Article de méthode

Utilisation de flight Mills pour mesurer la propension et la performance du ver de racine de maïs occidental, Diabrotica virgifera virgifera (LeConte)

DOI :

10.3791/59196

⸱

29 octobre 2019

 ,  , 
1Department of Entomology, Iowa State University, 2Corn Insects & Crop Genetics Research Unit, USDA-ARS

Dans cet article

Résumé

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Les usines de vol sont des outils importants pour comparer comment l'âge, le sexe, l'état d'accouplement, la température ou divers autres facteurs peuvent influencer le comportement de vold'uninsecte. Ici, nous décrivons les protocoles d'attache et de mesurer la propension de vol et la performance du ver racine de maïs occidental sous différents traitements.

Résumé

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Le ver racine du maïs occidental, Diabrotica virgifera virgifera (LeConte) (Coleoptera: Chrysomelidae), est un ravageur économiquement important du maïs dans le nord des États-Unis. Certaines populations ont développé une résistance aux stratégies de gestion, y compris le maïs transgénique qui produit des toxines insecticides dérivées de la bactérie Bacillus thuringiensis (Bt). La connaissance de la dispersion du ver racine du maïs occidental est d'une importance cruciale pour les modèles d'évolution, de propagation et d'atténuation de la résistance. Le comportement de vol d'un insecte, surtout sur une longue distance, est intrinsèquement difficile à observer et à caractériser. Les usines de vol fournissent un moyen de tester directement les impacts et les conséquences développementaux et physiologiques du vol en laboratoire qui ne peuvent être obtenus dans le domaine des études. Dans cette étude, les usines de vol ont été utilisées pour mesurer le moment de l'activité de vol, le nombre total de vols, ainsi que la distance, la durée et la vitesse des vols effectués par des vers-racines femelles au cours d'une période d'essai de 22 h. Seize moulins de vol étaient logés dans une chambre environnementale avec un éclairage programmable, la température et le contrôle de l'humidité. Le moulin de vol décrit est d'une conception typique, où un bras de vol est libre de tourner autour d'un pivot central. La rotation est causée par le vol d'un insecte attaché à une extrémité du bras de vol, et chaque rotation est enregistrée par un capteur avec un horodatage. Les données brutes sont compilées par logiciel, qui sont ensuite traitées pour fournir des statistiques sommaires pour les paramètres de vol d'intérêt. La tâche la plus difficile pour toute étude de moulin de vol est l'attachement de l'attache à l'insecte avec un adhésif, et la méthode utilisée doit être adaptée à chaque espèce. L'attachement doit être assez fort pour maintenir l'insecte dans une orientation rigide et pour empêcher le détachement pendant le mouvement, tout en n'interférant pas avec le mouvement naturel d'aile pendant le vol. Le processus d'attachement nécessite de la dextérité, de la finesse et de la vitesse, ce qui rend les séquences vidéo du processus pour les vers à racine de valeur.

Introduction

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Le ver racine du maïs occidental, Diabrotica virgifera virgifera LeConte (Coleoptera: Chrysomelidae), a été identifié comme un ravageur du maïs cultivé en 19091. Aujourd'hui, c'est le ravageur le plus important du maïs (Zea mays L.) dans la ceinture de maïs des États-Unis, avec l'alimentation larvaire sur les racines de maïs causant la plupart de la perte de rendement associée à ce ravageur. Les coûts annuels de gestion et les pertes de production de maïs dus au ver racine du maïs sont estimés à plus de 1 milliard de dollars2. Le ver racine du maïs occidental est très adaptable, et les populations ont développé une résistance à de multiples stratégies de gestion, y compris les insecticides, la rotation des cultures et le maïs Bt transgénique3. La détermination des dimensions spatiales sur les tactiques à appliquer pour atténuer le développement local de la résistance, ou un point chaud de résistance, dépend d'une meilleure compréhension de la dispersion4. Les mesures d'atténuation ne seront pas couronnées de succès si elles sont limitées à une échelle spatiale trop petite autour d'un point chaud de résistance, car les adultes résistants se disperseront au-delà de la zone d'atténuation5. Il est important de comprendre le comportement de vol du ver racine du maïs occidental pour créer des plans efficaces de gestion de la résistance pour ce ravageur.

