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Article de méthode

Production de souris transgéniques par des gènes : une méthode Simple et très efficace pour l’étude directe des fondateurs

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DOI :

10.3791/57609

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7 octobre 2018

Dans cet article

Résumé

Nous présentons ici un protocole visant à promouvoir l’intégration du transgène et la production de souris transgéniques fondateur avec grande efficacité par une simple injection d’un vecteur lentiviral dans l’espace périvitellin d’un ovocyte fécondé.

Résumé

Depuis près de 40 ans, injection d’ADN pronucléaire représente la méthode standard pour générer des souris transgéniques avec intégration aléatoire des transgènes. Une telle procédure systématique est largement utilisée dans le monde entier et sa principale limitation réside dans l’efficacité médiocre de l’intégration de transgene, ce qui entraîne un faible rendement des animaux fondateurs. Seulement quelques pour cent des animaux nés après l’implantation des ovocytes fécondés injectés ont intégré le transgène. En revanche, les vecteurs LENTIVIRAUX sont des outils puissants pour le transfert de gène intégrative et leur utilisation pour transmettre les ovocytes fécondés permet une production très efficace du fondateur de souris transgéniques avec un rendement moyen supérieur à 70 %. En outre, toute souche de souris peut être utilisé pour produire des animaux transgénique et la pénétrance d’expression du transgène est extrêmement élevée, supérieur à 80 % avec des gènes transgénèse médiée par rapport à la microinjection de DNA. La taille du fragment ADN qui peut être des marchandises par le vecteur lentiviral est limitée à 10 Ko et représente la limitation majeure de cette méthode. À l’aide d’un simple et facile à exécuter la procédure d’injection sous la zone pellucide des ovocytes fécondés, plus de 50 animaux fondateurs peut être produites en une seule séance de microinjection. Une telle méthode est très adaptée pour effectuer, directement aux animaux fondateurs, gain rapide et perte de fonction ou de régions d’ADN génomiques écran pour leur capacité à contrôler et réglementer gene expression in vivo.

Introduction

Le travail de pionnier de Gordon et coll. en 1980 ont montré qu’après l’implantation chez des souris pseudopregnant, l’injection d’ADN de plasmide dans pronucléus mâle d’ovocytes fécondés peut produire la production d’animaux transgéniques qui intègre la l’ADN de plasmide1. La démonstration que les mammifères transgéniques peuvent être générés a eu un impact énorme sur les sciences de la vie mondiales, ouvrant la voie aux nouveaux champs de recherche pour les sciences fondamentales et sciences biomédicales translationnelles. Au cours des quatre dernières décennies, la microinjection de DNA est devenu une pratique courante. Bie....

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Protocole

Toutes les procédures qui comprennent le travail animal ont obtenu une approbation éthique et ont été autorisés par le Ministère Français de la recherche et l’éducation sous le numéro APAFIS #5094-20 16032916219274 v6 et 05311.02. L’animalerie de l’ICM PHENOPARC a été accrédité par le Ministère Français de l’Agriculture sous le numéro d’agrément B75 13 19. Le protocole général doit réaliser chaque acte dans un délai précis qui est résumé dans la Figure 1.

1. animal achat et préparation de base composés

  1. Achat animaux
    1. Commandez 25 hommes vasectomisés B6CBAF1/JRj qui sont de 8 semaines d’âge (gén....

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Résultats

Animaux transgéniques ont été générés en utilisant le protocole présenté ici. Représentant les résultats tant omniprésents et expression de transgene spécifiques de type de cellule sont illustrées.

Expression constitutive de transgènes

Promoteurs omniprésents sont des outils de recherche fondamentale pour exprimer des transgènes de façon soutenue et ef.......

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Discussion

L’injection de périvitellin de vecteurs LENTIVIRAUX dans les ovocytes fécondés décrites ici a entraîné la production d’embryons transgéniques qui ont rapporté plus de 70 % d’embryons transgéniques par rapport au nombre total d’embryons collectés. Ce résultat est conforme aux précédents rapports et illustre la spécificité de la procédure2,7,10,11,12. En compara.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêt à divulguer.

Remerciements

Nous remercions Magali Dumont et Rolando Meloni pour une lecture critique du manuscrit iVector et carottes ICM Phenoparc d’assistance technique dans la production vecteur lentiviral et respectivement au logement des animaux. Ce travail a été soutenu par l’Institut hospitalo-universitaire de Neurosciences Translationnelles de Paris, IHU-A-ICM, Investissements d’avenir ANR-10-IAIHU-06. P.R. a reçu de financement pour l’Association de Langue Française pour l’Etude du Diabète et des Maladies Métaboliques (ALFÉDIAM) et un mixte FRDJ / INSERM grant.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
PMSG 50UISigmaG4527
hCG 5000UISigmaCG5-1VL
NaClSigma7982
100 mm Boîte de PétriDutsher353003
4 puits Nunc DishDutsher56469Plat IVF
M2 mediumSigmaM7167
M16 mediumSigmaM7292
0,22 et micro ; m Filtre à seringueDutsher146611
Hyaluronidase Enzyme 30mgSigmaH4272l’embryon de souris Insuline
sérum VWR613-3867Terumo Myjector
Pince courbeMoria2183
Ciseaux courbesMC26tubes d’aspirateur
pour pipettes microcapillaires calibréesSigmaA5177-5EA
Capillaires en verre borosilicaté AppareilHarvardGC 100-10
Extracteur de micropipette horizontalNarishigePN-30
MicroforgeNarishigeMF-900
Microscope inverséNikonTransferman NK2 5188Un éclairage de contraste à modulation Hoffman est nécessaire
MicromanipulateurEppendorfCelltram air
Controler de maintien de pipetteEppendorfFemtojet
Huile minéraleSigmaM8410testé sur l’embryon de souris
Micro-injecteurEppendorfFemtojetPeut être utilisé pour injecter de l’ADN ou des vecteurs viraux
Dumont # 5pince MoriaMC 40
vannas micro ciseauxMoria9600
IsofluranecentravetISO005ISO-VET 100 % 250ml
ocrygelcentravetOCR002
Povidone iodurecentravetVET001vetedine 120ml
BuprénorphinecentravetBUP002Buprecare 0,3Mg/ml 10ml
Tris-HClSigmaT5941Chlorhydrate de Trizma
EDTASigmaE9884
SDSSigma436143
NaClSigmaS7653poudre
protéinase KSigmaP2308  ;
oneTaq kitNEBM0480L
AmorcesEurogentec
Bande de 8 tube PCR4titude4ti-0781
Thermocycleur 96 puitsApplied Biosystems4375786Veriti
Genomic DNA mini kitinvitrogenK1820-02
Nanodrop 2000Thermo ScientificND-2000C  ;
qPCR Master mixRoche4887352001SYBR Green  ;
Plaque multipuits 384Roche5217555001
instrument qPCR 384 puitsRoche5015243001LightCycler 480
testé sur Moria Ensembles de de

Références

  1. Gordon, J. W., Scangos, G. A., Plotkin, D. J., Barbosa, J. A., Ruddle, F. H. Genetic transformation of mouse embryos by microinjection of purified DNA. Proceedings of the National Academy of Science USA. 77 (12), 7380-7384 (1980).
  2. Bock, T. A., Orlic, D., Dunbar, C. E., Broxmeyer, H. E., Bodine, D. M.

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Réimpressions et autorisations

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