Article de méthode

Appareil pour la récolte de tissus Microcolumns

DOI :

10.3791/58289

25 octobre 2018

Dans cet article

Résumé

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nous décrivons ici un protocole pour la production de la récolte du site aiguilles qui peuvent servir à recueillir des tissus de la peau pleine épaisseur sans causer de donateurs cicatrices. Les aiguilles peuvent être combinés avec un système de collecte simple pour atteindre de gros volumes de récolte.

Résumé

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ce manuscrit décrit le processus de production pour un appareil de laboratoire, fabriqué à partir de composants sur étagère, qui peuvent être utilisés pour recueillir des microcolumns du tissu cutané de pleine épaisseur. La petite taille de le microcolumns permet aux donateurs sites guérir rapidement sans provoquer de donneuse, cicatrices, alors que la récolte pleine épaisseur tissulaire permet l’incorporation de tous les composants cellulaires et extracellulaires du tissu cutané, y compris ceux liée avec les régions cutanées plus profondes et les structures cutanées annexielle, qui doivent encore être reproduit avec succès en utilisant des tissus classiques, techniques d’ingénierie. Le microcolumns peut être appliqué directement sur les plaies de la peau pour augmenter la guérison, ou ils utilisable comme source de cellules/tissus autologues pour autres approches d’ingénierie tissulaire. Les aiguilles de récolte sont faites en modifiant les aiguilles hypodermiques standards et ils peuvent être utilisés seuls pour la récolte de petites quantités de tissu ou couplés à un système de collection axée sur l’aspiration simple (également fait partir de fournitures de laboratoire couramment disponibles) pour grand volume de récolte pour faciliter les études sur des modèles animaux grands.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Une greffe de peau autologue est le pilier de cicatrisation, mais il est limité par la rareté du site donneur et de la morbidité, conduisant à des efforts concertés au cours des dernières décennies pour développer de nouvelles options thérapeutiques pour remplacer une greffe de peau classique1,2 . Nous avons récemment mis au point une autre méthode de récolte de la peau afin de valoriser les avantages d’une greffe de peau pleine épaisseur tout en réduisant la morbidité du site donneur. En recueillant la pleine épaisseur peau sous la forme de petites (~0.5 mm de diamètre) « microcolumns », les sites donneurs sont en mesure de guérir rapidement et sans laisser de cicatrices dans des circonstances normales (pour les exceptions possibles, voir la section débat ci-dessous)3. Microcolumns peut être appliqué directement sur la plaie lits pour accélérer la fermeture de la plaie, réduire la contraction3et de restaurer une gamme variée de types de cellules épidermiques et dermiques et des structures fonctionnelles annexielle4, dont la plupart ne manquent pas dans une greffe de peau split-épaisseur classique ou actuelle bioengineered peau substituts5. La capacité de microcolumns pour augmenter la guérison et de leurs sites donneurs pour guérir sans laisser de cicatrices ont tous deux été indépendamment validés par d’autres groupes de recherche6,7.

Nous avons déjà développé un système de récolte de laboratoire pour permettre le regroupement des microcolumns à échelle8; Cependant, ce système est composé de nombreux composants personnalisés qui ne sont pas largement disponibles. Ici, nous décrivons en détail le processus car produisant récolte des aiguilles, ainsi que des systèmes de collecte simple, issus pour la plupart des composants sur étagère, qui peuvent être utilisés pour réaliser de grands volumes de récolte. L’appareil décrit dans ce manuscrit est adapté pour in vitro et travail animale, mais pas pour une utilisation chez l’homme. Un appareil clinique avec autorisation de la FDA pour l’application de cette technique chez l’homme est disponible dans le commerce mais n’est pas abordé en détail ici.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Protocole

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tous les travaux impliquant des animaux vivants et des échantillons de tissus d’origine animale ont été approuvés par le Massachusetts général hôpital institutionnels et animalier utilisation Comité (IACUC).