La dispersion par vol joue un rôle important dans l'histoire de la vie et l'écologie de la vie du ver racine du maïs occidental adulte6, et le comportement de vol de ce ravageur peut être étudié en laboratoire. Plusieurs méthodes peuvent être utilisées pour mesurer le comportement en vol en laboratoire. Un actographe, qui limite le vol dans un plan vertical, peut mesurer la durée de vol d'un insecte. Des actographes ont été utilisés pour comparer la durée de vol et les modèles de périodicité des mâles et des femelles de ver racine de maïs occidental à différents âges, tailles de corps, températures, sensibilité d'insecticide, et exposition d'insecticide7,8, 9. Les tunnels de vol, qui se composent d'une chambre de suivi et d'un flux d'air dirigé, sont particulièrement utiles pour examiner le comportement de vol d'insecte en suivant un panache d'odeur, tel que les composants candidats de phéromone10 ou les volatiles de plante11. Les usines de vol sont peut-être la méthode la plus courante pour les études en laboratoire sur le comportement des insectes en vol et peuvent caractériser plusieurs aspects de la propension et de la performance des vols. Des usines de vol de laboratoire ont été employées dans des études sur le ver racine du maïs occidental pour caractériser la propension à effectuer des vols courts et soutenus ainsi que le contrôle hormonal du vol soutenu12,13.

Les usines de vol offrent un moyen relativement simple d'étudier le comportement des insectes en vol dans des conditions de laboratoire en permettant aux chercheurs de mesurer divers paramètres de vol, y compris la périodicité, la vitesse, la distance et la durée. Bon nombre des moulins de vol utilisés aujourd'hui sont dérivés des ronds-points de Kennedy et al.14 et Krogh et Weis-Fogh15. Les usines de vol peuvent être différentes dans la forme et la taille, mais le principe de base reste le même. Un insecte est attaché et monté sur un bras horizontal radial qui est libre de tourner, avec un minimum de frottement, sur un arbre vertical. Comme l'insecte vole vers l'avant, son chemin est limité à tourner dans un plan horizontal, avec la distance parcourue par rotation dictée par la longueur du bras. Un capteur est généralement utilisé pour détecter chaque rotation du bras causée par l'activité de vol de l'insecte. Les données brutes comprennent les rotations par heure unitaire et l'heure du vol d'une journée. Les données sont introduites dans un ordinateur pour l'enregistrement. Les données provenant de plusieurs usines de vol sont souvent enregistrées en parallèle, essentiellement simultanément, les banques de 16 et 32 usines de vol étant courantes. Les données brutes sont traitées par un logiciel personnalisé pour fournir des valeurs pour des variables telles que la vitesse de vol, le nombre total de vols distincts, la distance et la durée des vols, et ainsi de suite.

