Method Article

Imagerie Neurones dans les sections du cerveau épais Utilisation du Golgi-Cox Méthode

DOI:

10.3791/55358

April 18th, 2017

In This Article

Summary

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Nous présentons un protocole d'utilisation de la méthode de coloration de Golgi-Cox dans des coupes de cerveau d'épaisseur, afin de visualiser les neurones avec de longs arbres dendritiques contenus dans des échantillons de tissus individuels. Deux variantes de ce protocole sont également présentées qui impliquent violet contre-coloration crésyl, et le gel des cerveaux non transformés pour le stockage à long terme.

Abstract

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La méthode Golgi-Cox de coloration des neurones a été employé pendant plus de deux cents ans pour faire progresser notre compréhension de la morphologie des neurones dans les échantillons de cerveau histologiques. Bien qu'il soit préférable d'un point de vue pratique pour préparer des coupes du cerveau à la plus grande épaisseur possible, afin d'augmenter la probabilité d'identifier les neurones colorés qui sont entièrement contenus dans les sections individuelles, cette approche est limitée du point de vue technique par la distance de travail de haut -magnification objectifs de microscope. Nous rapportons ici un protocole pour colorer les neurones en utilisant la méthode Golgi-Cox dans des coupes de cerveau de souris qui sont coupées à une épaisseur de 500 um, et de visualiser les neurones tout au long de la profondeur de ces sections à l'aide d'un microscope droit muni d'une haute résolution 30X de silicone 1,05 NA objectif à immersion dans l'huile qui a une distance de travail de 800 um. Nous présentons également deux variantes utiles de ce protocole qui peut être utilisé pour la surface de contre-colorermonté des coupes de cerveau avec le colorant de Nissl violet de crésyle, ou de geler les cerveaux entiers pour le stockage à long terme avant la coupe et le traitement final. Le protocole principal et ses deux variantes produisent des coupes de cerveau épais tachés, tout au long de laquelle les arbres dendritiques complet des neurones et des épines dendritiques peuvent être de manière fiable visualiser et de quantifier.

Introduction

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La visualisation des neurones individuels dans des échantillons de tissus permet de l'analyse in situ des caractéristiques morphologiques des neurones, ce qui a considérablement fait progresser notre compréhension du cerveau et comment elle peut être influencée par la maladie endogène ou des facteurs environnementaux exogènes. La méthode de coloration Golgi-Cox est un rapport coût-efficacité, des moyens relativement simples de coloration d'un échantillon aléatoire de neurones dans le cerveau. D' abord développé par Golgi 1 et modifié par Cox 2 dans les années 1800, les chercheurs ont affiné cette te....

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Protocol

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Des souris femelles CD1-souches adultes ont été utilisés dans cette étude. coloration similaire peut être réalisée en utilisant les deux sexes à différents âges. animaux expérimentaux ont été pris en charge selon les principes et les lignes directrices du Conseil canadien de protection des animaux, et le protocole expérimental a été approuvé par l'Université de Guelph Comité de protection des animaux.

1. Golgi-Cox Staining

  1. Golgi-Cox Imprégnation de cerveaux
    1. Ajouter la solution Golgi-Cox de 1% (p / v) de dichromate de potassium, 0,8% (p / v) chromate de potassium et 1% (p / v) de chlorure mercurique....

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Results

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Ce protocole de coloration Golgi-Cox et ses deux variantes décrites facultatifs peuvent être utilisés pour visualiser les neurones individuels à moins de 400 - 500 um d'épaisseur des coupes de cerveau. Image représentative des montages de deux dimensions Z-projections capturées en utilisant un objectif 10X et 5 um étapes de l'axe Z sont représentés sur la figure 1: A1 - C1 pour une grande surface de coupes cérébrales coronales qui comprend la zone de cortex cingulaire an.......