1. production de la récolte des aiguilles

  1. Programme d’installation de la phase de production
    1. Fixez un connecteur luer lock femelle sur un poste et monter le post sur une platine de rotation jusqu'à ce que le raccord luer lock au centre de la scène (Figure 1A).
    2. Positionner cette première étape de rotation verticale et montez-la perpendiculairement sur une étape de la deuxième rotation horizontale (Figure 1B).
    3. Monter la platine de rotation horizontale sur une scène de la traduction de deux axes (Figure 1B).
    4. Fixer la combinaison sur une surface stable, comme une carte de test optique.
    5. Séparément, monter un outil rotatif sur la même maquette, avec l’outil positionné en parallèle avec la maquette et à environ la même hauteur que le raccord luer lock sur la scène de combinaison de rotation/translation (Figure 1C).
    6. Installer deux disques à tronçonner concentriquement sur l’outil rotatif (un grain plus petit, plus faible diamant disque à tronçonner sur un disque à tronçonner Pierre grain plus gros, plus haut) (Figure 1D).
      Remarque : Sur un 9 mm, différence entre les diamètres des deux roues est généralement suffisant.
    7. Position une imposte d’origine avec un bras réglable l’outil rotatif, avec la lumière qui vise les molettes.
    8. Pour améliorer la visualisation, placez un microscope à dissection sur le paramétrage de la production pour que l’oculaire se concentre sur les plaques de coupe (Figure 1C).
      NOTE : Alternativement, utilisateurs peuvent porter lunettes loupe.
  2. Remodelage de la pointe de l’aiguille
    1. Portez des lunettes de protection et un masque chirurgical évitant de fines particules métalliques dans les yeux ou des voies respiratoires.
    2. Choisissez des aiguilles hypodermiques de la jauge de grosseur, basé sur les conditions expérimentales.
    3. Marquez la longueur prévue sur chaque aiguille récolte.
      Remarque : Pour la récolte de peau de porc, les aiguilles de 8 mm sont généralement suffisantes ; Bien que, la durée peut varier en fonction des besoins expérimentaux (e.g., épaisseur des tissus de la peau cible, calibre de l’aiguille). Généralement, une aiguille de calibre 19 fonctionne bien pour la peau de porc.
    4. Abaisser l’aiguille perpendiculairement à l’outil rotatif sous tension, à l’aide du bord du disque à découper extérieure à couper l’excédent de longueur de l’aiguille, au point marqué à l’étape 1.2.3.
    5. Connectez l’aiguille raccourcie et arrondi pour le connecteur luer lock femelle sur le stade de la production.
    6. Ajuster l’étape de rotation horizontale pour que l’aiguille soit à un angle de 12° parallèle pour les plaques de coupe sur l’outil rotatif (en changeant l’angle affectera la force nécessaire à l’insertion de l’aiguille).
    7. Allumez l’imposte et ajuster sa position tout en observant l’aiguille sous grossissement, jusqu'à ce que la lumière est réfléchie de la ligne médiane (dans la longueur) de l’aiguille.
    8. Mettez l’outil rotatif, puis utilisez l’étape de traduction pour faire avancer l’aiguille vers l’intérieur (diamant) coupe disque (Figure 2A).
    9. Garder, avançant l’aiguille doucement contre le disque de coupe jusqu'à ce que le disque a TRONCONNER atteigne environ la ligne médiane de l’aiguille (comme visualisées par réflexion de la lumière zénithale le long de la ligne médiane).
    10. Déplacez lentement la surface coupée de l’aiguille de la roue intérieure de diamant sur la roue extérieure de pierre à aiguille coupe la surface avec un vernis plus fin (Figure 2B).
    11. Retirer l’aiguille du disque à découper.
    12. L’étape de rotation verticale, faire tourner l’aiguille de 180°.
    13. Répétez les étapes 1.2.9-1.2.10 pour remodeler l’autre côté de l’aiguille.
      Remarque : L’aiguille doit maintenant avoir deux pointes de longueur approximativement égale (Figure 2 et 2D).
    14. Retirez l’aiguille du stade de la production.
    15. Nettoyer l’intérieur ennuyer avec un fil métallique qui est légèrement plus petit que le diamètre intérieur de l’aiguille.
    16. À l’aide d’un bâton de bois pointu (e.g., en brisant la fin du petit bâton en bois sur un coton-tige), éliminer les bavures qui peuvent être encore attachés aux bords de l’aiguille nouvellement formé.
      NOTE : Les aiguilles de récolte peut être électropoli et stérilisé par autoclave, si nécessaire.