Chaque espèce d'insecte est différente quand il s'agit de la meilleure méthode pour attacher en raison de variables morphologiques telles que la taille globale, la taille et la forme de la zone cible pour attacher l'attache, la douceur et la flexibilité de l'insecte, le besoin et la méthode pour anesthésie, potentiel d'encrassement des ailes et/ou de la tête avec un adhésif égaré ou débordant, et beaucoup, beaucoup plus de détails. Dans les cas d'attachement visualisé d'un insecte plataspid16 et d'un coléoptère d'ambroisie17,les zones cibles respectives pour l'attachement d'attache sont relativement grandes et pardonnent le placement adhésif imprécis parce que la tête et les ailes sont quelque peu bien séparé du site de fixation. Il ne s'agit pas de minimiser la difficulté d'attacher ces insectes, ce qui est exigeant pour n'importe quelle espèce. Mais le ver racine de maïs occidental est un insecte particulièrement difficile à attacher: le pronotum est étroit et court, ce qui rend l'attachement très précis avec une quantité minimale d'adhésif (cire dentaire dans ce cas) nécessaire pour empêcher toute interférence avec l'ouverture de l'elytra pour le vol et avec la tête, où le contact avec les yeux ou les antennes peut affecter le comportement. En même temps, l'attache doit être fermement attachée pour éviter le délogement par ce dépliant fort. La démonstration de l'attache des adultes de ver de racine est l'offre la plus importante dans ce document. Il devrait être utile à d'autres qui travaillent avec cet insecte ou similaires où la méthode visualisée ici pourrait être une option utile.

Cet article décrit les méthodes utilisées pour attacher efficacement et caractériser l'activité de vol des adultes de ver racine de maïs occidental qui ont été élevés à différentes densités larvaires. Les moulins de vol et les logiciels utilisés dans la présente étude (figure 1) ont été dérivés de dessins affichés sur Internet par Jones et coll.18 Les techniques d'attache ont été modifiées à partir de la description de Stebbing et coll.9 Un tableau de 16 moulins de vol a été modifié. dans une chambre environnementale, conçue pour contrôler l'éclairage, l'humidité et la température (figure 2). L'utilisation de cette configuration ou d'une configuration similaire ainsi que les techniques suivantes permet d'éliminer les facteurs qui peuvent influencer la propension au vol et la performance du ver racine du maïs occidental, y compris l'âge, le sexe, la température, la photopériode et bien d'autres.

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Protocole

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1. Ver radif de maïs occidental arrière pour des essais en vol

REMARQUE : Si l'âge de l'adulte doit être contrôlé ou connu, les adultes doivent d'abord être recueillis sur le terrain, puis élever leur progéniture à l'âge adulte pour les tester. Si l'âge du diléet ou un environnement d'élevage normalisé n'est pas préoccupant, il peut être possible de tester directement les adultes recueillis sur le terrain, et le protocole peut commencer par l'étape 2.

