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Microscopie de lumière-feuille pour la visualisation en trois dimensions des cellules immunitaires humaines

DOI:

10.3791/57651

June 13th, 2018

In This Article

Summary

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Nous présentons ici un protocole afin de visualiser les cellules immunitaires noyées dans une matrice tridimensionnelle (3D) collagène microscope à lumière-feuille. Ce protocole précise également comment suivre la migration cellulaire en 3D. Ce protocole peut être utilisé pour d’autres types de cellules en suspension dans la matrice 3D.

Abstract

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In vivo, l’activation, la prolifération et la fonction des cellules immunitaires tous se produisent dans un environnement de tridimensionnel (3D), par exemple dans les ganglions lymphatiques ou des tissus. Jusqu'à date, la plupart des systèmes in vitro reposent sur une surface bidimensionnelle (2D), tels que plaques de culture cellulaire ou de lamelles. De façon optimale de reproduire les conditions physiologiques in vitro, nous utilisons une matrice de collagène 3D simple. Collagène est l’une des principales composantes de la matrice extracellulaire (ECM) et a été largement utilisé pour constituer des matrices 3D. Pour l’imagerie 3D, la technologie de microscopie de lumière-feuille récemment développés (également dénommée microscopie illumination seul plan) est décrit avec acquisition haute vitesse, grande profondeur, faible de blanchiment et photocytotoxicité. En outre, microscopie à lumière-feuille est particulièrement avantageuse pour la mesure à long terme. Nous décrivons ici un protocole optimisé comment configurer et gérer les cellules immunitaires humaines, par exemple primaire humains lymphocytes T cytotoxiques (CTL) et les cellules tueuses naturelles (NK) dans la matrice de collagène 3D pour une utilisation avec la microscopie en lumière-feuille pour l’imagerie de cellules vivantes et échantillons fixes. La procédure d’acquisition d’images et analyse de la migration cellulaire sont présentés. Une attention particulière est donnée pour mettre en évidence les étapes critiques et des facteurs pour la préparation des échantillons et l’analyse des données. Ce protocole peut être utilisé pour d’autres types de cellules en suspension dans une matrice de collagène 3D et n’est pas limité aux cellules immunitaires.

Introduction

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La plupart des connaissances sur la migration cellules vient de 2D expériences1,2,3, qui sont normalement effectués dans un verre ou une surface en plastique d’une culture/imagerie plat. Toutefois, un scénario physiologique exige, dans la plupart des cas, un micro-environnement 3D, dans laquelle la matrice extracellulaire (ECM) joue un rôle décisif. ECM non seulement fournit l’essentiel de la structure 3D afin de maintenir la morphologie cellulaire appropriée, mais offre également des signaux de survie ou des indications directionnelles pour un fonctionnement optimal de nombr....

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Protocol

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Les recherches menées pour la présente étude avec le matériel humain (chambres de système réduction leucocytaire de donneurs de sang humain) sont autorisé par le Comité d’éthique local (déclaration de 16.4.2015 (84/15 ; Prof. Dr. Rettig-Stürmer)) et suit les directives correspondantes.

1. préparation de la Solution de collagène neutralisée (500 µL)

  1. Transférer 400 µL de la solution mère de collagène réfrigérés (10,4 mg/mL) dans un tube stérile de 1,5 mL sous le capot de la culture cellulaire. Lentement, ajouter 50 µL de réfrigérée 10 x PBS (pH de 7,0 à 7,3) à 400 µL de solution mère de collagène réfrigérés. Mélanger la solution de ....

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Results

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Formation de saillie au cours de la migration des cellules T est un processus très dynamique, qui est dépendante de l’actine. Pour visualiser la formation de saillie de CTL humain primaire, nous transfectées transitoirement une protéine mEGFP fusionné pour étiqueter le cytosquelette d’actine en CTL comme décrit avant11. Un jour après la transfection, les cellules ont été incorporés dans la matrice de collagène. Piles d’images ont été acquises chaque 40 s avec une t.......

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Discussion

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La plupart des essais in vitro sont réalisées sur une surface 2D, par exemple dans les plaques de culture cellulaire, Pétri ou à lamelles, considérant que l’expérience in vivo des cellules, en particulier les cellules immunitaires, pour la plupart un micro-environnement 3D. Des preuves nouvelles montre que les patrons de migration des cellules immunitaires diffèrent entre 2D et 3D de scénarios17. En outre, les profils d’expression des cellules tumorales sont également différents .......