2. récolte de tissus de peau

  1. Utiliser les aiguilles de récolte pour recueillir des microcolumns de peau de ex vivo des tissus ou des animaux vivants.
  2. Pour ex vivo peau tissulaire qui est mince (surtout des échantillons où la graisse sous-cutanée est manquant ou a été réglée de suite), placez le tissu cible sur l’ouverture d’un tube à centrifuger 50 mL ou empiler deux morceaux de tissu sur le dessus de l’autre, pour éviter d’endommager le n eedle conseils en les frappant contre des surfaces dures.
    Remarque : En vivo récolte d’animaux vivants, il est recommandé que l’épinéphrine et lidocaïne locale administré par injection intradermique d’analgésie et de réduire les saignements.
  3. Assembler le dispositif récolte selon la quantité de microcolumns nécessaire, tel que décrit ci-dessous.
  4. Option de volume faible-moyen :
    1. Pour récolter des petites et moyennes quantités de microcolumns, il suffit de remplir une seringue standard (10 à 20 mL seringues fonctionnent généralement bien) avec un soluté physiologique et branchez-le à une aiguille de récolte.
    2. Complètement Insérez l’aiguille récolte dans la peau du donneur, puis se rétracter.
    3. Pousser sur le piston de la seringue pour vider une solution saline à travers l’aiguille récolte et expulser la microcolonne qui se loge dans le trou de l’aiguille.
    4. Pour accélérer le processus de récolte, répétez l’étape 2.4.2 3 à 5 fois avant d’expulser le microcolumns à l’étape 2.4.3.
      Remarque : Il est souvent commode d’expulser le microcolumns dans une crépine de cellule standard pour faciliter la collecte ultérieure des microcolumns.
    5. Si les aiguilles sont encrassés, augmenter la pression sur le piston d’expulser le tissu collé et de retirer le sabot. Si tout simplement une pression croissante est insuffisante, insérer un fil métallique à travers l’ouverture de pointe de l’aiguille pour effacer le sabot dans l’aiguille alésage.
    6. Garder la microcolumns immergé dans salin ou moyenne avant utilisation pour éviter la dessiccation.
      Remarque : Avec un opérateur expérimenté, la méthode décrite ci-dessus peut servir à récolter des microcolumns à un taux d’environ 1 microcolonne par seconde.
  5. Option gros volumes :
    1. Créer un simple dispositif d’aspiration assistée qui peut être construits pour faciliter la collecte de grandes quantités de microcolumns.
      Remarque : Le dispositif se compose d’une récolte aiguille, seringue de 20 mL avec embout de luer lock, adaptateur d’aspiration généralement utilisé pour la liposuccion (Figure 3A) et le flacon d’aspiration stérile.
    2. Retirer le piston de la seringue de 20 mL.
    3. Connecter la seringue à l’adaptateur d’aspiration.
    4. Terminer l’assemblage en attachant une récolte aiguille sur la seringue (Figure 3B).
    5. Utilisez un morceau de tuyau d’aspiration stérile pour brancher l’adaptateur d’aspiration sur un flacon d’aspiration stérile. Assurez-vous que l’appareil de récolte est connecté à une entrée de boîte métallique qui permet au liquide de s’écouler dans le bac sans entrave (qui peut nécessitent une connexion à un port cartouche est marqué pour la sortie plutôt que d’apport).
    6. Connectez l’appareil à une source de pression négative.
      Remarque : La pression nécessaire dépend à l’aiguille diamètre et longueur, comme décrit précédemment8. Pour l’appareil décrit dans ce manuscrit, le système d’aspiration dans les salles d’opération typiques est généralement suffisant.
    7. Connecter une récolte aiguille sur la seringue.
    8. Récolter le microcolumns en insérant la récolte de l’aiguille dans la peau.
      Remarque : Le microcolumns sera aspiré la seringue par aspiration, puis déversés dans la cuve d’aspiration.
    9. Par intermittence, trempez l’aiguille récolte dans un récipient de sérum physiologique stérile pendant la procédure de récolte pour purger le système.
      Remarque : Cette chasse d’eau saline facilite le transport de la microcolonne et veille à ce qu’ils vous hydrater. Par ailleurs, un adaptateur luer de CFP raccordable au raccord luer lock de la seringue et à travers un tube de connexion, également à un sac de goutte à goutte saline de pendaison.
    10. Garder sous la main un fil métallique ou aiguille, qui est légèrement plus petit que le diamètre intérieur de l’aiguille de la récolte de calibre plus petit. Si l’aiguille est bouché, il peut être effacée en insérant le fil métallique dans le trou de l’aiguille.
    11. Lorsque la quantité désirée de microcolumns ont accumulé dans la cuve, débranchez l’appareil de succion, puis versez le contenu de la cuve d’aspiration dehors à travers un filtre pour recueillir les microcolumns.
  6. Après la récolte, appliquer un onguent antibiotique topique sur les sites donneurs.
    NOTE : Pansements supplémentaires ne sont généralement pas nécessaires pour les sites donneurs.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Les aiguilles récolte devraient être en mesure de recueillir des microcolumns des tissus de la peau pleine épaisseur avec environ un taux de réussite de 80 à 90 %, et chaque microcolonne devrait contenir, épiderme, derme et quelques graisse sous-cutanée (Figure 4). Si le taux de réussite de la récolte est faible, ou s’il devient difficile d’insérer une aiguille dans le tissu, puis une nouvelle aiguille est probablement nécessaire. Si le taux de réussite pour ...

