L'immunoprécipitation de la chromatine (ChIP) est une méthode puissante pour déterminer la liaison des protéines à l'ADN de la chromatine. Le muscle squelettique riche en fibres a toutefois été un défi pour le ChIP en raison de difficultés techniques en isolement de noyaux de haute qualité avec une contamination minimale des myofibrilles. Les protocoles antérieurs ont tenté de purifier les noyaux avant la réticulation, ce qui entraîne une altération de l'interaction ADN-protéine pendant le processus de préparation des noyaux prolongés. Dans le protocole actuel, nous avons d'abord réticulé le tissu musculaire squelettique recueilli chez la souris et les tissus ont été hachés et sonicés. Comme nous avons constaté que l'ultracentrifugation n'était pas capable de séparer les noyaux des myofibrilles à l'aide d'un tissu musculaire réticulé, nous avons mis au point une procédure de filtration séquentielle pour obtenir des noyaux de haute qualité dépourvus de contamination significative par myofibrilles. Nous avons ensuite préparé la chromatine en utilisant un ultrasons, et les tests de ChIP avec anticorps anti-BMAL1 ont révélé une liaison circadienne robusteModèle de BMAL1 pour cibler les promoteurs de gènes. Ce protocole de filtration constitue une méthode facilement applicable pour isoler des noyaux de haute qualité à partir d'un tissu musculaire squelettique réticulé, ce qui permet un traitement cohérent des échantillons pour les études circadiennes et autres études sensibles au temps. En combinaison avec le séquençage de la prochaine génération (NGS), notre méthode peut être déployée pour diverses études mécaniques et génomiques axées sur la fonction du muscle squelettique.