Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.

Article de méthode

Cryoconservation des spermatogonies de poisson-zèbre de toute aiguille testicules immergé refroidissement ultra rapide

7.9K vues

⸱

DOI :

10.3791/56118

⸱

4 mars 2018

 ,  ,  ,  ,  , 

Dans cet article

Résumé

L’objectif principal de cette étude était d’adapter l’aiguille plongé procédure vitrification (NIV) pour cryoconservé testicules tout poisson-zèbre. En outre, la répétabilité de la méthode dans cinq souches différentes de poisson-zèbre a été testée.

Résumé

Tendances actuelles de la science et de la biotechnologie menant à la création de milliers de nouvelles lignes dans les organismes modèles, ce qui conduirait à la nécessité de nouvelles méthodes pour le stockage sûr des ressources génétiques au-delà des pratiques courantes de garder les colonies reproductrices. L’objectif principal de cette étude était d’adapter l’aiguille plongé procédure vitrification (NIV) pour cryoconservé testicules tout poisson-zèbre. Cryoconservation des cellules germinales précoce par les testicules tout NIV offre des possibilités pour le stockage du poisson-zèbre des ressources génétiques, autant après la transplantation, ils peuvent mûrir en gamètes mâles et femelles. Testicules ont été excisées, a effectué le tombé sur une aiguille d’acupuncture, équilibrée dans deux milieux cryoprotecteurs (équilibration solution contenant du méthanol de 1,5 M et 1,5 M propylène glycol ; et solution de vitrification contenant 3 M le diméthylsulfoxyde et 3M propylène glycol) et plongés dans l’azote liquide. Des échantillons ont été réchauffés dans une série de trois solutions de réchauffement de la planète qui en découle. Les principaux avantages de cette technique sont : (1) l’absence de spermatozoïdes après digestion des testicules réchauffés, ce qui facilite les manipulations en aval ; (2) ultra rapide refroidissement permettant l’exposition optimale des tissus à l’azote liquide donc maximiser le refroidissement et la réduction de la concentration requise des cryoprotecteurs, réduisant ainsi leur toxicité ; (3) synchrone exposition des testicules plusieurs cryoprotecteurs et azote liquide ; et répétabilité (4) a démontré en obtenant la viabilité de plus de 50 % dans cinq souches différentes de poisson-zèbre.

Introduction

Nouvelles tendances en sciences et en biotechnologie ont conduit à la création de milliers de nouvelles lignées mutantes de souris, drosophile, poisson-zèbre et autres espèces utilisées comme organismes modèles dans la recherche biomédicale et d’autres sciences1. En outre, comme les nouvelles technologies sont développées et deviennent disponibles, le nombre de lignées mutantes augmente régulièrement2. Cela conduit à la nécessité d’un stockage sûr des ressources génétiques au-delà des pratiques courantes de garder les colonies reproductrices. Comme une méthode qui permet le stockage en toute sécurité des ressour....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Protocole

Toutes les méthodes décrites ici ont été approuvés par la loi hongroise du bien-être Animal.

1. préparation du réactif

  1. Solutions courantes
    1. Préparer 1 M tréhalose en ajoutant 0,378 g de dihydrate de tréhalose dans 1 mL de dH2O. Mix bien jusqu'à ce qu’il se dissout complètement.
    2. Préparer 1 M saccharose en ajoutant 0,342 g de saccharose dans 1 mL de dH2O. Mix bien jusqu'à ce qu’il se dissout complètement.
    3. Préparer 1 M HEPES en ajoutant 0,238 g de HEPES à 1 mL de dH2O. Mix bien jusqu'à ce qu’il se dissout complètement.
    4. Préparer, collagénase de 20 mg/mL (290 U/mg....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

En moyenne, le nombre de cellules germinales de stade précoce isolé d’un testicule unique de poisson-zèbre fraîche variait entre 40 000 et 200 000 cellules selon la taille du poisson. Lorsque digérer les testicules zebrafish frais dans toutes les 5 souches, les cellules germinales début n’étaient pas les seules cellules présentes dans les suspensions cellulaires (Figure 2). À côté du stade précoce des cellules germinales, nombreux spermatozoïdes ont été trouv.......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

L’objectif principal de cette étude était d’adapter l’aiguille plongé procédure refroidissement ultra rapide mis au point pour les espèces aviaires et mammifères10,11,12 pour la cryoconservation des testicules de poisson (poisson zèbre comme un modèle de organisme). La plupart des études antérieures au sujet de la cryoconservation des ressources génétiques zebrafish portaient principalement sur la cryoconservation du sperme de p.......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Cette étude a été financée par la National de la recherche-développement et Innovation Office de Hongrie (subvention 116912 à ÁH), le Bureau de coût (l’alimentation et l’Agriculture coût Action FA1205 : AQUAGAMETE), le Programme de bourses Hungaricum Stipendium (subvention à ZM) et le nouveau Hungarian National Excellence pré-doctoral Fellowship (subvention EK).

....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Milieu Leibovitz (L-15)Sigma-AldrichL1518Supplémenté en L-glutamine
Sérum de veau fœtal (FBS)Sigma-AldrichF9665
Méthanesulfonate de tricaïne (MS-222)Sigma-AldrichE10521
HEPESSigma-AldrichH3375
SaccharoseAcros Organics57-50-1
TréhaloseAcros Organics99-20-7Méthanol dihydraté
Reanal20740-0-08-65
Propylène glycolReanal08860-1-08-65
DiméthylsulfoxydeReanal00190-1-01-65
ColagénaseGibco9001-12-1
TrypsineSigma-AldrichT8003
DNase IPanreac AppliChemA3778
Bleu trypanSigma-AldrichT6146
Solution saline tamponnée au phospate (PBS)Sigma-AldrichP4417Comprimés pour la préparation de 200 ml de solution de PBS

Références

  1. Mazur, P., Leibo, S. P., Seidel, G. R. J. Cryopreservation of the germplasm of animals used in biological and medical research: Importance, impact, status, and future directions. Biol. Reprod. 78 (1), 2-12 (2008).
  2. Carmichael, C., Westerfield, M., Varga, Z. M.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Explorer plus d’articles

Testicules de poisson-zèbrevitrification par immersion d'aiguilleconservation des spermatogoniestransplantation de cellules germinalesmilieux cryoprotecteursrefroidissement à l'azote liquidesolutions de réchauffementessai de viabilité cellulaire