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Les méthodes décrites ici sont destinées à permettre le regroupement des tissus microcolumns en quantité suffisante pour en vivo grandes études animales, utilisant des outils faits de fournitures de laboratoire disponibles dans le commerce. Cet appareil a été utilisé précédemment dans la récolte de tissus excisés de peau humaine4,9 , mais aussi de peau de porcs sur pied3. Les paramètres spécifiques décrits sont ceux qui se sont ré...

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Les auteurs sont des coïnventeurs sur les brevets concernant la technologie décrite dans cet article, de qui ils ont reçu un octroi de licences et les redevances auprès de leur institution, Massachusetts General Hospital. J. Tam consulte également de Medline Industries, Inc., qui détient la licence commerciale pour cette technologie.

Remerciements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ce travail a été soutenu en partie par l’armée, marine, NIH, armée de l’Air, VA et Health Affairs pour soutenir l’effort de l’AFIRM II, sous le no Award. W81XWH-13-2-0054. L’activité médicale Acquisition de recherche de l’armée d’États-Unis, 820 Chandler Street, Fort Detrick, MD 21702-5014 est le Bureau d’acquisition attribution et l’administration. Opinions, les interprétations, les conclusions et les recommandations sont celles de l’auteur et ne sont pas nécessairement approuvées par le ministère de la défense.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Roue diamantéeDremel545
Aiguille hypodermique (19G)Fisher Scientific14-840-98D’autres tailles d’aiguilles peuvent être utilisées, en fonction des besoins expérimentaux
Roue à pierreDremel540
Seringue (20mL avec luer lock)Fisher Scientific22-124-967
Adaptateur d’aspirationTulip MedicalPA20BDEn option, pour la récolte à grand volume
Cartouche d’aspirationFisher Scientific19-898-212En option, pour la récolte à grand volume. Stériliser avant utilisation.
Tubulured’aspiration MedlineDYND50216HEn option, pour la récolte de gros volumes

