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Article de méthode

AFM et microrhéologie dans la cellule de jaune de œuf embryon de poisson zèbre

8.2K vues

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DOI :

10.3791/56224

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29 novembre 2017

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Dans cet article

Résumé

Le manque d’outils pour mesurer les propriétés des matériaux et des paramètres ligatures en vivo empêche de valider leurs rôles au cours du développement. Nous avons utilisé la microscopie à force atomique (AFM) et suivi des nanoparticules pour quantifier les caractéristiques mécaniques sur la cellule de jaune de œuf embryon intact zebrafish durant l’épibolie. Ces méthodes sont fiables et largement applicable en évitant des interventions intrusives.

Résumé

Élucider les facteurs qui orientent l’organisation spatio-temporelle de l’évolution des tissus est l’un des buts principaux de l’étude du développement. Diverses propositions prétendent avoir été importantes contributions à la compréhension des propriétés mécaniques des cellules et des tissus dans leur organisation spatio-temporelle dans différents processus morphogénétiques et de développement. Toutefois, en raison du manque d’outils fiables et accessibles pour mesurer les propriétés des matériaux et des paramètres ligatures en vivo, valider ces hypothèses a été difficile. Nous présentons ici des méthodes utilisant la microscopie à force atomique (AFM) et suivi dans le but de quantifier les propriétés mécaniques de la cellule de jaune de œuf embryon intact zebrafish durant l’épibolie de particules. Épibolie est un processus de développement précoce conservé dont l’étude est facilitée par la transparence de l’embryon. Ces méthodes sont simples à mettre en œuvre, fiable et largement applicable puisqu’ils surmontent des interventions intrusives qui pourraient influer sur la mécanique des tissus. Une stratégie simple a été appliquée pour le montage d’échantillons, l’enregistrement de l’AFM et des injections de nanoparticules et de suivi. Cette approche rend ces méthodes facilement adaptable à d’autres fois du développement ou les organismes.

Introduction

Les principes physiques qui sous-tendent le contrôle biomécanique des processus morphogénétiques sont en grande partie non définies. Alors que des études biomécaniques au niveau moléculaire et cellulaire sont rassemblent élan considérable, l’exploration des paramètres biomécaniques au niveau tissulaire/organisme est à ses balbutiements. Hydrodynamiques régression1 ou vidéo microscopie de Force2 permettent aux chercheurs de distinguer les forces actives et passives, tandis que de microchirurgie laser3, ou la moins intrusive microscopie à force atomique (AFM) de cellules dissociées....

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Protocole

Toutes les étapes du protocole décrits ci-dessous suivent les directives de protection des animaux de nos institutions.

1. Culture de poisson-zèbre

  1. Reproduire et maintenir le poisson-zèbre adulte dans des conditions normales.
    Remarque : Les embryons de type sauvage AB et TL ont été utilisés pour cette étude.
  2. Collecte des embryons et cultivez-les à 28,5 ° C à l’E3 embryon moyenne24. Leur stade selon morphologie comme décrit précédemment19.

2. atomic Force Microscopy

  1. Manuellement les dechorionate mis en scène des embryons de pois....

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Résultats

Mesures de tension corticale
Pour chaque point de mesure, cinq courbes de force-déplacement (F-z) ont été acquises par l’AFM par la montée en puissance du cantilever à 1 Hz avec une amplitude crête-à-crête de 5 µm (vitesse = 10 µm/s) jusqu'à une échancrure maximale d’environ 2 µm. Cette procédure prend moins de 20 min et n’était pas affectée par la progression de l’épibolie. Chaque condition expérimentale a été testée au moins 5 embryons.

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Discussion

Ici, nous montrons que les propriétés du matériau et certains paramètres biomécaniques de la cellule de jaune de œuf de poisson-zèbre durant l’épibolie peuvent être facilement estimées par l’AFM et nanoparticules microrhéologie.

Alors que l’AFM a été employé pour récupérer des caractéristiques rhéologiques des cellules et des tissus dans des conditions physiologiques4,5,25,

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent pas concurrentes d’intérêts financiers ou autres conflits d’intérêts.

Remerciements

Nous remercions Amayra Hernández-Vega et Philippe-Alexandre Pouille pour avoir participé à la mise en place de la base de ces protocoles. Nous remercions également la plate-forme d’imagerie moléculaire du IBMB-PCB, Xavier Esteban et de membres du laboratoire pour un soutien continu. Le programme de groupes consolidés de la Generalitat de Catalunya et la DGI et la Consolider subventions accordées par le ministère de l’économie et la compétitivité de l’Espagne à l’EMB et DN a soutenu ce travail.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Microscope optique inverséNikonTE2000Visualisation de l’échantillon et de l’AFM
Microscope à force atomique (AFM)Surmesure-ToutAFM commercialisé pourrait être utilisé
Microscope confocal inverséZeissLSM780Collecte de données de nanorhéologie
Agarose D1 Low EEOConda8016.00Moulage d’embryons
Agarose LMP ultrapure (à faible point de fusion)Invitrogen16520-100Sécurisation des embryons
Poissons zèbres Moules de micro-injection et de transplantationWorld Precision InstrumentsZ-MOLDSCoulée d’embryons. Sur mesure avec les dimensions d’origine peut également être utilisé
Dumont 5 ForcepsFST11251-201,5 mm de diamètre
Si3N4 cantileverNovascanPT. GSMesure de l’embryon par AFM. Pointe sphérique : 4,5 & micro ; m diamètre et k=0,01 N/m
Nanoparticules fluorescentesTechnologiesFluoSpheres F8811,Pourle suivi nanorhéologie
Extracteur de micropipettesSutter InstrumentsP-2000Fabrication de micro-aiguilles
sur mesure Verre capillaire borosilicatéWarner InstrumentsG100TF-4Fabrication de micro-aiguilles
sur mesure MicromanipulateurNarishigeMN-153Manipulation de la micropipette
Micro-injecteurEppendorfFemtoJet ExpressContrôle du temps et de la pression d’injection
StéréomicroscopeLeicaDFC365FX Visualisation des embryons pendant l’injection
Logiciel d’analyseMathWorksMatlabAnalyse des données AFM et de suivi des particules
Poisson zèbreAB et TL de type sauvage- Souches utilisées pour la collecte d’embryons
Plaques à fond en verreMat TekP35G-0.170-14-CMontage d’embryons pour la collecte de données de nanorhéologie
Micromètre de scèneFST29025-02Mesure du volume d’injection
Life

Références

  1. Hernandez-Vega, A., et al. Polarized cortical tension drives zebrafish epiboly movements. EMBO J. 36, 25-41 (2017).
  2. Brodland, G. W., et al. Video force microscopy reveals the mechanics of ventral furrow invagination in Drosophila. Proc....

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Réimpressions et autorisations

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