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Visualisation de la dynamique des récepteurs T-Cell de surface à quatre dimensions à l'aide de microscopie à feuilles de lumière en treillis

DOI:

10.3791/59914

January 30th, 2020

In This Article

Summary

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Le but de ce protocole est de montrer comment utiliser la microscopie lattice Light-Sheet pour visualiser en quatre dimensions la dynamique des récepteurs de surface dans les cellules vivantes. Ici, les récepteurs des lymphocytes T sur les lymphocytes T CD4et primaires sont montrés.

Abstract

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La signalisation et la fonction d'une cellule sont dictées par les structures dynamiques et les interactions de ses récepteurs de surface. Pour vraiment comprendre la relation structure-fonction de ces récepteurs in situ, nous devons les visualiser et les suivre sur la surface des cellules vivantes avec une résolution spatiotemporal suffisante. Ici, nous montrons comment utiliser récemment développé Lattice Light-Sheet Microscopy (LLSM) pour l'image des récepteurs à cellule T (TCRs) en quatre dimensions (4D, l'espace et le temps) à la membrane cellulaire vivante. Les lymphocytes T sont l'une des principales cellules effectrices du système immunitaire adaptatif, et ici nous avons utilisé les lymphocytes T comme exemple pour montrer que la signalisation et la fonction de ces cellules sont entraînées par la dynamique et les interactions des TCR. LLSM permet une imagerie 4D avec une résolution spatiotemporal sans précédent. Cette technique de microscopie peut donc être généralement appliquée à un large éventail de molécules de surface ou intracellulaires de différentes cellules en biologie.

Introduction

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La dynamique précise du trafic et de la diffusion des molécules sur la surface tridimensionnelle des cellules en temps réel a été une énigme à résoudre. La microscopie a toujours été un équilibre de vitesse, de sensibilité et de résolution; si un ou deux sont maximisés, le troisième est minimisé. Par conséquent, en raison de la petite taille et de la vitesse immense avec laquelle les récepteurs de surface se déplacent, le suivi de leur dynamique est resté un défi technologique majeur dans le domaine de la biologie cellulaire. Par exemple, de nombreuses études ont été menées à l'aide de la microscopie interne totale de fluorescence (TIRF)1,....

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Protocol

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5C. C7 TCR-transgénique RAG2 knock-out souris en B10. Un fond ont été employés dans cette étude selon un protocole approuvé par le comité institutionnel de soin et d'utilisation des animaux de l'université de Chicago.

1. Récolter et activer les lymphocytes T

REMARQUE : Cette partie du protocole est basée sur des protocoles précédents. Voir les citations pour plus de détails20,21.

  1. Euthanasier un 5C de 10-12 semaines. Souris transgénique C7 de l'un ou l'autre sexe (de 20 à 25 g) selon le protocole approuvé de l'IACUC (c.-à-d. la chambre CO2

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Results

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Ici, nous décrivons l'isolement, la préparation, et l'imagerie de la souris primaire 5C. Cellules T C7 à l'aide d'un microscope à feuilles de lumière en treillis. Pendant la section 3, il est impératif d'aligner correctement le microscope et de recueillir quotidiennement des FPS pour décongestionner les données après la collecte. Dans la figure 2, nous montrons les images d'alignement correctes qui seront vues lors de l'alignement du microscope. La figure 2

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Discussion

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Le protocole présenté a été optimisé pour l'utilisation des cellules CD4et T isolées de 5C. Les souris transgéniques C7 sur l'instrument LLSM utilisé, et donc d'autres systèmes cellulaires et LLSM peuvent avoir besoin d'être optimisés différemment. Cependant, ce protocole montre la puissance de l'imagerie 4D, car il peut être utilisé pour quantifier la dynamique d'un récepteur de surface sur une cellule entière avec le moins de distorsion dans les conditions physiologiques. Par conséquent, il existe de nombreu.......

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Disclosures

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Les auteurs n'ont rien à révéler.