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Discussion

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Nous décrivons ici un protocole de coloration Golgi-Cox ainsi que deux variantes utiles pour visualiser les neurones dans les sections du cerveau épais. Comme le montrent les résultats représentatifs, l'utilisation d'un objectif à haute résolution qui a une longue 800 um distance de travail permet la visualisation fiable de l'ensemble des neurones tout au long de la profondeur des coupes de cerveau coupées à 500 um. Cette étude des coupes de cerveau relativement épaisses augmente la probabilité que les neuro.......

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Disclosures

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Les auteurs déclarent qu'ils ont pas d'intérêts financiers concurrents.

Acknowledgements

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Ce travail a été soutenu par une subvention à la découverte de SBCDC du Conseil de recherches en sciences naturelles et en génie du Canada (CRSNG), une subvention d'infrastructure de recherche du Fonds des leaders John R. Evans à SBCDC de la Fondation canadienne pour l'innovation (numéro de projet CFI 30381), et par une subvention à la découverte du CRSNG à NJM du. ELL a été soutenu par une bourse d'études supérieures de l'Ontario et par une bourse d'études OEV du Collège vétérinaire de l'Ontario à l'Université de Guelph. CDS a été pris en charge par un poste d'assistant de recherche des étudiants de premier cycle du CRSNG. ALM a été s....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
dichromate de potassiumFisher ScientificP188-100Chromate de
potassiumFisher ScientificP220-100Chlorure
mercuriqueFisher ScientificS25423
Papier filtre dangereux Whatman grade 1Fisher Scientific1001-185
isofluranePartenaires pharmaceutiques du Canada
Flacon à scintillation de 20 mLFisher Scientific03-337-4
saccharoseBioshop CanadaSUC700.1
phosphate de sodium monobasiqueSigma AldrichS5011-500G
phosphate de sodium dibasiqueSigma AldrichS9390-500G
Tube conique de 50 mLFisher Scientific12-565-271
isopentaneFisher ScientificAC126470010Aussi connu sous le nom de 2-méthylbutane ; gélose dangereuse
Sigma AldrichA1296-100G
petite paraboleFisher Scientific02-202-100
vibratomeLeicaVT1000 S Plaques
culture tissulaire à 6 puitsFisher Scientific08-772-1b
inserts de culture tissulaire à fond grillagéFisher Scientific07-200-214
paraformadelhyde (PFA), 16 %Electron Microscope Sciences15710-SHydroxyde
d’ammoniumFisher ScientificA669S-500Fixateur Kodak dangereux
ASigma AldrichP7542
superfrost plus lamesFisher Scientific12-550-15
Décapant CitroSolvFisher Scientific22-143-975
alcool éthylique anhydreAlcools commerciauxN/A
crésyl violetSigma AldrichC1791
permountFisher ScientificSP15-100
microscope
droit modèle Olympus BX53Caméra couleur, 12 bitsMBF BiosciencesDV-47dQImaging part 01-MBF-2000R-F-CLR-12
Platine, contrôleur et émetteurs de microscope motorisé 3DMBF BiosciencesN/ALivré et intégré au microscope par MBF Biosciences
Objectif de microscope 4XOlympus4x 0.16 N.A. UplanSApo
10X Objectif de microscopeOlympus10x 0.3 N.A. UPlan FL N  ;
Objectif microscope 30XOlympus30x 1.05 N.A. UPlanSApo  ;
Objectif de microscope 60XOlympus60x 1.42 N.A. PlanAPO N
huile d’immersion siliconeOlympusZ-81114
Logiciel NeurolucidaMBF BiosciencesVersion 10
Logiciel ImageJU.S. National Institutes of HealthVersion actuelleAvec le plug-in OME Bio-Formats installé
LogicielPhotoshopVersion d’AdobeCS6
dangereux dangereux CP0406V2 de dangereux

References

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  1. Golgi, C. Sulla struttura della sostanza grigia del cervello. Gazzetta Medica Italiana. Lombardia. 33, 244-246 (1873).
  2. Cox, W. H. Imprägnation des centralen Nervensystems mit Quecksilbersalzen. Archiv f. mikrosk. Anat. 37, 16-21 (1891).
  3. Zaqout, S., Kaindl, A. M. Golgi-Cox Staining Step by Step....

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