Ce protocole décrit le manuel de procédure pour isoler les neurones fluorescent étiquetés suivies in vitro l’amplification des ARNm axée sur la transcription pour l’ordonnancement de RNA seule cellule haute-profondeur de tri.
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Article de méthode
Ce protocole décrit le manuel de procédure pour isoler les neurones fluorescent étiquetés suivies in vitro l’amplification des ARNm axée sur la transcription pour l’ordonnancement de RNA seule cellule haute-profondeur de tri.
Séquençage de RNA unicellulaires (RNA-seq) est maintenant un outil largement utilisé pour analyser l’expression des gènes. Plates-formes de RNA-sequencing unicellulaires commercialement disponibles traitent toutes les entrées des cellules sans discernement. Parfois, la cellule activée par fluorescence triant (FACS) est utilisé en amont d’isoler une population spécifiquement marquée d’intérêt. Une limitation des FACS est la nécessité d’un nombre élevé de cellules d’entrée avec fractions nettement marquées, qui n’est pas pratique pour la collecte et le profilage des populations de neurone rares ou peu marqué par le cerveau de souris. Nous décrivons ici une méthode pour recueillir manuellement clairsemée fluorescent étiqueté de neurones fraîchement dissociées tissu de cerveau de souris. Ce processus permet de capturer des neurones seule avec haute pureté et intégration ultérieure avec un protocole de transcription basé sur l’amplification in vitro qui préserve les ratios de transcription endogène. Les auteurs décrivent une méthode de double amplification linéaire qui utilise des identificateurs de la molécule unique (UMIs) pour générer des comtes d’ARNm individuels. Deux séries de résultats d’amplification dans un degré élevé de détection de gènes par une cellule unique.
Séquençage de RNA unicellulaires (RNA-seq) a transformé la transcriptomique études. Tandis que RNAseq de cellule unique à grande échelle peut être effectuée en utilisant une variété de techniques, telles que les gouttelettes1,2, microfluidique3, nanogrids4et5de micropuits, la plupart des méthodes ne peut pas trier les types cellulaires définis qui expriment des fluorophores codés génétiquement. Pour isoler une population cellulaire select, cellule activée par fluorescence triant (FACS) est souvent utilisé pour trier des cellules marquées e....
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Toutes les procédures y compris les sujets animaux ont été approuvés par IACUC à Cold Spring Harbor Laboratory, NY (IACUC #16-13-09-8).
1. Manuel de tri des neurones de souris fluorescent étiquetés
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En utilisant le protocole décrit ci-dessus, GABAergiques neurones ont été manuellement triés (Figure 1) et ARN a été amplifié, puis transformé en une banque d’ADNc (Figure 2) et séquencé à haute profondeur8. Les produits amplifiés de RNA (aRNA) variaient entre 200 – 4 000 bp dans la taille, avec une distribution de pointe légèrement supérieure à 500 bp (Figure 3 a). L’ADNc de .......
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Le manuel de protocole de tri est adapté pour un séquençage de RNA encadré de neurone des populations qui sont soit peu marquées dans le cerveau de souris ou représentent une population de cellules rares qui est par ailleurs pas possible d’étudier à l’aide de la cellule active de haut débit méthodes de tri et d’amplification. Soumis à des FACS habituellement les cellules subissent des pressions de ligne gaine et échantillon de l’ordre de ~ 9 – 14 lb/po2, selon la taille de la buse et désiré taux d’événements. En outre, à.......
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Auteurs déclarent qu’il n’y a aucun intérêts financiers concurrents.
Ce travail a été soutenu par des subventions du NIH (5R01MH094705-04 et 01-R01MH109665 Z.J.H.) et par le Fonds des neurosciences CSHL Robertson (à Z.J.H.), une bourse de recherche postdoctorale NARSAD (à A.P.).
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| ERCC RNA Spike-In Control Mix Thermo | Fisher | Cat# 4456740 | |
| SuperScript III | Thermo Fisher | Cat# 18080093 | |
| RNaseOUT Inhibiteur de la ribonucléase recombinante | Thermo Fisher | Cat# 10777019 Tampon | |
| de fragmentation de l’ARN | New England Biolabs | Cat# E6105S | |
| Kit d’ARN MinElute | Qiagen | Cat# 74204 | |
| Phosphatase antarctique | New England Biolabs | Cat# M0289 | |
| Poly nucléotide kinase | New England Biolabs | Cat# M0201 | |
| T4 ARN ligase2, tronquée | New England Biolabs | Cat# M0242 | |
| Ampure Xp perles magnétiques | Beckman Coulter | Cat# A63880 | |
| SPRIsélectionner la taille billes | magnétiquesThermo Fisher | Cat# B23317 | |
| DL-AP5 | Tocris | Cat# 0105 | |
| CNQX | Tocris | Cat# 1045 | |
| TTX | Tocris | Cat# 1078 | |
| Protéase de Streptomyces griseus | Sigma-Aldrich | Cat# P5147 | |
| Message Amp II kit | Thermo Fisher | Cat# AM1751 | |
| Carbogen | Airgas | Cat# UN3156 | |
| Sylgard 184 | Sigma-Aldrich | Cat# 761036 | |
| Illumina TrueSeq smallRNA kit Illumina | Cat# RS-200-0012 | ||
| Bioanalyseur RNA Pico chip | Agilent | Cat# 5067-1513 | |
| Bioanalyseur Puce ADN haute sensibilité | Agilent | Cat# 5067-4626 | |
| Bioanalyseur 2100 | Agilent | ||
| Microscope de dissection avec fluorescence et éclairage en champ clair avec optique DIC. (modèle Leica MZ-16F). | Leica | Modèle MZ-16F | |
| Microcapillaire en verre : Tubes capillaires en borosilicate 500/pqt. OD = 1 mm, ID = 0,58 mm, paroi = 0,21 mm, Longueur = 150 mm. | Warner instruments | Modèle GC100-15, Commande # 30-0017 | |
| Extracteur de pipette capillaire | Sutter Instruments Co | P-97 | |
| Vibratome | Thermo Microm | HM 650V | |
| Unité de refroidissement tissulaire Vibratome | Thermo Microm | CU 65 |
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