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Article de méthode

Sensille unique Recordings pour Locust Palp sensilles basiconiques

8.2K vues

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DOI :

10.3791/57863

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23 juin 2018

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Dans cet article

Résumé

Cet article décrit un protocole détaillé et très efficace pour les enregistrements de sensille unique de la basiconica de sensilles sur les palpes des insectes pièces buccales.

Résumé

Les palpes de pièces buccales de Criquet pèlerin sont considérés comme des organes gustatifs classiques qui jouent un rôle important dans le choix des aliments d’un criquet, en particulier pour la détection des signaux chimiques non volatile par l’intermédiaire de sensilles chétiformes (précédemment nommé sensilles terminales (ou sensilles huppés). Il y a maintenant de plus en plus évident que ces palpes ont également une fonction olfactive. Un récepteur odorant (LmigOR2) et une protéine de liaison odorant (LmigOBP1) ont été localisés dans les neurones et les cellules accessoires, respectivement, dans le basiconica de sensilles des palpes. Sensille unique enregistrement (SSR) est utilisé pour enregistrer les réponses des neurones de récepteur odorant, qui est une méthode efficace de dépistage actifs ligands sur les récepteurs spécifiques odorant. SSR est utilisé dans les études fonctionnelles des récepteurs odorants dans des sensilles palpe. La structure de la basiconica de sensilles située sur le dôme des palpes diffère quelque peu de la structure de celles sur les antennes. Donc, lorsque vous effectuez une SSR provoquée par les substances odorantes, quelques conseils spécifiques peut être utile pour l’obtention de résultats optimaux. Dans cet article, un protocole détaillé et très efficace pour un SSR de palp insectes sensilles basiconiques est introduit.

Introduction

Animaux ont développé une gamme d’organes chemosensoriels qui détectent les signaux chimiques exogènes. Chez les insectes, les plus importants organes chemosensoriels sont les antennes et les palpes. Sur ces organes, plusieurs types de poils chemosensoriels, appelés chemosensoriels sensilles, sont innervés par les neurones chemosensoriels (SCSN) dans les poils. Notes de sensilles chemosensoriels reconnaissent les signaux chimiques spécifiques par le biais de transduction d’un signal de stimulus chimiques à des potentiels électriques qui sont ensuite transférées jusqu’au système nerveux central1,,2,<....

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Protocole

1. préparation des Instruments et des insectes

  1. Préparation de tungstène électrodes et des stimuli solutions
    1. Fixer un nouveau fil de tungstène (diamètre de 0,125 mm, longueur 75 mm) dans un micromanipulateur et aiguiser dans une solution de nitrite (NaNO2) sodium 10 % (p/v) dans une seringue à 10 V fourni par une source d’alimentation pendant environ 1 min avec un stéréomicroscope (grossissement de 40 X).
    2. Tremper le fil de tungstène affûté à plusieurs reprises dans la solution2 NaNO de 10 %, environ 4 mm 5 V < 1 min (Figure 1 a).
    3. Examiner le diamètre de la po....

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Résultats

Deux sous-types de sensilles (pb1 et pb2) sur le palpe maxillaire de Criquet pèlerin sont identifiées basées sur la dynamique de réponse différente à des substances chimiques odorantes (10 % 1-nonanol et 10 % d’acide nonanoïque). Les neurones en pb1 produisent significativement plus de pics pour 1-nonanol qu’à l’acide nonanoïque tandis que les neurones en pb2 sont significativement que moins activés par 1-nonanol par rapport à l’acide nonanoïque (Figure 4). H.......

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Discussion

Insectes s’appuient sur les palpes pour détecter les odeurs de nourriture, et leurs palpes sont censées jouer un rôle important dans la spéciation13,27. Les palpes sont de simples organes olfactifs et suscitent un intérêt croissant comme un modèle attrayant pour l’exploration de le neuromoléculaire réseaux sous-jacents chémosensation28.

Insecte labellar et palpe SSRs ont été réalisées avec succès sur la Dros.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail est soutenu par une subvention de la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (No.31472037). Toute mention de noms commerciaux ou des produits commerciaux dans cet article est uniquement dans le but de fournir des informations précises et n’implique pas une recommandation.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Fil de tungstèneADVENTW559504Utilisé pour fabriquer l’électrode et fixer le palpe
NaNO2Sigma-aldrich563218-25GUtilisé pour affûter le fil de tungstène
Alimentation CASyntechA2-70Fournir la tension lors de l’affûtage du fil de tungstène
StéréoscopeMoticSMZ-163Utilisé pour observer le affûtage du fil de tungstène
MicroscopeOlympusW-51Utilisé pour l’observation de la sensille sur le palpe maxillaire du criquet
Contrôleur intelligent d’acquisition de donnéesSyntechIDAC-4Affichage en temps réel à l’écran de tous les signaux avant et pendant l’enregistrement
Contrôleur de stimulusSyntechCS-55Utilisé pour le contrôle de l’application du stimulus
Électronique micromanipulateurC.M.D.TCFT-8301DUtilisé pour le mouvement mineur de l’électrode d’enregistrement
MicromanipulateurNarishigeMN-151Utilisé pour le mouvement mineur de l’électrode
de référence Haut-parleurEDIFIERR101T06Connecté à IDAC-4 et fournissant le son pour le signal
Base magnétiquePDOK-101Utilisé pour maintenir l’électrode et le tube de distribution du stimulus
Table d’isolation des vibrationsTianHeHAP-100-1208Utilisée pour isoler les vibrations de l’équipement
Lame de verreCITOGLASZBP-407Utilisée pour la fabrication de la base du MPH
Blu-tackBostikBlu-tack-45gFixation du fil de tungstène
Tube PasteurYAREWITEGPose du papier filtre contenant les solutions de stimulus

Références

  1. Carey, A. F., Carlson, J. R. Insect olfaction from model systems to disease control. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (32), 12987-12995 (2011).
  2. Leal, W. S.

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Réimpressions et autorisations

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