Pour mesurer [Ca2'] quantitativement, les analogues fura-2, qui sont des fluoroprobes ratiométriques, sont fréquemment utilisés. Cependant, l'utilisation de colorant est intrinsèquement limitée dans les cellules vivantes en raison de l'interférence d'autofluorescence, principalement du dinucleotide d'adénine de nicotinamide (NADH). Plus précisément, il s'agit d'un obstacle majeur lors de la mesure de la mitochondriale [Ca2 ]quantitativement en utilisant des analogues fura-2 parce que la majorité de NADH est dans les mitochondries. Si la concentration de colorant fluorescent est la même, une certaine intensité d'excitation devrait produire la même intensité d'émission. Par conséquent, le rapport d'intensité des émissions de deux longueurs d'onde d'excitation différentes devrait être constant. Sur la base de ce principe, une nouvelle méthode de correction en ligne de l'interférence de signal NADH pour mesurer [Ca2]a été développée, et l'intensité réelle de signal de NADH et fura-2 peut être obtenue. En outre, une nouvelle équation à calculer [Ca2]a été développée avec une excitation ou une excitation isosbestique à 400 nm. Avec cette méthode, les changements dans les mitochondries [Ca2]pourraient être mesurés avec succès. En outre, avec un ensemble différent des longueurs d'onde d'excitation et d'émission, plusieurs paramètres, y compris NADH, [Ca2],et le pH ou le potentiel de membrane mitochondriale(M),pourraient être mesurés simultanément. Les mitochondries [Ca2m]etm ou pH ont été mesurées à l'aide de fura-2-FF et de téramethylrhodamine ester éthylin (TMRE) ou carboxy-seminaphtorhodafluor-1 (carboxy-SNARF-1).