Article de méthode

Ex Vivo Imagerie calcique pour visualiser le cerveau réponses à signalisation endocrinienne chez la drosophile

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DOI :

10.3791/57701

2 juin 2018

Dans cet article

Résumé

Cet article décrit un protocole pour ex vivo imagerie calcique du cerveau drosophile . Dans cette méthode, des composés naturels ou synthétiques peuvent être appliqués à la mémoire tampon pour tester leur capacité à activer les neurones particulières dans le cerveau.

Résumé

Orgue-de communication par la signalisation endocrinienne, par exemple, de la périphérie vers le cerveau, est essentielle au maintien de l’homéostasie. Comme un animal modèle pour la recherche endocrinienne, Drosophila melanogaster, qui a sophistiqué outils génétiques et l’information de génome, est plus en plus utilisé. Cet article décrit une méthode pour l’imagerie calcique des explants de cerveau de drosophile . Cette méthode permet la détection de la signalisation directe d’une hormone dans le cerveau. Il est bien connu que beaucoup d’hormones peptidiques agissent par l’intermédiaire de récepteurs couplés aux protéines G (RCPG), dont l’activation entraîne une augmentation de la concentration intracellulaire du Ca2 +. Activation neurale élève aussiCa 2 + intracellulaire, de l’influx de Ca2 + et de la libération de Ca2 + stocké dans le réticulum endoplasmique (re). Un capteur de calcium, GCaMP, permet de surveiller ces changements de Ca2 + . Dans cette méthode, GCaMP est exprimé dans les neurones d’intérêt, et le cerveau larvaire exprimant le GCaMP est disséqué et cultivé ex vivo. Le peptide de test est ensuite appliqué à l’explant de cerveau, et les changements fluorescents dans GCaMP sont détectés à l’aide d’un microscope confocal de rotation disque équipé d’une caméra CCD. En utilisant cette méthode, n’importe quelle molécule soluble dans l’eau peut être testée, et divers événements cellulaires associés à l’activation neuronale peuvent être photographiées en utilisant les indicateurs fluorescents appropriés. En outre, en modifiant la chambre d’imagerie, cette méthode peut servir à l’image des autres organes de la drosophile ou les organes d’autres animaux.

Introduction

Orgue-de communication est une stratégie évolutivement conservée pour le maintien de l’homéostasie pour faire face aux changements environnementaux. Chez l’homme, une variété d’arereleased hormones des glandes endocrines dans la circulation. Beaucoup de ces hormones ciblent l’hypothalamus du cerveau, qui régit les processus métaboliques et des comportements fondamentaux tels que l’alimentation1,2. Beaucoup d’hormones ont été découverts à l’aide de modèles mammifères. Cependant, les mécanismes de leur action, en particulier les réseaux proposé auxquelles ils participent, demeurent en grande partie incertains.

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Protocole

1. préparation des Explants de cerveau larvaire

  1. Faire une salle d’imagerie.
    NOTE : Enregistrement Stable exige que les explants de cerveau être attaché. Ici, une chambre d’imagerie artisanaux, de faible coût est utilisée dans le Ca2 + système d’imagerie.
    1. À l’aide de pinces, gratter le bas au centre d’un plat de culture en plastique (35 x 10 mm) pour créer une brèche pour le ganglion ventral du cerveau larvaire rendre le montage plus facile (étape 1.3, Figure 1).
    2. Avec un cure-dent, placez une petite goutte de colle de chaque côté de la dent et fixer une tige de tungstène (0,125 mm de diamètre, 6 à....

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Résultats

Utilisant ce protocole, l’activation des cellules productrices d’insuline du cerveau (IPCs) de l’hormone peptidique, CCHa2, a été examinée. PISC du cerveau sauvage ont été marquées avec GCaMP6s à l’aide d’une combinaison de dilp2 -GAL412 (un don de Dr. Rulifson) et SAMU-GCaMP6s13 (Don de m. Kim). Explants de cerveau larvaires ont été traitées avec un peptide synthétique de CCHa2, et la fluorescence de GCaMP6s a été enregist.......

