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Article de méthode

Mutagenèse dirigée pour In Vitro et In Vivo des expériences illustrées avec Interactions ARN chez Escherichia Coli

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DOI :

10.3791/58996

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5 février 2019

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Dans cet article

Résumé

Mutagenèse dirigée est une technique utilisée pour introduire des mutations spécifiques dans l’acide désoxyribonucléique (ADN). Ce protocole décrit comment faire mutagénèse dirigée avec un 2-step et approche, qui s’applique à n’importe quel fragment d’ADN d’intérêt basée sur les 3 étapes amplification génique (PCR).

Résumé

Mutagenèse dirigée est une technique utilisée pour introduire des mutations spécifiques dans l’ADN d’étudier l’interaction entre les petites molécules d’acide ribonucléique (sRNA) non codantes et cibles ARN de messager (ARNm). En outre, mutagénèse dirigée est utilisé pour mapper des sites de liaison protéine spécifique à l’ARN. Une introduction de PCR basé étapes 2 et 3 étapes de mutations est décrite. L’approche est pertinente aux études sur les interactions ARN-ARN et protéine-ARN. En bref, la technique s’appuie sur la conception des amorces avec le mutation(s) désiré et 2 ou 3 étapes de la PCR synthétiser un produit PCR avec la mutation. Le produit PCR est ensuite utilisé pour le clonage. Nous décrivons ici comment effectuer la mutagenèse dirigée, avec les deux celle de 2 et 3 pas à introduire des mutations la sRNA, AMC et l’ARNm, Cdgs, d’enquêter sur les ARN-ARN et interactions ARN-protéine. Nous appliquons cette technique pour étudier les interactions de RNA ; Cependant, cette technique est applicable à toutes les études de mutagenèse (interactions ADN-protéines, acides aminés remplacement/suppression/ajout). Il est possible d’introduire n’importe quel genre de mutation à l’exception des bases non naturelle, mais la technique n’est applicable que si un produit PCR peut être utilisé pour une application en aval (par exemple, le clonage et le modèle pour plus de PCR).

Introduction

ADN est souvent appelée le plan d’action d’une cellule vivante puisque toutes les structures de la cellule sont encodés dans la séquence de son ADN. La réplication exacte et les mécanismes de réparation de l’ADN s’assurer que seules de très faibles taux de mutations se produisent, qui est essentiel pour maintenir les fonctions correctes des gènes codés. Modifications de la séquence d’ADN peuvent affecter les fonctions successives à différents niveaux de départ avec l’ADN (reconnaissance de facteurs de transcription et les enzymes de restriction), puis RNA (complémentarité des paires de bases et des altérations de la structure secondaire) ou autres protéines (amino sub....

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Protocole

1. sélection de vector

  1. Choisir un vecteur pour effectuer des expériences en aval avec. Tout vecteur est applicable pour cette méthode PCR-étapes 2 et 3.
  2. Basé sur le choix du vecteur, choisissez des enzymes de restriction appropriées pour le clonage.

2. amorces pour site de mutagénèse dirigée

  1. Choisir entre la stratégie PCR étape 2 ou 3 étapes (2-step est seulement pour les mutations < 200 bp des deux extrémités de l’ADN d’intérêt). Pour l’ACP 2-étape, passez à l’étape 2.2 et pour le PCR de 3 étapes, passez à l’étape 2.3.
  2. Conception amorces pour la PCR 2-step.
    1. Plan d’apprêt 1 et 3 pour amp....

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Résultats

Pour étudier les interactions de RNA concernant la régulation post-transcriptionnelle des Cdgs, une configuration de double vecteur a été choisie : d’exprimer la Cdgs ARNm et l’autre pour exprimer le petits ARN non codants, McaS. Cdgs a été clonée dans pBAD33, qui est un plasmide de milieu-copie inductible arabinose avec résistance de chloramphénicol et McaS a été clonée dans mini R1 pNDM220, qui est un plasmide inductible de faibles copies d’isopropyl β-D-1-thi.......

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Discussion

Mutagenèse dirigée a un large éventail d’applications différentes, et ici, les résultats représentatifs d’un in-vivo et une expérience in vitro ont été inclus comme exemples de la façon de tirer des conclusions biologiques à l’aide de la technique. Mutagenèse dirigée a longtemps été la méthode de référence pour les études d’interactions RNA. La force de la technique réside dans la combinaison de l’introduction de mutations pertinentes avec des dosages en aval et expériences (p. ex., la tache occidentale ou EMSA) pour tir.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun intérêts opposés.

Remerciements

Les auteurs aimeraient remercier les subventions de la politique de libre accès University of Southern Denmark.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Anticorps anti-GroEL produit chez le lapinMerckG6532Anticorps primaire
Azure c200AzureNAStation d’imagerie gel
Oligo d’ADN personnaliséMerckVC00021
DeNovix DS-11DeNovixNASpectrophotomètre pour les mesures d’acides nucléiques
Colorant de chargement de gel d’ADN (6X)Thermo ScientificR0611
Solution de bromure d’éthidium 1 %Carl Roth2218.1
GeneJET Gel Extraction KitThermo ScientificK0691
GeneRuler DNA Ladder MixFermentasSM0333
Gerard GeBAflex-tube MidiGerard BiotechTO12Tubes de dialyse pour électro-élution
MEGAscript T7 Kit de transcriptionInvitrogenAM1334
Mini-Sub Cell GTCell Bio-Rad1704406Système d’électrophorèse horizontale
Anticorps monoclonal ANTI-FLAG M2 produit chez la sourisMerckF3165Anticorps primaire
Immunoglobulines de sourisDako CytomationP0447HRP Anticorps secondaire conjuqué
NucleoSpin miARNMacherey Nagel740971Purification de l’ARN
NuPAGE 4-12 % Bis-Tris Protein GelsThermo ScientificNP0323BOXBis-Tris pour la séparation des protéines
Phusion High-Fidelity PCR Master Mix avec tampon HFNew England BiolabsM0531SDNA polymérase
PowerPac HC Alimentation à courant élevéBio-Rad1645052
Rabbit ImmunoglobulinesDako CytomationP0448HRP conjuqué anticorps secondaire
SeaKem LE AgaroseLonza50004
SigmaPlotSystat Software IncNAOutil logiciel d’analyse de graphes et de données
T100 ThermocyclerBio-Rad1861096PCR T4
ADN ligaseNew England BiolabsM0202Ligase
T4 Polynucléotide kinaseNew England BiolabsM0201S
Tampon TAE (Tris-acétate-EDTA) (50X)Thermo ScientificB49

Références

  1. Bouvier, M., et al. Small RNA binding to 5' mRNA coding region inhibits translational initiation. Molecular Cell. 32 (6), 827-837 (2008).
  2. Jorgensen, M. G., et al. Small regulatory RNAs control the multi-cellular adhesive lif....

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Réimpressions et autorisations

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