Acknowledgements

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Nous tenons à souligner les conseils et les conseils du Dr Vytas Bindokas de l'Université de Chicago. Nous remercions l'Integrated Light Microscopy Core Facility de l'Université de Chicago d'avoir soutenu et entretenu le microscope à feuilles de lumière en treillis. Ce travail a été soutenu par NIH New Innovator Award 1DP2AI144245 et NSF Career Award 1653782 (To J.H.). J.R. est soutenu par le NSF Graduate Research Fellowships Program.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Seringue de 1 mLBD309659Pour la récolte de cellules T
2-MercaptoethanolSigma-AldrichM3148-25MLPour la culture de cellules T
Lamelles rondes de 5 mmWorld Precision Instruments502040Pour l’imagerie
Filtre de cellules stériles de 70umCorning7201431Pour la récolte de cellules T
Alexa Fluor 488 anti-souris TCR &beta ; chaîne AnticorpsBioLegend109215pour l’imagerie
sérum bovin fœtal (FBS)X& Y Cell CultureFBS-500Pour la culture de cellules T
FicollGE Healthcare17-1440-02Réactif à gradient Denisty pour la récolte des cellules
T Sel de fluorescéine sodiqueSigma-AldrichF6377Pour l’alignement du microscope
FluoSpheres Microsphères modifiées au carboxylateThermo Fisher ScientificF8810Pour l’alignement du microscope
ImarisBitplaneN/ALogiciel de suivi ; D’autres options pour les logiciels de suivi incluent Amira ou Trackmate (Fidji).
Microscope à feuillet de lumière sur réseau3iN/AMicroscope utilisé
L-15 de Leibovitz, sans rouge de phénolThermo Fisher Scientific21083027Pour l’imagerie
la L-glutamineThermo Fisher Scientific25030-081Pour la culture de cellules
T LLSpyJanelia Research CampusN/ALLSpy a été utilisé sous licence de l’Institut médical Howard Hughes, Janelia Research Campus. Contactez-innovation@janelia.hhmi.org pour y accéder. D’autres méthodes de déconvolution et de deksewing sont disponibles dans les logiciels de traitement d’images tels que Fiji, Slidebook, Amira et autres. https://llspy.readthedocs.io/en/latest/
Moth Cytochrome C (MCC), séquence ANERADLIAYLKQATKElimbioSynthèse personnaliséePour la récolte des lymphocytes
T Penacillin/StreptamycinLife Technologies15140122_3683884612Pour la culture des lymphocytes
T Poly-L-LysinePhenix Produits de rechercheP8920-100MLPour l’imagerie
Tampon de lyse RBCeBioscience00-4300-54Pour la récolte de cellules T
Souris recombinante IL-2Sigma-AldrichI0523Pour la culture de cellules
T RPMI 1640 MediumCorningMT10040CVPour la culture de cellules T
Slidebook3iN/ALogiciel d’imagerie LLSM
Outilsde dissection chirurgicaleNova-Tech InternationalDSET10Pour la récolte de cellules
T Flacons T-25Eppendorf2231710126Pour la culture de cellules T
Thermo Scientific Pierce Fab Micro Preparation KitsThermo Fisher Scientific44685Pour la préparation
du de Fab

References

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  1. Poulter, N. S., Pitkeathly, W. T. E., Smith, P. J., Rappoport, J. Z. The Physical Basis of Total Internal Reflection Fluorescence (TIRF) Microscopy and Its Cellular Applications. Methods in Molecular Biology. 1251, Clifton, N.J. 1-23 (2015).
  2. Mattheyses, A. L., Simon, S. M., Rappoport, J. Z.

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Lattice Light Sheet MicroscopyT Cell Receptor DynamicsFour Dimensional ImagingLive Cell ImagingSpatiotemporal ResolutionCell Surface ReceptorsFluorescent LabelingDensity Gradient CentrifugationBeam Alignment ProtocolPSF Collection

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