Method Article

Livraison intrathécale d'Oligonucléotides antisens dans le système nerveux central de rat

DOI:

10.3791/60274

October 29th, 2019

In This Article

Summary

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Ici, nous décrivons une méthode pour livrer des drogues au système nerveux central de rat en implantant un cathéter dans l'espace intrathécal lombaire de la colonne vertébrale. Nous nous concentrons sur la livraison des oligonucléotides d'antisens, bien que cette méthode soit appropriée pour la livraison d'autres modalités thérapeutiques aussi bien.

Abstract

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La barrière hémato-encéphalique (BBB) est une défense importante contre l'entrée d'agents potentiellement toxiques ou pathogènes du sang dans le système nerveux central (SNC). Cependant, son existence réduit considérablement l'accessibilité des agents thérapeutiques administrés par le Système au SNC. Une méthode pour surmonter cela, est d'injecter ces agents directement dans le liquide céphalo-rachidien (CSF), contournant ainsi le BBB. Cela peut être fait par l'implantation d'un cathéter pour l'infusion continue à l'aide d'une pompe osmotique, ou pour la livraison de bolus unique. Dans cet article, nous décrivons un protocole chirurgical pour la livraison des oligonucléotides d'antisense ciblage de CNS (ASO) par l'intermédiaire d'un cathéter implanté directement dans l'espace d'equina de cauda de la colonne vertébrale adulte de rat. Comme résultats représentatifs, nous montrons l'efficacité d'une seule injection intrathécale bolus ASO (IT) par l'intermédiaire de ce système de cathétérique en faisant tomber l'ARN cible dans différentes régions du Rat CNS. La procédure est sûre, efficace et ne nécessite pas d'équipement coûteux ou d'outils chirurgicaux. La technique décrite ici peut être adaptée pour fournir des médicaments dans d'autres modalités ainsi.

Introduction

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Le système vasculaire du système nerveux central (SNC) a évolué en tant que régulateur critique de l'homéostasie, contrôlant le trafic des molécules, fournissant des nutriments et se débarrassant des déchets. Ce système est également la première ligne de défense contre les attaques d'agents pathogènes externes, grâce à une distribution dense de jonctions serrées le long des parois des cellules endothéliales. Ces jonctions serrées constituent un aspect de la barrière hémato-encéphalique (BBB). Bien que le BBB permette le transport de molécules nécessaires pour répondre aux besoins en nutriments et en énergie (par exemple, ions, glucose), il limite également sélectiveme....

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Protocol

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Toutes les procédures in vivo ont été effectuées dans le cadre des protocoles approuvés par le Biogen Institutional Animal Use and Care Committee (IACUC) qui suivent les lignes directrices énoncées par le guide des National Institutes of Health des États-Unis pour les soins et l'utilisation des animaux de laboratoire.

1. Préparation du matériel et des instruments

  1. Préparer les cannulas guide spécial.
    1. Utilisez un outil rotatif avec roue de coupure (ou scie pointue) pour couper les deux extrémités d'une aiguille de 19 G, ce qui donne une canule guide de 1,5 à 2 cm de long (figure 1Aiii

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Results

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En utilisant la méthode décrite ici, nous avons injecté deux groupes de rats femelles adultes (250 à 300 g; n - 10/groupe) avec soit un seul bolus de PBS salin tamponné par le phosphate ou 300 g d'ASO ciblant le long non-codage (linc) ARN Malat1; dans notre laboratoire, nous utilisons régulièrement l'ASO Malat1 comme un composé d'outils, parce que Malat1 est exprimé de façon omniprésente et à des niveaux élevés dans tous les tissus14, y compris le cerveau et la moe.......

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Discussion

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Le présent article montre une méthode puissante pour livrer des agents thérapeutiques directement dans le Rat CNS. En théorie, une technique similaire peut également être effectuée chez la souris, mais en raison de la plus petite taille, la méthode peut être plus difficile. Par conséquent, notre groupe effectue des injections intracerebroventricular (ICV) chez les souris pour l'administration de médicaments cNS, qui atteignent les mêmes objectifs par une voie d'administration différente. Cette méthode a été décrite dans .......

