Techniques pour étudier l’anatomie du système visuel Ant

Résumé

Cet article décrit un ensemble de méthodes en microscopie photonique et électronique pour étudier l’anatomie de le œil interne et externe des insectes. Il s’agit de plusieurs techniques traditionnelles, optimisés pour le travail sur les yeux fourmi, détaillée et dépannage ainsi que des propositions d’optimisation pour les différents spécimens et les régions d’intérêt.

Résumé

Cet article décrit un ensemble de méthodes en microscopie photonique (LM) et la microscopie électronique (EM) qui peut être utilisée pour étudier l’anatomie de le œil interne et externe des insectes. Il s’agit de techniques histologiques traditionnelles optimisé pour le travail sur les yeux de fourmi et adapté pour travailler de concert avec d’autres techniques telles que la microscopie électronique à transmission (TEM) et microscopie électronique à balayage (SEM). Ces techniques, bien que très utile, peuvent être difficiles pour la microscopie de novice, alors l’accent a été placé dans cet article sur le dépannage et l’optimisation pour les différents échantillons. Nous fournir des informations sur les techniques d’imagerie pour l’échantillon entier (photo-microscopie et SEM) et discuter de leurs avantages et leurs inconvénients. Nous mettre en évidence la technique utilisée dans la détermination des diamètres de lentille pour le œil entier et discuter des nouvelles techniques d’amélioration. Enfin, nous discutons techniques intervenant dans la préparation des échantillons pour LM et TEM, coupes, coloration et imagerie de ces échantillons. Nous discutons les obstacles que l'on peut trouver dans quelle préparation des échantillons et la meilleure façon de naviguer autour d’eux.

Introduction

Vision est une modalité sensorielle importante pour la plupart des animaux. Vision est particulièrement cruciale dans le contexte de la navigation pour repérage buts, établissant et adhérant aux liaisons et l’obtention des informations boussole^1,2. Détecter des informations visuelles à l’aide d’une paire d’yeux composés des insectes et, dans certains cas, yeux simples placés sur le dos d’un à trois appelés ocelles^3,4,5.

Aux yeux des fourmis sont particulièrement intéressants parce que, tand....

Protocole

1. préparation de l’échantillon

Remarque : Il faut d’abord comprendre l’emplacement relatif des yeux composés et ocelles les uns aux autres et sur la tête. Ceci peut être réalisé en faisant l’acquisition des images de la vue dorsale de la tête. Pour ce faire, nous vous recommandons d’échantillons de traitement pour la photomicrographie ou en utilisant des techniques de SEM. Ci-dessous les étapes sont impliquées dans ces deux processus.

1. Prélèvement d’échantillons
   1. Collecter et stocker les échantillons directement dans l’éthanol à 70 %. Recueillir les différentes castes lorsque cela est possible.

Résultats

Les méthodes décrites ici permettent une étude détaillée des simples et des yeux composés des fourmis. La vue dorsale de la tête à l’aide de techniques de la photomicrographie Z-pile d’imagerie permet d’obtenir un aperçu de la présentation du système visuel (Figure 1). Il s’agit d’une bonne préparation pour les dissections et pour déterminer l’angle de coupe souhaité. Cette technique est également utile pour prendre des mesures telles que la largeur de la têt.......

Discussion

La suite des méthodes décrites ci-dessus permettent une enquête efficace sur le système optique de fourmis et autres insectes. Ces techniques d’informent notre compréhension de la résolution d’échantillonnage, une sensibilité optique et sensibilité potentielle de polarisation de le œil à l’étude. Cette connaissance fournit une base importante pour physiologique et comportementaux enquête sur leurs capacités visuelles. En outre, alors que les méthodes détaillées ici ont mis l’accent sur les systèmes visuels de fourmi, ces.......

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article

Nom	Entreprise	Numéro de catalogue	Commentaires
Fourmi	Myrmecia midas
Stéréomicroscope	Leica M205 FA
Revêtement par pulvérisation cathodique	Pro Sci Tech
Ethanol	Sigma Aldrich
Boîte de Pétri	ProSciTech
Microscope de dissection	Leica MZ6
Insect Pin	ProSciTech
Vernis à ongles incolore	Sans marque : de n’importe quel magasin
Lame	ProSciTech
Lame de rasoir	ProSciTech
Foreceps	ProSciTech
Cover slip	ProSciTech
Microscope composé	Leica DM5000 B
Glutaraldéhyde	Sigma Aldrich
Paraformalydéhyde	Sigma Aldrich
Chlorure de potassium (KCl)	Sigma Aldrich
(Na2HPO4)	Sigma Aldrich
Di-Hydrogen Phosphate de potassium (KH2PO4)	Sigma Aldrich
Sodium Chlorure (NaCl)	Sigma Aldrich
Osmium tétroxyde	Sigma Aldrich
Acétone	Sigma Aldrich
Araldite Résine époxy	Sigma Aldrich
Toluidie Blue	Sigma Aldrich
Hotplate	Riechert HK120

de cosmétiques de verre Hydrogène di-sodique Pasteur pipette Sigma Aldrich