Method Article

Analyse le rôle des plasmides multi-copies dans l’évolution de la résistance aux antibiotique

DOI:

10.3791/57386

May 2nd, 2018

In This Article

Summary

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Nous présentons ici une méthode expérimentale pour évaluer le rôle des plasmides multi-copies dans l’évolution de la résistance aux antibiotique.

Abstract

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Multicopie plasmides sont extrêmement abondants chez les procaryotes, mais leur rôle dans l’évolution bactérienne reste mal comprise. Récemment, nous avons montré que l’augmentation en nombre de copies du gène par cellule fournie par plasmides multi-copies pourrait accélérer l’évolution des gènes codés plasmide. Dans ce travail, nous présentons un système expérimental pour tester la capacité de Multicopie plasmides à promouvoir l’évolution des gènes. À l’aide de méthodes simples de biologie moléculaire, nous avons construit un modèle de système où un gène de résistance aux antibiotiques peut être inséré dans Escherichia coli MG1655, dans le chromosome ou sur un plasmide Multicopie. Nous utilisons une approche de l’évolution expérimentale pour propager les différentes souches au titre de l’augmentation des concentrations d’antibiotiques et nous mesurons la survie des populations bactériennes au fil du temps. Le choix de la molécule antibiotique et le gène de résistance est donc que le gène peut seulement conférer résistance grâce à l’acquisition de mutations. Cette approche « évolutionniste al Rescate » fournit une méthode simple pour tester le potentiel des plasmides multi-copies pour favoriser l’acquisition de la résistance aux antibiotique. Dans l’étape suivante du système expérimental, les bases moléculaires de résistance aux antibiotique sont caractérisés. Pour identifier les mutations responsables de l’acquisition de la résistance aux antibiotique nous utilisons profond séquençage de l’ADN des échantillons obtenus à partir de clones et de populations entières. Enfin, pour confirmer le rôle des mutations du gène à l’étude, les reconstituer en arrière-plan parental et tester le phénotype de résistance des souches qui en résulte.

Introduction

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La résistance aux antibiotique chez les bactéries est un problème majeur de santé1. À un niveau fondamental, la propagation de la résistance aux antibiotique chez les bactéries pathogènes est un exemple simple de l’évolution par sélection naturelle2,3. Autrement dit, l’utilisation d’antibiotiques génère de sélection de souches résistantes. Un problème majeur en biologie de l’évolution, est donc de comprendre les facteurs qui influencent la capacité des populations bactériennes à évoluer de la résistance aux antibiotiques. Expériences de sélection ont émergé comme un outil très puissant ....

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Protocol

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1. construction du système expérimental codant le gène de résistance aux antibiotiques

Remarque : Ici MG1655 d’e. coli a été utilisé comme la souche réceptrice du gène plasmidique ou chromosomique-codé la résistance aux antibiotiques. Le gène de résistance aux antibiotiques est encodé dans le chromosome ou un plasmide Multicopie dans une souche sinon isogénique (Figure 1).

  1. Insertion du gène de résistance aux antibiotiques dans le λ phage intégration site (attB)20 du chromosome de MG1655.
    1. Amplifier 500 PB régions aux deux extrémités ....

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Results

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Dans nos travaux précédents, on a étudié l’évolution le gène les β-lactamase blaTEM-1 vers conférant la résistance à la troisième génération de céphalosporines ceftazidime12 . Ce gène a été choisi parce que, bien que TEM-1 ne confère pas de résistance à la ceftazidime, mutations blaTEM-1 peuvent élargir l’éventail des activités de TEM-1 d’hydrolyser les céphalosporines comme ceftazidime29. Enzymes de r.......