  1. Recueillir au moins 500 adultes de vers de racine de maïs de l'Ouest d'un champ de maïs d'intérêt pour s'assurer que suffisamment d'œufs sont obtenus pour élever un nombre suffisant d'adultes. Utilisez un aspirateur manuel pour recueillir les adultes sur le terrain.
    REMARQUE : Il est recommandé de recueillir des adultes en pleine abondance, vers la fin juillet dans la ceinture de maïs des États-Unis, afin d'assurer la collecte des deux sexes. La plupart des adultes seront des mâles s'ils sont recueillis plus tôt, tandis que la plupart seront des femelles si elles sont recueillies plus tard.
  2. Placez les adultes mâles et femelles recueillis dans une cage en maille contenant l'oreille de maïs hachée, le tissu de feuille de maïs, le solide d'agar de 1,5%, et un substrat d'oviposition. Une cage de 18 x 18 x 18 cm (taille de maille 44 x 32, ouverture de 650 m) peut contenir jusqu'à 500 adultes à la fois.
    1. Utilisez le maïs cultivé dans le champ comme source d'oreille de maïs, qui sera cueillie au stade R3, ou stade du lait du développement du grain19. Le noyau R3 est jaune à l'extérieur, tandis que le liquide intérieur est blanc laiteux en raison de l'accumulation d'amidon. Les épis de maïs peuvent être congelés et entreposés jusqu'à un an jusqu'à ce qu'ils soient nécessaires. Pour nourrir le ver-racine, retirer l'enveloppe et hacher le maïs en sections horizontales d'environ 3 cm d'épaisseur. Le maïs haché est le régime alimentaire primaire pour les adultes et doit être changé deux fois par semaine.
    2. Obtenir des feuilles de plantes de maïs cultivées en serre de tout âge. La quantité de tissu foliaire varie en fonction du nombre d'adultes dans la cage. Évitez d'utiliser des plantes de champ, car elles peuvent introduire des maladies.
    3. Pour faire l'agar solide, mélanger 15 g de poudre d'agar avec 1 L d'eau DI. Chauffer le mélange jusqu'à ébullition. Verser le liquide dans la vaisselle Petri (100 mm x 15 mm) pendant qu'il est chaud. Placer un couvercle sur le plat Petri une fois refroidi et les placer dans un entrepôt frigorifique (6 oC). L'agar fournit aux adultes une source d'humidité et doit être changé deux fois par semaine.
    4. Pour préparer un substrat d'oviposition, placez 40 g de sol tamisé dans un plat Petri. Humidifiez le sol avec de l'eau déionisée. Assurez-vous que le sol au fond du plat Petri semble humide. Marquer le dessus du sol humidifié à l'aide d'un outil d'aiguille. Retirer le substrat d'oviposition chaque semaine et le placer dans un incubateur à 25o C et 60% de RH pendant au moins un mois.
  3. Après avoir incubé des œufs pendant un mois, laver le contenu du substrat d'oviposition à l'eau dans un tamis de 250 m jusqu'à ce que tout le sol ait été enlevé. Quantifier les œufs en plaçant les œufs lavés dans un cylindre gradué de 10 ml. Il y a environ 10 000 œufs par 1 ml.
  4. Placer les œufs quantifiés dans un contenant de 44 ml et couvrir de terre tamisée (180 m). Les œufs de vers radiculaires de maïs occidental subissent une diapause obligatoire pendant l'hiver20. Pour briser la diapause, placer les œufs dans un entrepôt frigorifique (6 oC) pendant au moins 6 mois.
    REMARQUE : Les œufs peuvent être conservés au froid pendant plus de 5 mois, mais la viabilité des œufs diminue avec le temps. Après 12 mois, il peut y avoir peu ou pas d'écoutille.
  5. Après un minimum de 5 mois, retirer les œufs du stockage frigorifique et les placer dans un incubateur à 25oC et 60% de RH. Les nouveau-nés éclosent dès 16 jours après l'enlèvement de l'entreposage à froid.
  6. Une fois les œufs éclos, placez trois grains germés au fond d'un contenant en plastique de 44 ml dont les racines sont exposées (c.-à-d. non recouvertes de terre). Utilisez une brosse à poils souples pour transférer 12 nouveau-nés à la surface des racines.
  7. Ajouter 4,5 ml d'eau DI à 40 ml de sol tamissé (600 m). Placez le sol humidifié sur les grains germés qui ont été infestés de nouveau-nés et recouvrez le récipient de tissu en maille pour empêcher les larves de s'échapper.
  8. Le même jour que le récipient en plastique de 44 ml est installé avec des nouveau-nés, préparez un contenant de 473 ml avec des grains de maïs qui n'ont pas germé. Les larves de vers-racines seront transférées dans ce plus grand récipient plus tard. Le nombre de grains détermine la densité larvaire souhaitée par plante. Ajouter 120 g de mélange de sol composé d'un sol de champ tamisé à 50 % (600 m) et d'un sol en pot de 50 % humidifié avec 20 ml d'eau déionisée.
  9. Après 7 jours, transférer tout le contenu du conteneur de 44 ml dans le conteneur de 473 ml. Les larves seront les deuxièmes instars au moment du transfert.
    REMARQUE : Ce transfert dans un plus grand contenant est nécessaire pour fournir aux larves une masse de racines suffisante pour se nourrir par la pupaison.
  10. Observez l'émergence d'adultes généralement autour de 26 jours après l'éclosion des œufs. Les adultes sont des aviateurs actifs à l'émergence et peuvent s'échapper du conteneur de 473 ml lorsqu'ils tentent de les ramasser à la main. Utilisez plutôt un aspirateur avec un aspirateur pour recueillir les adultes.
  11. Séparer les adultes par sexe et/ou par date si nécessaire pour des tests comparatifs. Le sexe du ver racine de maïs occidental peut être déterminé en observant la morphologie du basitarsi prothoracique21. Les mâles ont de larges basitarsi prothoraciques de forme carrée, tandis que ceux des femelles sont étroits et coniques.
    1. Placer le colétaire dans une fiole en plastique en polystyrène clair de 45 ml et couvrir d'un couvercle avec 6 petits trous (1 mm de diamètre).
    2. Anesthésiez le scétoïde. Placez l'extrémité d'un tube attaché à un régulateur de réservoir de CO2 au-dessus des trous dans le couvercle et laissez un flux doux de CO2 entrer dans le tube pendant environ 10 à 15 s jusqu'à ce que l'adulte perde son emprise sur le mur du flacon.
      REMARQUE : L'insecte anesthésié restera immobilisé pendant environ 1 min.
    3. Placer le scétoïde anesthésié, côté ventral vers le haut, sur un fond de boîte en plastique inversé. Placer délicatement le couvercle non inversé du plat de pétri sur le scélétisme. Assurez-vous que les tarsi du colépron pressent contre le couvercle, permettant une observation facile du basitarsi prothoracique sous un microscope à disséquer.
  12. Si l'expérience exige que les coléoptères soient accouplés avant le vol, utilisez des mâles d'au moins 5 jours pour s'accoupler avec les femelles nouvellement apparues.
    REMARQUE : L'utilisation de mâles plus âgés garantit qu'ils sont sexuellement matures lors de leur introduction aux femelles vierges. Les femelles sont sexuellement matures à l'émergence d'un adulte, tandis que les mâles ont besoin de 5 à 7 jours de développement post-émergence pour atteindre la maturité sexuelle22,23.

