Method Article

Caractérisation des structures amyloïdes dans le vieillissement C. Elegans à l’aide de l’imagerie à vie de fluorescence

DOI:

10.3791/61004

March 27th, 2020

In This Article

Summary

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L’imagerie à vie de fluorescence surveille, quantifie et distingue les tendances d’agrégation des protéines dans les modèles vivants, vieillissants et stressés de la maladie de C. elegans.

Abstract

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Les fibrilles amyloïdes sont associées à un certain nombre de maladies neurodégénératives comme la maladie de Huntington, la maladie de Parkinson ou la maladie d’Alzheimer. Ces fibrilles amyloïdes peuvent séquestrer des protéines métastables endogènes ainsi que des composants du réseau de protéostasie (PN) et exacerber ainsi les mauvais pliages de protéine dans la cellule. Il existe un nombre limité d’outils disponibles pour évaluer le processus d’agrégation des protéines amyloïdes chez un animal. Nous présentons un protocole pour la microscopie à vie de fluorescence (FLIM) qui permet la surveillance ainsi que la quantification de la fibrilisation amyloïde dans des cellules spécifiques, telles que les neurones, d’une manière non invasive et avec la progression du vieillissement et sur la perturbation de le PN. La FLIM est indépendante des niveaux d’expression du fluorophore et permet une analyse du processus d’agrégation sans autre coloration ni blanchiment. Les fluorophores sont étanchéités lorsqu’elles sont à proximité des structures amyloïdes, ce qui entraîne une diminution de la durée de vie de la fluorescence. L’étanchéité est directement corrélée avec l’agrégation de la protéine amyloïde. FLIM est une technique polyvalente qui peut être appliquée pour comparer le processus de fibrilisation de différentes protéines amyloïdes, stimuli environnementaux, ou des antécédents génétiques in vivo d’une manière non invasive.

Introduction

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L’agrégation protéique se produit à la fois dans le vieillissement et la maladie. Les voies qui mènent à la formation et au dépôt de grands amyloïdes ou d’inclusions amorphes sont difficiles à suivre et leur cinétique est tout aussi difficile à démêler. Les protéines peuvent se tromper en raison de mutations intrinsèques dans leurs séquences de codage, comme dans le cas des maladies génétiques. Les protéines se déplient également parce que le réseau de protéostasie (PN) qui les maintient solubles et correctement pliés est altéré, comme cela arrive pendant le vieillissement. Le PN comprend les chaperons moléculaires et les machines de dégradation et est responsable de ....

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Protocol

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1. Synchronisation de C. elegans

  1. Synchroniser C. elegans soit par traitement de solution d’hypochlorite alcaline ou via la ponte simple pour 4 h à 20 oC8.
  2. Cultivez et maintenez les nématodes à 20 oC sur les plaques moyennes de croissance des nématodes (NGM) ensemencées avec OP50 E. coli selon les procédures standard9. Vieillissez les nématodes jusqu’au stade ou au jour du développement désiré.
    REMARQUE : Dans ce protocole, les jeunes adultes sont photographiés le jour 4 et les vieux nématodes sont photographiés le jour 8 de la vie.

2. RNAi-....

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Results

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Le protocole montre comment surveiller avec précision la formation d’espèces agrégées dans les C. elegansvivants, tant pendant son vieillissement naturel que lorsqu’elles sont soumises au stress. Nous avons sélectionné quatre souches différentes de nématodes transgéniques exprimant des protéines de polyglutamine de 40Q, 44Q, ou 85Q répétitions. Ces protéines sont synthétisées dans différents tissus et ont été fusionnées à différents fluorophores. Les souches C. elegans o.......

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Discussion

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Le protocole présenté ici décrit une technique à base de microscopie pour identifier les espèces agrégées dans le système modèle C. elegans. FLIM peut caractériser avec précision la présence d’espèces agrégées et solubles fusionnées à un fluorophore par mesure de leurs caries de fluorescence à vie. Lorsqu’une protéine de fusion commence à agréger sa durée de vie moyenne enregistrée passera d’une valeur plus élevée à une valeur inférieurede 16. La propension de l’agrégation peut alors être.......

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Disclosures

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Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Acknowledgements

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La souche muscle-Q40-MRFP fournie par la CCG, qui est financée par le Bureau des programmes d’infrastructure de recherche des NIH (P40 OD010440). Le neuronal-Q40-CFP était un bon cadeau du Morimoto Lab. Nous reconnaissons le DFG (KI-1988/5-1 à JK, neuroCure PhD fellowship par le Groupe d’excellence NeuroCure à MLP), EMBO (bourse à court terme à MLP) et la Société des biologistes (subventions de voyage à CG et MLP) pour le financement. Nous reconnaissons également l’installation d’imagerie par microscopie lumineuse avancée du Centre max Delbrack de médecine moléculaire de Berlin pour avoir fourni la configuration pour l’image des constructions YFP.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Agar-Agar Kobe ICarl Roth GmbH + Co. KG5210.2Composant NGM
Ahringer Library hsp-1 siRNASource BioScience UK LimitedF26D10.3
AmpicillineCarl Roth GmbH + Co. KGK029.3Antibiotique
B& H DCS-120 SPC-150Becker & Hickl GmbHFLIM Logiciel d’acquisition
B& H SPC830-SPC ImageBecker & Hickl GmbHFLIM Logiciel d’acquisition
BD Bacto PeptoneBD-Bionsciences211677NGM component
C. elegans iQ44-YFPCAENORHABDITIS GENETICS CENTER (CGC)OG412
C. elegans iQ85-YFPCadeau de Morimoto Lab
C. elegans mQ40-RFPCadeau aimable de Morimoto Lab
C. elegans nQ40-CFPCadeau de Morimoto Lab
Deckglä ; ser-18x18mmCarl Roth GmbH + Co. KG0657.2Lamelles de protection
Isopropyl-&beta ;-D-thiogalactopyranosid (IPTG)Carl Roth GmbH + Co. KG2316.4
Leica M165 FCLeica Camera AGMontage Stéréomicroscope
Leica TCS SP5Leica Camera AGMicroscope confocal
Chlorhydrate de lévamisoleAppliChem GmbHA4341Anesthésique
OP50 Escherichia coliCAENORHABDITIS GENETICS CENTER (CGC)OP50
PicoQuant PicoHarp300PicoQuant GmbHFLIM Logiciel d’acquisition
Sodium AzideCarl Roth GmbH + Co. KGK305.1Chlorure de sodium anesthésique
Carl Roth GmbH + Co. KG3957.2Composant
NGMstandard-objektträ ; gerCarl Roth GmbH + Co. KG0656.1Lames de verre
Universal AgaroseBio & Sell GmbHBS20.46.500
Zeiss AxioObserver.Z1Carl Zeiss AGMicroscope confocal
Zeiss LSM510-Meta NLOCarl Zeiss AGMicroscope confocal

References

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  1. Klaips, C. L., Jayaraj, G. G., Hartl, F. U. Pathways of cellular proteostasis in aging and disease. Journal of Cell Biology. 217 (1), 51-63 (2018).
  2. Kikis, E. A. The struggle by Caenorhabditis elegans to maintain proteostasis during aging and disease. Bio....

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Fluorescence Lifetime ImagingAmyloid FibrilizationC Elegans ModelProtein Aggregation AnalysisNoninvasive MonitoringFLIM AcquisitionLifetime MeasurementPhoton DetectionAgarose Pad PreparationNeurodegenerative Disease Study

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