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Article de méthode

Induction et notation de la maladie de graft-Versus-Host dans un modèle xénogéné de murine et quantification des cellules t humaines dans des tissus de souris utilisant PCR numérique

7.3K vues

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DOI :

10.3791/59107

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23 mai 2019

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Dans cet article

Résumé

Ici, nous présentons un protocole pour induire et marquer la maladie dans un modèle xnogeneic de greffe-contre-hôte de la maladie (xenoGVHD). xenoGVHD fournit un modèle in vivo pour étudier l'immunosuppression des lymphocytes T humains. En outre, nous décrivons comment détecter les lymphocytes T humains dans les tissus avec PCR numérique comme outil pour quantifier l'immunosuppression.

Résumé

La maladie aigue de greffe-contre-hôte (GVHD) est une limitation significative pour des patients recevant la greffe hématopoïétique de cellules souches comme thérapie pour des insuffisances hématologiques et des malignités. Le GVHD aigu se produit lorsque les lymphocytes T de donneur reconnaissent les tissus d'hôte comme un antigène étranger et montent une réponse immunitaire à l'hôte. Les traitements actuels impliquent des médicaments immunosuppresseurs toxiques qui rendent les patients sensibles à l'infection et à la récidive. Ainsi, il y a la recherche continue pour fournir un traitement aigu de GVHD qui peut effectivement cibler des cellules de T de distributeur et réduire des effets secondaires. Une grande partie de ce travail préclinique utilise le modèle murine xénogène GVHD (xenoGVHD) qui permet d'tester des thérapies immunosuppressives sur les cellules humaines plutôt que des cellules murines dans un système in vivo. Ce protocole décrit comment induire le xénoGVHD et comment aveugler et normaliser la notation clinique pour assurer des résultats cohérents. En outre, ce protocole décrit comment utiliser le PCR numérique pour détecter les lymphocytes T humains dans les tissus de souris, qui peuvent ensuite être utilisés pour quantifier l'efficacité des thérapies testées. Le modèle xenoGVHD fournit non seulement un modèle pour tester les thérapies GVHD, mais toute thérapie qui peut supprimer les lymphocytes T humains, qui pourrait ensuite être appliquée à de nombreuses maladies inflammatoires.

Introduction

La greffe de cellules souches hématopoïétiques allogéniques (HSCT) est devenue un traitement de routine pour les patients souffrant de malignités hématologiques telles que la leucémie avec un pronostic médiocre. Une complication significative de HSCT est la maladie aigue de greffe-contre-hôte (GVHD). Une étude de 2012 a rapporté que le GVHD aigu s'est développé dans 39% de patients deHSCT recevant des greffes des donateurs de frère et 59% de patients recevant des greffes des donateurs non apparentés 1. Le GVHD aigu se produit quand les lymphocytes T d'origine donneuse attaquent les organes du receveur. La seule thérapie réussie pour GVHD est

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Protocole

Toutes les expériences de souris ont été effectuées dans la conformité, et avec l'approbation de l'Université du Kansas Medical Center Institutional Animal Care and Use Committee. Tous les échantillons de sang humain en bonne santé ont été obtenus avec le consentement éclairé et avec l'approbation de la Commission d'examen institutionnel du Centre médical de l'Université du Kansas.

1. Irradiation des souris NSG

  1. Un jour avant l'injection de PBMC, irradier les souris NSG de 8 à 12 semaines (l'un ou l'autre sexe peut être utilisé). Dans une armoire de biosécurité stérile, placez les souris dans une cage à tarte stérilisée ou un micro....

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Résultats

Des souris NSG de 8 à 12 semaines de 8 à 12 semaines qui ont reçu du PBMC humain ont commencé à montrer des signes cliniques de GVHD vers le jour 10 après injection par rapport aux souris témoins négatives qui n'ont reçu que du PBS (Figure 1A). Les souris XenoGVHD avaient une survie médiane de 23,5 jours (figure1B). Avec PCR numérique, Les lymphocytes T humains positifs d'epsilon de CD3 pourraient être détectés dans les échantill.......

