentré, avec 20 mM MgCl2
d’électrophorèse % d’agarose
GeneRead DNA FFPEQiagenContient de l’uracile ADN glycosylase nécessaire pour réduire les artefacts de séquençage
Hi-Di FormamideABI4311320Pour le séquençage.
LNA oligonucléotideExiqon5001005'-TCAGA+AG+C+G+A+C+T+G+T+CC/invdT/ (+N = bases LNA)
M13-F Séquençage PrimerABI5'-tgt aaa acg acg gcc agt
M13-R Sequencing PrimerABI5'-cag gaa aca gct atg acc
Mastercycler Pro S ThermocycleurEppendorfE950030020
Microcentrifugeuse Modèle 5430Rotor EppendorfFA-45-30-11 (pour tubes de microcentrifugation de 1,5/2 mL)
Spectrophotomètre NanoDrop 2000Thermo Fisher Scientific
PCRamorce directe IDT5'-tgt aaa acg acg gcc agt TGC CAG GGG TAC TTA GAT GG
PCR amorce inverseIDT5'-cag gaa aca gct atg acc GGT TGG TGT AGT CGC AGA CA
PCR plaquesGeneMateT-3107-1
Pipettors20, 200, 1 000 & micro ;
Septa à plaque L, 96 puitsABI4315933
QIAamp DNA Mini KitQiagen51304Pour l’aspiration BM et le sang périphérique
SeqScape Sortware v3.0ABI4474978Pour l’analyse de séquençage
Panier
Acétate de sodium (3 M, pH 5,2)  ;SigmaS7899
de pipette filtrées stériles20, 200, 1 000 & micro ; L
Thermomélangeur C  ;Eppendorf5382000023
Vortex genieScientific IndustriesSI-0236
Réservoir~ 1 000 mL
XylèneVWR89370-088Qualité histologique
ultra-pureGel Appareil 2 180134 à lamesPointes de lavage

Références

  1. Vogelstein, B., Kinzler, K. W. Digital PCR. Proc Natl Acad of Sci U S A. 96 (16), 9236-9241 (1999).
  2. Milbury, C. A., Li, J., Makrigiorgos, G. M. PCR-based methods for the enrichment of minority alleles and mutations. Clin Chem. 55 (4), 632-640 (2009).
  3. Albitar, A., Ma, W., DeDios, I., Estella, J., Agersborg, S., Albitar, M.

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Mots-clés

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