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Disclosures

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Les auteurs sont tous des employés de Biogen, Inc. ou Ionis Pharmaceuticals. Les auteurs reçoivent les oligonucléotides antisens décrits dans l'article d'Ionis Pharmaceuticals.

Acknowledgements

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Nous tenons à remercier Ionis Pharmaceuticals d'avoir fourni les AsOs décrits dans l'article.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
3M Steri-Drape Petit Champ avec Ouverture Adhésif3M1020
70 % éthanolDecon Laboratories, Inc8416-160Z
Bâtonnets d’alcoolDynarexNO 1204
BD Seringues à usage général 1 mL Embout Luer-LokBD1ml TB Embout Luer-LokBD 302830
Tube PE BD Intramedic Tubepolyéthylène PE50 Diamètre 0,023 po BD427400 (10ft, Fischer Scientific 22-204008) ou 427401 (100ft, Fischer Scientific 14-170-12P)
Tube PE BD Intramedicenpolyéthylène PE PE10 Diamètre 0,011 enBD 427410 (10ft, Fischer Scientific 14-170-11B) ou 4274011 (100ft, Fischer Scientific 14-170-12B)
BD Intramedic PE Adaptateurs de tubesBD23 calibre intramedic luer stubadaper BD 427565 ou Fisher Scientific 14-826-19E
BD PrecisionGlide Aiguilles à usage unique 30GBDBD
Buprénorphine à libération prolongée - laboratoireZooPharm Prescriptionrequise
Stérilisateur à l’oxyde d’éthylèneAndersen Sterilizer INC.AN 74i, stérilisateur à gaz CanuleAN 74i
BD19G x 1 WT (1,1 mm x 25 mm) aiguilleBD 305186
seringue Hamilton 100ulHamilton companyHamilton seringue 100ul
Stérilisateur à billes chaudesOutils de science fine STÉRILISATEURMODELNO FST 250
Pommade ophtalmiqueDechra veterranery product17033-211-38
Pocket Pro Tondeuse pour animauxde compagnie Braintree ScientificCLP-9931 B
Gommage à la povidonePDIS48050
SalineBaxterChlorure de sodium 0,9 % Infusion intraveineuse BP 50mlFE1306G
ScalpelFeatherscalpel jetableN° 10
Coussin chauffant pour petits animauxK& H ManufacturingModel # 1060
Stylet WireMcMaster-Carr1749T14LH-36233780
Chirurgie Serviette drapeDynarex4410
Ciseaux chirurgicaux et pincesFST et Fisher Scientific
SuturesEthicon4-0 ou 5-0
Outil pour fabriquer le canule de guidageOutil rotatif Grainger(Dremel)14H446 (N° Amp. : EZ456)
Roue à tronçonner EZ lock1PKX5 (N° M : 3000-1/24)
’oxyde d’aluminium38EY44 (N’Indice fabricant : EZ541GR)
Mandrin EZ Lock1PKX8 (N° M : EZ402-01)
Meule diamantée Sol Tuile3DRN4 (N° M : EZ545)
Source alternative de matériaux préfabriqués et stérilisés pour cette procédure
Système de cathéter doseurSAI SystèmesRIDC-01
Canule guideSAI Systèmes de perfusioninterne RIDC-GCA
internesSAI Systèmes de perfusion
RIDC-INC Stylet Wire SAIRIDC-STY
en Tube 305128 de guidage Meule à l de perfusion Systèmes de perfusion

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Abbott, N. J. Dynamics of CNS barriers: evolution, differentiation, and modulation. Cellular and Molecular Neurobiology. 25 (1), 5-23 (2005).
  2. Greene, C., Campbell, M. Tight junction modulation of the blood brain barrier: CNS deliv....

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Intrathecal DeliveryAntisense OligonucleotidesCentral Nervous SystemCatheter ImplantationSpinal Canal InjectionCerebrospinal FluidRat Disease ModelsPharmacokinetics EvaluationPharmacodynamics AssessmentTherapeutic Efficacy

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