2. Démarrer le logiciel de l'usine de vol avant les essais en vol

REMARQUE : Les fichiers du programme de l'usine de vol (.vi extensions de fichiers qui s'exécutent dans une plate-forme logicielle commerciale, voir Tableau des matériaux) et les détails de leur utilisation sont fournis pour téléchargement via des liens (« routine d'analyse des données » et « Instructions de moulin de vol circulaire »), respectivement) dans la section « Câblage et logiciel de moulin de vol » sur le site Web de Jones et coll.18. Si les programmes ne fonctionnent plus dans des versions plus récentes ou futures de la plate-forme logicielle, ou si l'utilisateur veut ajouter de nouvelles fonctionnalités, les routines fournies par Jones et al. 18 peuvent être modifiées par l'utilisateur au besoin.

  1. Ouvrez le logiciel de l'usine de vol (figure 3).
  2. Entrez les informations sous l'onglet Initialization.
    1. Définir l'heure de début et l'heure de fin pour la durée désirée de l'essai en vol.
      REMARQUE : Tous les adultes doivent être attachés et montés sur des moulins de vol de 30 min avant l'heure de début. Il peut prendre une personne expérimentée 30 min à 45 min pour attacher et préparer 16 coléoptres pour les essais en vol (voir section 3).
    2. Définir le seuil Min (min) à 0. Cela garantit que toute détection du passage du bras de vol sera enregistrée, et est le défaut recommandé par Jones et al. 18.
    3. Définir le Seuil Maximum (min) à 1. Ici, 1 min a été utilisé. Cette valeur signifie qu'une min doit s'écouler entre la détection du capteur du bras de vol pour « appeler » la fin d'un vol.
    4. Entrez un nom pour le fichier.
    5. Définir Raw Data Log Interval (min) à 1. Cette valeur contrôle l'intervalle sur lequel les données brutes seront compilées pour les rapports de sortie. Ici, il est réglé à 1 min. Ainsi, la sortie des révolutions, par exemple, sera enregistrée par minute.
      REMARQUE : L'intervalle de temps réel entre la numérisation électronique de l'activité du capteur est très court, mais un intervalle de 1 min permet de se connecter à une échelle assez fine pour la plupart des fins de recherche, tout en limitant le nombre de lignes dans la sortie de la feuille de calcul à un nombre raisonnable pour l'examen par l'œil.
  3. Sous l'onglet Information sur le sujet, remplissez les colonnes étiquetées ID, régime alimentaire, sexe, espèces et commentaires comme vous le souhaitez.
  4. Cliquez sur le bouton START situé sur le côté gauche de l'écran. Le programme commencera à recueillir des données brutes une fois que l'heure actuelle correspond à l'heure de début.