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Disclosures

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Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts, financier ou commerciaux.

Acknowledgements

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Nous remercions l’Institut Hemostaseology clinique et médecine de Transfusion pour la fourniture de sang du donneur ; Carmen Hässig et Cora Hoxha pour l’aide technique excellente. Nous remercions Jens Rettig (Université de la Sarre) pour le vecteur mis à jour le pMAX, Roland Wedlich-Söldner (Université de Münster) pour la construction de LifeAct-Ruby originale et Christian Junker (Université de la Sarre) pour générer la construction LifeAct-mEGFP. Ce projet a été financé par Sonderforschungsbereich 1027 (projet A2 à B.Q.) et 894 (projet A1 à M.H.). Le microscope de lumière-feuille a été financé par la DFG (GZ : FUGG 19-1 INST 256/4).

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Fibricol, solution de collagène bovinAdvanced Biomatrix  ;#5133-20MLMatrice de collagène
0,5 M Solution NaOHMerck1091381000pour neutraliser la solution Fibricol
Agarose à fusion ultra-faibleAffymetrix32821-10GMPréparation d’échantillons dans des cellules T CD8 humaines à faible teneur en c[Col]
Dynabeads Untouched Human CD8 Cell KitThermo Fisher11348DIsolement des lymphocytes T CD8+ primaires humains à partir de PBMC
Dynabeads Activateur T humain CD3/CD28 pour l’expansion et l’activation des lymphocytesT Thermo Fisher11132DActivation des populations de CTL
Interleukine-2 recombinante humaineThermo FisherPHC0023Stimulation de CTL
P3 en culture Kit de solution primaireLonzaV4XP-30XXTransfection
Anticorps &alpha ;-PFN1, lapin, IgGAbcamab124904IF
Alexa Fluor 633 PhalloidinThermo FisherA22284IF
CellMask Orange Membrane plasmique Stain ThermoFisherC10045Fluorescent cell
label Tween 20SigmaP1379-250mLIF
Triton X-100Eurobio018774IF
DPBS Solution saline tamponnée au phopsphhate de DulbeccoThermo Fisher14190250IF
Albumine sérique bovineSigmaA9418-100GIF
Chèvre & alpha ; Rabbit 568, IgG, rabbitThermo FisherA-11011IF
Lightsheet Z.1 (Microscopie à feuillet de lumière)ZeissN.A.
Hotte de culture cellulaireThermo FisherHeraSafe KS
Incubateur de culture cellulaire HERACell 150i  ;Thermo FisherN.A.
Centrifugeuses 5418 et 5452EppendorfN.A.
PippettesEppendorf3123000039, 3123000020, 3123000063
Pippette pointesVWR89079-444, 89079-436, 89079-452  ;
Tubes de 15 mLSarstedt  ; 62.554.002
Capillaires 50 & micro ; LVWR (Marque)613-3373Zeiss LSFM Préparation d’échantillons
Piston pour capillairesVWR (Marque)BRND701934"Tampons avec pointe en téflon » Préparation d’échantillons LSFM
MColorPhast Pointes de pHMerck1095430001pour tester le pH des seringues neutralisées Fibricol
BD Plastipak 1mLBDZ230723  ; ALDRICHPréparation alternative d’échantillons
Pâte à modeler (Hasbro Play-Doh A5417EU7)Play-DohN.A.
Imaris file converterBitplanedisponible à l’adresse http ://www.bitplane.com  ;Convertir des fichiers d’imagerie au format de fichier Imaris
Imaris 8.1.2 (MeasurementPro, Track, Vantage)Bitplanedisponible à l’adresse http ://www.bitplane.com  ;Analyse de données d’imagerie 3D et 4D

References

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  1. Decaestecker, C., Debeir, O., Van Ham, P., Kiss, R. Can anti-migratory drugs be screened in vitro? A review of 2D and 3D assays for the quantitative analysis of cell migration. Med Res Rev. 27 (2), 149-176 (2007).
  2. Doyle, A. D., Petrie, R. J., Kutys, M. L., Yamada, K. M.

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