Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.

Article de méthode

À l’aide au transfert d’énergie Fluorescence in Vitro pour étudier la dynamique des protéines Complexes à une échelle de temps de milliseconde

7.9K vues

⸱

DOI :

10.3791/59038

⸱

14 mars 2019

Dans cet article

Résumé

Interactions protéines-protéines sont essentielles pour les systèmes biologiques, et des études de la cinétique de liaison donnent un aperçu de la dynamique et la fonction de complexes protéiques. Les auteurs décrivent une méthode qui quantifie les paramètres cinétiques d’une protéine complexe à l’aide de transfert d’énergie de fluorescence par résonance et la technique de flux stoppé.

Résumé

Les protéines sont les principaux opérateurs des systèmes biologiques, et généralement, ils interagissent avec d’autres macro - ou petites molécules pour remplir leurs fonctions biologiques. Ces interactions peuvent être très dynamiques, ce qui signifie que les sous-unités qui interagissent constamment associées et dissociées à certains taux. Tout en mesurant l’affinité de liaison à l’aide de techniques telles que quantitative déroulant révèle la force de l’interaction, étudier la cinétique de la liaison rapide permet de mieux comprendre comment l’interaction se produit et combien de temps chaque complexe peut exister. En outre, mesurer la cinétique d’une interaction en présence d’un facteur supplémentaire, comme un facteur d’échange de protéine ou d’une drogue, permet de révéler le mécanisme par lequel l’interaction est réglementée par l’autre facteur, fournissant des connaissances importantes pour la promotion de la recherche biologique et médicale. Nous décrivons ici un protocole de mesure de la cinétique de la liaison d’une protéine complexe qui a un taux élevé association intrinsèque et peut être dissocié rapidement par une autre protéine. La méthode utilise le transfert d’énergie de fluorescence resonance pour signaler la formation du complexe protéine in vitro, et il permet la surveillance de la liaison rapide et dissociation du complexe en temps réel sur un fluorimètre flux stoppé. À l’aide de ce test, les constantes de vitesse association et dissociation de la protéine complexe sont quantifiées.

Introduction

Activités biologiques sont effectuées en fin de compte par des protéines, plus de qui interagissent avec les autres pour des fonctions biologiques appropriées. En utilisant une approche computationnelle, le montant total des interactions protéine-protéine chez l’homme est estimé à ~ 650 0001et perturbation de ces interactions souvent conduit à des maladies2. En raison de leur rôle essentiel dans le contrôle des processus cellulaires et organismiques, plusieurs méthodes ont été développées pour l’étude des interactions protéine-protéine, comme deux-hybride de levure, complémentation de fluorescence bimoléculaire, split-lu....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Protocole

1. conception de l’essai de la frette.

  1. Télécharger le fichier de structure de la Cul1•Cand1 complexe de la Protein Data Bank (fichier 1U6G).
  2. Afficher la structure de la Cul1•Cand1 complexe à PyMOL.
  3. Utilisez la fonction de mesure sous le menu Assistant de PyMOL pour estimer la distance entre le premier acide aminé de Cand1 et le dernier acide aminé de Cul1 (Figure 1).
  4. Charger le spectateur de spectres en ligne (voir Table des matières) et l’affichage simultané de l’excitation et les spectres d’émission de 7-amino-4-méthylcoumarine (AMC) et FlAsH (

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

Pour tester la frette entre Cul1AMC et FlAsHCand1, nous avons d’abord déterminé l’intensité des émissions de 70 nM Cul1AMC (le donateur) et 70 nM Cand1 FlAsH(accepteur), respectivement (Figure 3 a-C, bleu lignes). Dans chaque analyse, seulement un pic d’émission était présent et l’émission de FlAsHCand1 (accepteur) était faible. Lorsque 70 nM chaque de Cul1AMC et Cand1 FlA.......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

FRETTE est un phénomène physique qui est d’un grand intérêt pour l’étude et la compréhension des systèmes biologiques,19. Nous présentons ici un protocole pour les essais et à l’aide de frette pour étudier la cinétique de la liaison de deux protéines qui interagissent. Lorsque vous concevez la frette, nous avons examiné trois facteurs principaux : le recouvrement spectral entre donneur d’émission et accepteur d’excitation, la distance entre les deux fluorophores et l’orientation du dipôle des fluo.......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Nous remercions Shan Shu-UO (California Institute of Technology) pour discussion perspicace sur le développement de l’essai de la frette. M.G. et Y.Z. X.L. ont été financés par des fonds de démarrage de l’Université Purdue à Y.Z. et X.L.This a été financée en partie par une subvention de démarrage de Purdue University Center dans biologie végétale.

....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Colonne de chromatographie échangeuse d’anionsGE Healthcare17505301HiTrap Q FF Colonne de chromatographie échangeuse d’anions Centrifugeuse
réfrigérée de paillasseEppendorf2231000511
BL21 (DE3) Cellules compétentesThermoFisher ScientificC600003
calciumFisher ScientificC78-500
Échange de cations colonne de chromatographieGE Healthcare17505401HiTrap SP Sepharose FF
Colonne de dessalageGE Healthcare17085101
Centrifugeuse au sol (haute vitesse)Beckman CoulterJ2-MC
Centrifugeuse au sol (basse vitesse)Beckman CoulterJ6-MI
Fluorescence SpectraViewerThermoFisher Scientifichttps://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/cell-analysis/labeling-chemistry/fluorescence-spectraviewer.html
Fluorimètre FluoroMaxHORIBAFluoroMax-3
FPLCGE Healthcare29018224
GGGGAMC peptideNew EnglandSynthèse
billes de glutathionGE Healthcare
GlycérolFisher ScientificG33-500
HEPESFisher ScientificBP310-100
Isopropyl-&bêta ;-D-thiogalactoside (IPTG)Fisher Scientific15-529-019
LB BouillonFisher ScientificBP1426-500
Agarose Ni-NTAQiagen30210
OvalbumineMilliporeSigmaA2512
vecteur pGEX-4T-2GE Healthcare28954550
Cocktail d’inhibiteurs de protéaseMilliporeSigma4693132001
Glutathion réduitFisher ScientificBP25211
Agitateur réfrigéréEppendorfM1282-0004
Rosetta CellulescompétentesMilliporeSigma70953-3
Colonne de chromatographie d’exclusion stériqueGE Healthcare28990944Superdex 200 10/300 GL
Colonne Chlorure de sodium (NaCl)Fisher ScientificS271-500
Fluorimètre à flux arrêtéHi-Tech ScientificSF-61 DX2
TCEP· ; HClFisher ScientificPI20490
ThrombineMilliporeSigmaT4648
Tris BaseFisher ScientificBP152-500
d’ultrafiltrationMilliporeSigmaUFC903008Amicon Ultra-15 Unités de filtre centrifuge, Ultra-15, 30 000 NMWL
Chlorure de personnalisée de 17075605Membrane

Références

  1. Stumpf, M. P. H., et al. Estimating the size of the human interactome. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (19), 6959-6964 (2008).
  2. Kuzmanov, U., Emili, A. Prot....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Étiquettes

Cinétique des complexes protéiquesfluorimètre à flux interrompudonneur et accepteur FRETtaux d'association et de dissociationpurification des protéinesbilles de glutathionechromatographie d'exclusion stériquechromatographie d'échange cationiqueclivage par la thrombine