3. Tether ver racine de maïs occidental au moulin de vol

  1. Pliez un fil d'acier de 28 calibres de 40 mm à 90 degrés au centre.
    REMARQUE : Le fil peut également être d'un autre métal tel que le cuivre ou le laiton.
  2. Prenez une petite quantité de cire dentaire, légèrement plus grande qu'une tête d'épingle, et roulez-la entre le bout des doigts jusqu'à ce qu'une boule soit formée. Assurez-vous que les doigts sont propres pour empêcher les débris, la saleté et l'huile d'incorporer dans la cire, car il peut empêcher la cire d'adhérer à l'insecte.
  3. Poussez une extrémité du 40 mm le fil plié dans le centre de la boule de cire.
  4. Anesthésiez l'adulte testé avec le CO2 tel que décrit ci-dessus (voir 1.11.1 et 1.11.2).
  5. Placez l'adulte anesthésié sur une surface plane et placez son côté dorsal vers le haut. Si le dilétome ne se trouve pas complètement à plat sur la surface, repositionner les jambes de façon à ce qu'elles le fassent. Il est important que le dilétome soit aussi plat que possible sur la surface pour assurer le positionnement correct du fil.
  6. Brièvement (lt; 1 s) chauffer la cire dentaire sur le fil avec un briquet butane. Si la cire est chauffée trop longtemps, la cire fondue tombera du fil. Ne réutilisez pas la cire si elle est tombée du fil, car elle n'adhérera pas efficacement à la cuticule d'insecte.
  7. Placez soigneusement l'extrémité du fil d'acier avec la cire dentaire fondue sur la surface dorsale du pronotum, tout en pointant l'autre extrémité du fil, (c.-à-d., l'extrémité sans cire dentaire), le long de la ligne médiane de l'abdomen. Sinon, pointez l'extrémité du fil sans la cire dentaire vers la tête si désiré. Dans ce cas, un scéléopte volant poussera le bras de vol au lieu de le tirer. Assurez-vous que la cire fondue n'obtienne pas sur l'élytre ou ses sutures, car elle peut prévenir ou entraver le vol.
  8. Placez l'extrémité libre du fil dans l'ouverture du tube métallique creux du bras de l'usine de vol. Assurez-vous que le fil s'adapte assez serré pour maintenir en place par frottement. Le scléotois attaché peut être positionné pour voler dans le sens des aiguilles d'une montre ou dans le sens inverse des aiguilles d'une montre.
  9. Immédiatement après le montage d'un colétaire, déchirer un petit morceau (1 cm dia) de papier de soie d'un plus grand tissu. Offrir le morceau de tissu au scléotable attaché suspendu à l'usine de vol pour le contact tarsal ; la plupart des scétis saisiront le tissu et le tiendront contre la gravité jusqu'à ce qu'ils le libèrent au début de leur première activité de vol. Cela réduira considérablement le comportement initial de vol d'évacuation ou d'atterrissage.
    REMARQUE : La présence humaine dans la salle d'essais en vol devrait se limiter à attacher et à retirer les adultes des usines de vol. La période d'essai ne commence habituellement qu'au moins 30 min se sont écoulées depuis la fixation (voir Note inférieure à 2.2.1), et les humains ne devraient pas être présents dans la salle de vol pendant cette période ou pendant la période d'essai elle-même.
  10. Enlever tous les adultes testés en vol après avoir effectué un essai d'usine de vol. Retirez la perle de cire reliant l'attache au pronotum en épluchant doucement le fil loin du pronotum. La cire se séparera facilement sans endommager la cuticule, ce qui rend l'insecte disponible pour d'autres expérimentations si désiré.