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Discussion

Le Ca2 + imagerie méthode décrite ici est un système utile pour tester le fonctionnement des hormones dans le cerveau. In vivo, le cerveau reçoit des hormones de divers organes endocriniens. En outre, le cerveau perçoit sans cesse croissant d’informations sensorielles, qui entraîne l’activation neuronale spontanée. Ce système ex vivo élimine ces bruits et donne un meilleur rapport signal/bruit que l’imagerie in vivo . Dans ce système, les molécules peuvent être testés séparément ou e.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été pris en charge par des subventions pour la recherche scientifique (15K 07147, 17K 07419) de pages JSP (pour Hiroshi Ishimoto, Hiroko Sano), une subvention de recherche de la Fondation Inamori (sur HI) et le programme commun Usage/Centre de recherche pour Developmental Medicine, à l’Institut d’embryologie moléculaire et génétique, Université de Kumamoto (a HS). Nous remercions le Dr Azusa Kamikouchi et M. Daichi Yamada pour leur aide dans l’utilisation du système d’imagerie.

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Tige de tungstèneA-M systems, Sequim, WA, USA717000
Blu TackBostik, Paris, France3049100adhésifs réutilisables de type mastic
Verre de montre, carré, 1 5/8 inCarolina Biological Supply Company, Burlington, NC, USA742300
PBSTAKARA Bio Inc., Kusatsu, Shiga, JaponT900Sels tamponnés phosphatés
CCHa2SCRUM Inc., Tokyo, JaponPeptide synthétisé par Custum
GhrerinPeptide institute Inc., Osaka, Japon4372-s
NociceptinPeptide institute Inc., Osaka, Japon4313-v
Axio Imager A2Carl Zeiss, Oberkochen, AllemagneAxio Imager A2fluorescence
Objectif W N-Achroplan 20x/0.5 M27Carl Zeiss, Oberkochen, Allemagne420957-9900-000objectif à immersion dans l’eau
P-725 Scanner d’objectif PIFOC à longue portéePhysik Instrumente GmbH & Co. KG, Karlsruhe, AllemagneN/Alentille activée par piézoélectrique
CSU-W1Yokogawa Electric Corporation, Tokyo, JaponCSU-W1Tête confocale à disque rotatif
ImagEM C9100-13Hamamatsu Photonics, Sizuoka, JaponC9100-13Caméra EM-CCD
OBIS 488 nm LS 60 mWCoherent, Santa Clara, CA, USA1178770488-nm laser 488/
568/647 nm Yokogawa séparateur de faisceau dichroïqueSemrock, Rochester, NY, États-UnisDi01-T405/488/568/647-13x15x0.5séparateur de faisceau dichroïque
528/38 nm Filtre passe-bande monobande BrightLineSemrock, Rochester, NY, États-UnisFF01-528/ Filtre d’émission 38-25
et micro ; Directeur,Open Imaging, Inc.N/Ahttps://micro-manager.org
ImageJU. S. National Institutes of HealthN/Ahttps://imagej.nih.gov/ij/
TurboRegPhilippe Thé ; venaz, Groupe d’imagerie biomédicale, École polytechnique fédérale de LausanneN/Ahttp://bigwww.epfl.ch/thevenaz/turboreg/
microscope à Unité de scanner confocal à

Références

  1. Morton, G. J., Schwartz, M. W. Leptin and the central nervous system control of glucose metabolism. Physiological Reviews. 91 (2), 389-411 (2011).
  2. Stanley, S., Wynne, K., McGowan, B., Bloom, S. Hormonal regulation of food intake. Physiological Reviews. 85 (4), 1131-11....

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Mots-clés

Cerveau de Drosophilaimagerie ex vivocapteur GCaMPmicroscopie confocalehormone peptidiquesignalisation GPCRactivation neuronaleexplant c r bral

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