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Discussion

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Nous présentons un nouveau protocole combinant biologie moléculaire, évolution expérimentale et profond séquençage de l’ADN visant à examiner le rôle des plasmides multi-copies dans l’évolution de la résistance aux antibiotique chez les bactéries. Bien que ce protocole combine les techniques de différentes disciplines, toutes les méthodes nécessaires pour le développer sont simples et peuvent être effectuées dans un laboratoire de microbiologie ordinaire. Les étapes plus critiques dans le protocole sont probablement la c.......

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Disclosures

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Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Acknowledgements

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Ce travail a été soutenu par l’Instituto de Salud Carlos III (Plan Estatal de I + D + je 2013-2016) : subventions CP15-00012, PI16-00860 et CIBER (CB06/02/0053), cofinancé par le Fonds européen de développement régional '' une façon d’atteindre l’Europe '' (FEDER). JAE est soutenue par le programme Atracción de talento du gouvernement de la région de Madrid (2016-T1/BIO-1105) et la j’ai + D Excelencia de l’espagnol Ministerio de Economía, Industria y Competitividad (BIO2017-85056-P). ASM est soutenu par une bourse de recherche Miguel Servet de l’Instituto de Salud Carlos III (MS15/00012) cofinancés par le Fonds Social européen « Investir dans votre avenir » (....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
ThermocycleurBioRadC1000
ÉlectroporateurBiorRad1652660
Cuvettes d’électroporationSigma-AldrichZ706078
NanoDrop 2000/2000cThermo Fisher ScientificND-2000Déterminer la qualité de l’ADN en mesurant les rapports d’absorbance 260nm/280nm et 260nm/230nm
IncubateurMemmertUF1060
Incubateur (agitateur)Cole-Parmer LtdSI500
Alimentation par électrophorèseBioRad1645070Électrophorèse sur gel d’agarose
Chambre d’électrophorèseBioRad1704405Électrophorèse sur gel d’agarose
PippettesBiohit725020, 725050, 725060, 725070
PipettesmulticanauxBiohit728220, 728230,
728240
Lecteur de plaques Synergy HTXBioTekBTS1LF
Boucles d’inoculationSigma-AldrichI8388
Plaques 96 puitsFalcon351172
LBBD DifcoDF0446-17-3
LBagar Fisher scientificBP1425-500
Phusion PolyméraseThermo Fisher ScientificF533S
Gibson AssemblyNew England BiolabsE2611S
Enzymes de réstricationFermentas FastDigest
AntibiotiquesSigma-Aldrich
QIAprep Spin MiniprepKit Qiagen27104Kit d’extraction de plasmides
Wizard Kit de purification d’ADN génomiquePromegaA1120Kit d’extraction d’ADNg
DNeasy Blood & Kits de tissusQiagen69506Kit d’extraction d’ADNg
Cuvettes d’électroporationde PétriSigma-Aldrich
Sigma-AldrichD9054
CryotubesClearLine390701
plaques à 96 puits (-80º ; C stockage)Thermo Fisher Scientific249945
QuantiFluor dsDNA SystemPromegaE2670Quantification de la concentration de l’ADN
AgaroseBioRad1613100Électrophorèse sur gel d’agarose
50x tampon TAEBioRad1610743Électrophorèse sur gel d’agarose
T4 Polynucléotide kinaseThermo Fisher ScientificEK0031
T4 ADN LigaseThermo Fisher ScientificEL0014
Boîtes Z706078

References

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  1. Neill, J. TACKLING DRUG-RESISTANT INFECTIONS GLOBALLY: FINAL REPORT AND RECOMMENDATIONS. Review on Antimicrobal Resistance. , (2016).
  2. Palmer, A. C., Kishony, R. Understanding, predicting and manipulating the genotypic evolution of antibiotic resistance. Nat Rev Genet. 14 (4), 243-248 (2013).
  3. M....

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Multicopy PlasmidsAntibiotic ResistanceExperimental EvolutionEscherichia coliGene Copy NumberPlasmid ConstructionDeep DNA SequencingEvolutionary RescueAntibiotic SelectionMutation Analysis

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