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Article de méthode

Séquençage de l’ARN des cellules individuelles des neurones de souris fluorescent étiquetés à l’aide de tri manuel et Double Transcription In Vitro de chefs absolus séquençage (DIVA-Seq)

8.8K vues

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DOI :

10.3791/58690

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26 octobre 2018

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Dans cet article

Résumé

Ce protocole décrit le manuel de procédure pour isoler les neurones fluorescent étiquetés suivies in vitro l’amplification des ARNm axée sur la transcription pour l’ordonnancement de RNA seule cellule haute-profondeur de tri.

Résumé

Séquençage de RNA unicellulaires (RNA-seq) est maintenant un outil largement utilisé pour analyser l’expression des gènes. Plates-formes de RNA-sequencing unicellulaires commercialement disponibles traitent toutes les entrées des cellules sans discernement. Parfois, la cellule activée par fluorescence triant (FACS) est utilisé en amont d’isoler une population spécifiquement marquée d’intérêt. Une limitation des FACS est la nécessité d’un nombre élevé de cellules d’entrée avec fractions nettement marquées, qui n’est pas pratique pour la collecte et le profilage des populations de neurone rares ou peu marqué par le cerveau de souris. Nous décrivons ici une méthode pour recueillir manuellement clairsemée fluorescent étiqueté de neurones fraîchement dissociées tissu de cerveau de souris. Ce processus permet de capturer des neurones seule avec haute pureté et intégration ultérieure avec un protocole de transcription basé sur l’amplification in vitro qui préserve les ratios de transcription endogène. Les auteurs décrivent une méthode de double amplification linéaire qui utilise des identificateurs de la molécule unique (UMIs) pour générer des comtes d’ARNm individuels. Deux séries de résultats d’amplification dans un degré élevé de détection de gènes par une cellule unique.

Introduction

Séquençage de RNA unicellulaires (RNA-seq) a transformé la transcriptomique études. Tandis que RNAseq de cellule unique à grande échelle peut être effectuée en utilisant une variété de techniques, telles que les gouttelettes1,2, microfluidique3, nanogrids4et5de micropuits, la plupart des méthodes ne peut pas trier les types cellulaires définis qui expriment des fluorophores codés génétiquement. Pour isoler une population cellulaire select, cellule activée par fluorescence triant (FACS) est souvent utilisé pour trier des cellules marquées e....

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Protocole

Toutes les procédures y compris les sujets animaux ont été approuvés par IACUC à Cold Spring Harbor Laboratory, NY (IACUC #16-13-09-8).

1. Manuel de tri des neurones de souris fluorescent étiquetés

  1. Tirer microcapillaries de verre (voir Table des matières) pour 10 à 15 µm sortie diamètre moyen d’un extracteur capillaire avec les paramètres suivants : chaleur : 508, tirer : vierge, vel : horaire vide, : vide.
  2. Fixer tube de silicone flexible de 120 à 150 cm (~0.8 mm diamètre intérieur) à un filtre de seringue en membrane 0,2 µm polyvinylidène difluoride (PVDF) et d’une vanne de tube bidirectionnel à l’aide ....

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Résultats

En utilisant le protocole décrit ci-dessus, GABAergiques neurones ont été manuellement triés (Figure 1) et ARN a été amplifié, puis transformé en une banque d’ADNc (Figure 2) et séquencé à haute profondeur8. Les produits amplifiés de RNA (aRNA) variaient entre 200 – 4 000 bp dans la taille, avec une distribution de pointe légèrement supérieure à 500 bp (Figure 3 a). L’ADNc de .......

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Discussion

Le manuel de protocole de tri est adapté pour un séquençage de RNA encadré de neurone des populations qui sont soit peu marquées dans le cerveau de souris ou représentent une population de cellules rares qui est par ailleurs pas possible d’étudier à l’aide de la cellule active de haut débit méthodes de tri et d’amplification. Soumis à des FACS habituellement les cellules subissent des pressions de ligne gaine et échantillon de l’ordre de ~ 9 – 14 lb/po2, selon la taille de la buse et désiré taux d’événements. En outre, à.......

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Déclarations de divulgation

Auteurs déclarent qu’il n’y a aucun intérêts financiers concurrents.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par des subventions du NIH (5R01MH094705-04 et 01-R01MH109665 Z.J.H.) et par le Fonds des neurosciences CSHL Robertson (à Z.J.H.), une bourse de recherche postdoctorale NARSAD (à A.P.).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
ERCC RNA Spike-In Control Mix ThermoFisherCat# 4456740
SuperScript IIIThermo FisherCat# 18080093
RNaseOUT Inhibiteur de la ribonucléase recombinanteThermo FisherCat# 10777019 Tampon
de fragmentation de l’ARNNew England BiolabsCat# E6105S
Kit d’ARN MinEluteQiagenCat# 74204
Phosphatase antarctiqueNew England BiolabsCat# M0289
Poly nucléotide kinaseNew England BiolabsCat# M0201
T4 ARN ligase2, tronquéeNew England BiolabsCat# M0242
Ampure Xp perles magnétiquesBeckman CoulterCat# A63880
SPRIsélectionner la taille billesmagnétiquesThermo FisherCat# B23317
DL-AP5TocrisCat# 0105
CNQXTocrisCat# 1045
TTXTocrisCat# 1078
Protéase de Streptomyces griseusSigma-AldrichCat# P5147
Message Amp II kitThermo FisherCat# AM1751
CarbogenAirgasCat# UN3156
Sylgard 184Sigma-AldrichCat# 761036
Illumina TrueSeq smallRNA kit IlluminaCat# RS-200-0012
Bioanalyseur RNA Pico chipAgilentCat# 5067-1513
Bioanalyseur Puce ADN haute sensibilitéAgilentCat# 5067-4626
Bioanalyseur 2100Agilent
Microscope de dissection avec fluorescence et éclairage en champ clair avec optique DIC. (modèle Leica MZ-16F).LeicaModèle MZ-16F
Microcapillaire en verre : Tubes capillaires en borosilicate 500/pqt. OD = 1 mm, ID = 0,58 mm, paroi = 0,21 mm, Longueur = 150 mm.Warner instrumentsModèle GC100-15, Commande # 30-0017
Extracteur de pipette capillaireSutter Instruments CoP-97
VibratomeThermo MicromHM 650V
Unité de refroidissement tissulaire VibratomeThermo MicromCU 65

Références

  1. Macosko, E. Z., et al. Highly Parallel Genome-wide Expression Profiling of Individual Cells Using Nanoliter Droplets. Cell. 161 (5), 1202-1214 (2015).
  2. Klein, A. M., et al. Droplet barcoding for single-cell transcriptomics applied to embryoni....

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Réimpressions et autorisations

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