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Discussion

La progression de la maladie est généralement cohérente dans le modèle xénoGVHD, même avec l'injection de PBMC de différents donneurs, de sorte que plusieurs expériences peuvent être combinées. Les principales étapes requises pour maintenir cette cohérence sont la technique d'injection appropriée i.v., aveuglant et la notation cohérente. Une étude par Nervi et autres25 a démontré que comparé à l'injection intraveineuse de veine de queue, les injections rétro-orbitales de PBMC ont eu comme conséque.......

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d'intérêts n'a été déclaré.

Remerciements

Nous tenons à remercier le laboratoire de Lane Christenson pour la fourniture de la machine PCR numérique utilisée dans ces expériences et pour le soutien technique fourni. Nous tenons également à remercier le Dr Thomas Yankee pour ses conseils et son mentorat. Ces études ont été soutenues par la Fondation de la famille Tripp.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Tubes eppendorf de 1,5 mLFisher05-408-129
Pipette sérologique de 10 mLVWR International89130-898
10 mL BD Vacutainers - Vert recouvert d’héparine de sodiumBecton Dickinson366480
250 µ ; L Pointes de pipette RaninRainin17001118Ne pas utiliser d’autres pipettes ou pointes de pipette pour la génération de gouttelettes
Tube conique de 50 mLVWR International89039-656
Plaque ddPCR à 96 puitsBio-Rad12001925
Tampon de lyse ACK (Ammonium-Chloride-Potassium)Lonza10-548E
Lingettes imbibées d’alcoolFisher Scientific6818
Chambre d’anesthésieWorld Precision InstrumentsEZ-178Fourni par
l’animalerie Appareil d’anesthésieParkland ScientificPM1002Fourni par l’animalerie
BD Vacutainer Safety-Lok Kit de prélèvement sanguinBecton Dickinson367281
DG8 Cartouches et joints pour générateur de gouttelettes QX100/QX200Bio-Rad1864007
Sans DNAse et ARNase Grade moléculaire H2OLife Technologies1811318
Alcool éthylique, pur, 200 proof, pour la biologie moléculaireSigma-AldrichE7023-500ML
Sérum de veau fœtalAtlanta BiologicalsS11150
FicollFisher Scientific45001750
Seringue à insulineFisher Scientific
IsofluraneSigma-AldrichCDS019936Fourni par l’animalerie
Azote liquideN/AN/A
Souris Irradiateur Cage à tarteBraintree Scientific, Inc.MPC 1Peut contenir jusqu’à 11 souris
Nexcare Gentle Paper Tape (alias 3M Micropore Surgical Tape / 3/4")Fisher Scientific19-027-761
P1000 pipetmanMidSciA-1000
P200 pipetmanMidSciA-200
Pierceable Foil Heat SealBio-Rad1814040
Pipetaid Gilson MacromanFisher Scientific
Pipet-Lite Multi Pipette L8-200XLS+Rainin17013805Ne pas utiliser d’autres pipettes ou pointes de pipette pour la génération de gouttelettes
Qiagen DNeasy Blood and Tissue KitQiagen69506
Plaques qPCRVWR International89218-292
QX200 Système de PCR numérique pour gouttelettesBio-Rad12001925Comprend un générateur de gouttelettes, un lecteur de gouttelettes, un ordinateur portable, un logiciel, des consommables de composants associés, pour les applications de PCR numérique EvaGreen ou basées sur des sondes Huile
génération de gouttelettes QX200 pour EvaGreenBio-Rad1864006
QX200 ddPCR EvaGreen SupermixBio-Rad1864033
Scellé de plaque sans RNase et DNaseThermo Scientific12565491
RPMI Advanced 1640Life Technologies12633012
Compresses de gaze stériles (2 » x 2 », 12 plis)Fisher Scientific67522
Saline stérile tamponnée au phosphateFisher Scientific21040CV
Réservoir stérileVWR International89094-662
Ciseaux chirurgicauxKent ScientificINS600393-4
Pince chirurgicaleKent ScientificINS650914-4
en option 329424F110756 de

Références

  1. Jagasia, M., et al. Risk factors for acute GVHD and survival after hematopoietic cell transplantation. Blood. 119 (1), 296-307 (2012).
  2. Bolanos-Meade, J., et al. Phase 3 clinical trial of steroids/mycophenolate ....

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Réimpressions et autorisations

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