4. Enregistrer les données recueillies dans le programme de l'usine de vol.

  1. Le programme peut être réglé sur MANUAL ou AUTO. Si le programme est réglé sur le manuel, l'utilisateur doit mettre fin au programme en cliquant sur le bouton STOP. Si le programme est réglé sur AUTO, alors le programme cessera de recueillir des données brutes une fois que l'heure actuelle correspond à l'heure de fin.
  2. Cliquez sur EXIT après la fin de la période d'essais en vol.
  3. Assurez-vous qu'un fichier TDMS est enregistré sous le nom de fichier entré lors de l'initialisation du programme (étape 2.2).
  4. Cliquez sur le fichier TDMS et enregistrez le document sous forme de feuille de calcul (.xlsx).

5. Récupérer les paramètres de vol de la feuille de calcul enregistrée (.xlsx)

REMARQUE : Une feuille de calcul peut être conçue sur mesure pour manipuler la sortie de données brutes du logiciel de l'usine de vol. En l'espèce, le logiciel était le même que celui décrit par Jones et coll. 18, mais une routine supplémentaire a été ajoutée pour reconnaître et résumer le vol ininterrompu le plus long d'un insecte au cours de la période d'essai.

  1. Pour chaque personne qui s'est engagée dans l'activité de vol, la feuille de calcul comprendra les informations suivantes : numéro de vol, révolutions totales, heure de début, heure de fin et durée du vol en quelques minutes.
    1. Pour calculer la distance totale parcourue pendant la période d'essai, résumez la colonne étiquetée « Total Revs » et multipliez-la par la distance parcourue par révolution. La distance par révolution dépend de la longueur du bras de vol du pivot central à l'insecte attaché. Par exemple, si cette distance est de 15,9 cm, chaque révolution équivaut à un mètre de vol. Le nombre total de révolutions peut également être trouvé dans l'onglet « Statistiques de test ».
    2. Pour calculer la durée totale de la durée de la période d'essai, résumez la colonne étiquetée « Durée de vol (min) ».
    3. Pour déterminer la distance et la durée du vol le plus long et ininterrompu, rendez-vous sur l'onglet « Statistiques d'essai » et regardez sous la colonne étiquetée « Vol le plus long ».
    4. La vitesse de vol peut être calculée en divisant la distance parcourue par la durée du vol. Pour les insectes, la vitesse est généralement exprimée en m/s ou km/h.

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Résultats

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La figure 4 montre des exemples représentatifs de extrants attendus après les essais en vol. Les données de vol ont été obtenues à partir de travaux expérimentaux menés au Département d'entomologie de l'Université d'État de l'Iowa. Les femelles femelles de six jours, les adultes du ver racine du maïs occidental ont été attachés à des moulins de vol et placés dans une chambre environnementale contrôlée fixée à 14:10 L:D, 60 % RH et 25 oC. Les coléoptères ont été laissés sur les moulins de vol...

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Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Caractériser le comportement de vol du ver racine du maïs occidental est important pour concevoir des plans efficaces de gestion de la résistance. Le comportement de vol de ce ravageur a été étudié en laboratoire à l'aide de diverses méthodes, y compris des actographes, des tunnels de vol et des moulins à vol. Les usines de vol, telles que décrites et illustrées dans le présent document, permettent aux insectes de faire des vols ininterrompus afin que les chercheurs puissent quantifier les paramètres de vol tels que la d...