Références

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Sun, B. K., Siprashvili, Z., Khavari, P. A. Advances in skin grafting and treatment of cutaneous wounds. Science. 346 (6212), 941-945 (2014).
  2. Singh, M., et al. Challenging the Conventional Therapy: Emerging Skin Graft Techniques for Wound Healing. Plastic and Reconstructive Surgery. 136 (4), 524-530 (2015).
  3. Tam, J., et al. Fractional Skin Harvesting: Autologous Skin Grafting without Donor-site Morbidity. Plastic and Reconstructive Surgery. Global Open. 1 (6), 47(2013).
  4. Tam, J., et al. Reconstitution of full-thickness skin by microcolumn grafting. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 11 (10), 2796-2805 (2017).
  5. Huang, C., et al. Regeneration of hair and other skin appendages: A microenvironment-centric view. Wound Repair and Regeneration. 24 (5), 759-766 (2016).
  6. Fernandes, J. R., et al. Micro-mechanical fractional skin rejuvenation. Plastic and Reconstructive Surgery. 131 (2), 216-223 (2013).
  7. Rettinger, C. L., Fletcher, J. L., Carlsson, A. H., Chan, R. K. Accelerated epithelialization and improved wound healing metrics in porcine full-thickness wounds transplanted with full-thickness skin micrografts. Wound Repair and Regeneration. 25 (5), 816-827 (2017).
  8. Franco, W., et al. Fractional skin harvesting: device operational principles and deployment evaluation. Journal of Medical Devices. 8 (4), 041005(2014).
  9. Rasmussen, C. A., et al. Chimeric autologous/allogeneic constructs for skin regeneration. Military Medicine. 179, 8 Suppl 71-78 (2014).
  10. Ter Horst, B., Chouhan, G., Moiemen, N. S., Grover, L. M. Advances in keratinocyte delivery in burn wound care. Advanced Drug Delivery Reviews. 123, 18-32 (2018).
  11. Wong, V. W., Levi, B., Rajadas, J., Longaker, M. T., Gurtner, G. C. Stem cell niches for skin regeneration. International Journal of Biomaterials. 2012, 926059(2012).
  12. Manstein, D., Herron, G. S., Sink, R. K., Tanner, H., Anderson, R. R. Fractional photothermolysis: a new concept for cutaneous remodeling using microscopic patterns of thermal injury. Lasers in Surgery and Medicine. 34 (5), 426-438 (2004).
  13. Iriarte, C., Awosika, O., Rengifo-Pardo, M., Ehrlich, A. Review of applications of microneedling in dermatology. Clinical, Cosmetic and Investigational Dermatology. 10, 289-298 (2017).
  14. Anderson, R. R., et al. Laser treatment of traumatic scars with an emphasis on ablative fractional laser resurfacing: consensus report. Journal of the American Medical Association Dermatology. 150 (2), 187-193 (2014).
  15. Hogan, S., Velez, M. W., Ibrahim, O. Microneedling: a new approach for treating textural abnormalities and scars. Seminars in Cutaneous Medicine and Surgery. 36 (4), 155-163 (2017).
  16. Manuskiatti, W., Fitzpatrick, R. E., Goldman, M. P. Long-term effectiveness and side effects of carbon dioxide laser resurfacing for photoaged facial skin. Journal of the American Academy of Dermatology. 40 (3), 401-411 (1999).

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Demander l’autorisation de réutiliser le texte ou les figures de cet article JoVE

Demander une autorisation

Mots-clés

Pr l vement de microcolonnes tissulairesr g n ration du tissu cutanmodification d aiguilles hypodermiquessyst me de collecte par aspirationpr l vement de peau pleine paisseurcicatrisation de microcolonnesgreffe tissulaire autologueremodelage de la pointe d aiguillerin age au s rum physiologique st rilefabrication d appareils de laboratoire

Articles connexes