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Déclarations de divulgation

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Les auteurs n'ont rien à révéler.

Remerciements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

L'assistant diplômé d'E.Y.Y. a été soutenu par la National Science Foundation I/UCRC, le Center for Arthropod Management Technologies, dans le cadre de la subvention No. IIP-1338775, et partenaires de l'industrie.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Briquet multi-usages au butaneBICUXMPFD2DCPour ramollir la cire lors de l’attache
Flacon en plastique polystyrène transparent (45 ml)Freund Container and SupplyAS112Pour retenir le coléoptère tout en anesthésique
Milieu de culture déshydraté, poudre de géloseFisher ScientificS14153Pour fabriquer de la gélose pour retenir l’humidité pour les adultes
Tige de Delrin (1 » de diamètre, 3,75 » de long)De nombreux fournisseurs : peut utiliser le moins cher sur Internet.Pour le poteau de l’usine de vol
Cire dentaireDenTek47701000335Adhère fil d’attache à prothorax Aimants
annulaires en ferrite (OD : 0.69 », ID : 0.29 », Épaisseur : 0.118 » ; 7oz tirer)Magnet Shop63B06929118Opposé - pour générer le flotteur.
Capteur à effet HallOptikincOHN3120URegardez sous les capteurs magnétiques sur le côté gauche du site Web d’Optekinc, puis recherchez le numéro de pièce. Un lien est fourni pour les fournisseurs actuels.
Tubulure hypodermique (calibre 22 ; 0,0358" Diamètre extérieur x 0,01975 po ID x 0,004 po mur)Petites pièces, Inc.HTX-22T-12Utilisé pour les bras de l’usine à vol et la tige de l’axe principal.
Incubateur (104,1 x 85,4 x 196,1 cm)Percival ScientificI-41VL
Logiciel LabVIEW Full Development System, plate-forme de conception de systèmesNational Instruments (Voir http://www.ni.com/en-us/shop/labview/select-edition.html)LabVIEW 2018 (Édition complète)  ;Fournit l’environnement nécessaire à l’exécution des fichiers de l’usine de vol (extensions .vi) disponibles en téléchargement à partir de Jones et al.18 à http://entomology.tfrec.wsu.edu/VPJ_Lab/Flight-Mill.  ; LabVIEW 2018 Full est compatible avec les systèmes d’exploitation Win/Mac/Linux.
Cage grillagée (18 x 18 x 18 cm)MegaView Science Co., Ltd.BugDorm-4M1515taille de maille = 44 x 32, 650 & micro ;
Outil à aiguilleBLICK34920-1063Pour marquer la surface du sol pour la ponte en laboratoire
Aimants annulaires en nickel (3/16" Diamètre extérieur x 1/16 po ID x : 1/16 po épais)K& J MagneticsR311Utilisé pour déclencher le capteur numérique à effet Hall.
Boîte de Pétri (100 mm x 15 mm)Fisher ScientificS33580A
Récipient en plastique (44 ml)Dart150PCPour l’élevage initial des jeunes larves
Récipient en plastique (473 ml)Placon22885Pour l’élevage des larves plus âgées
Brosse ronde (taille 2)Simply Simmons10472906Pour transférer les nouveau-nés fraîchement éclos à la surface des racines
Tamis ( 250 et micro ; m)Fisher Scientific08-418-05Pour séparer les œufs du sol
Fil d’acier (calibre 28)The Hillman Group38902350282
Tige en téflon (3/8 » de diamètre, 3/4 » de longueur)United States Plastic Corporation47503Pour accepter le bras rotatif.
Vide  ;Gast Manufacturing, Inc.1531-107B-G288XPour aspirer des adultes en laboratoire
Tissu poly mousseline blanc HobbyLobby194811Pour empêcher les larves de s’échapper du récipient d’élevage

Références

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