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Article de méthode

Mesure de la confluence des CSPi à l’aide d’un système d’imagerie automatisé.

2.4K vues

DOI :

10.3791/61225

10 juin 2020

Dans cet article

Résumé

L’objectif du protocole est de comparer différentes conditions de revêtement de la matrice extracellulaire (ECM) afin d’évaluer comment le revêtement différentiel affecte le taux de croissance des cellules souches pluripotentes induites (CSPi). En particulier, nous visons à mettre en place les conditions pour obtenir une croissance optimale des cultures iPSC.

Résumé

Cette étude vise à comprendre comment la croissance des CSPi sur différents substrats de revêtement ECM peut affecter la confluence cellulaire. Un protocole permettant d’évaluer la confluence des CSPi en temps réel a été établi sans qu’il soit nécessaire de compter les cellules en suspension unicellulaire pour éviter toute perturbation de la croissance. Un système d’analyse d’images à haut contenu a été utilisé pour évaluer de manière automatisée la confluence iPCS sur 4 ECM différents au fil du temps. Différents paramètres d’analyse ont été utilisés pour évaluer la confluence cellulaire des CSPi adhérentes et seule une légère différence (à 24 et 48 heures avec la laminine) a été observée si un masque à 60, 80 ou 100% a été appliqué. Nous montrons également que la laminine conduit à la meilleure confluence par rapport à Matrigel, la vitronectine et la fibronectine.

Introduction

Les cellules souches pluripotentes induites (CSPi) sont obtenues à partir de cellules somatiques et peuvent être différenciées en différents types de cellules. Ils sont souvent utilisés comme système pour modéliser la pathogenèse des maladies ou effectuer le dépistage de médicaments, et offrent également le potentiel d’être utilisés dans le contexte de la médecine personnalisée. Étant donné que les CSPi ont un grand potentiel, il est important de les caractériser pleinement pour les utiliser en tant que système modèle fiable. Nous avons déjà montré l’importance de cultiver des CSPi dans un environnement hypoxique, car ces cellules dépendent de la glycolyse et un envir....

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Protocole

1. Revêtement de 96 plaques de puits

REMARQUE : Différents revêtements ont été testés dans la même plaque, mais dans des puits distincts (voir le dossier supplémentaire).

  1. Diluer le Matrigel 1:100 dans DMEM. Ajouter 100 μL par puits aux plaques de 96 puits et incuber pendant 1 h à température ambiante. Ensuite, retirez la solution et lavez les puits avec 100 μL de DMEM deux fois.
  2. Laminine diluée (20 μg/mL, LN-521) dans du PBS (avec calcium et magnésium). Ajouter 100 μL au puits et incuber à 4 °C pendant la nuit. Le lendemain, effectuez deux lavages avec DMEM avant d’ensemencer les cellules.
  3. Dilu....

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Résultats

Dans cette étude, nous avons étudié la confluence des CSPi lorsqu’elles sont cultivées dans différentes conditions de revêtement. À l’aide d’un cytomètre, nous avons pu obtenir des résultats facilement informatifs en trois exemplaires en 5 jours. Étant donné que les CSPi se fixent à peine aux récipients en plastique et qu’un revêtement est nécessaire pour favoriser leur prolifération, nous avons décidé de surveiller la confluence des CSPi humaines car elle indique la santé de la culture cellulaire et peut refléter leur p.......

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Discussion

L’utilisation des CSPi pour la modélisation des maladies et le dépistage futur des médicaments, ainsi que leur application possible en médecine de précision, en font une technologie d’une grande pertinence et, pour cette raison, nous pensons qu’il est nécessaire de comprendre clairement les conditions de culture in vitro qui ressemblent mieux à la situation physiologique des cellules souches embryonnaires. Dans ce contexte, nous avons testé différents revêtements ECM utilisant des CSPi de type sauvage afin de comprendre .......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

L’étude a été financée par des subventions de la Fondazione Bambino Gesù et de Ricerca Corrente (ministère italien de la Santé) à C.C.  Nous tenons à remercier le Dr Enrico Bertini (Département de neurosciences, Unité des maladies neuromusculaires et neurodégénératives, Laboratoire de médecine moléculaire, Hôpital de recherche pour enfants Bambino Gesù), le Dr Stefania Petrini (Centre central de microscopie confocale, Laboratoires de recherche, Hôpital de recherche pour enfants Bambino Gesù), Giulia Pericoli (Département d’onco-hématologie, thérapie génique et cellulaire, Hôpital de recherche pour enfants Bambino Gesù) e....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Pipettes sérologiques à bandes de 10 ml, polystyrène, emballées individuellement dans du papier/plastique,Corning4488Outil
15 mL de tubes à centrifuger coniques en polypropylène (PP) haute clartéFalcon352097
outil 1x PBS (avec Ca2+ ; Mg2+)Thermofisher14040133Medium
1x PBS (sans Ca2+ ; Mg2+)EurocloneECB4004LMedium
5 mL Stripette Pipettes sérologiques, polystyrène, emballées individuellement dans du papier/plastique,Corning4487
Outil Microplaque de culture cellulaire, 96 puits, PS, F-BottomGreiner Bio One655090Support
Plaque de culture cellulaire, 6 puitsCostar3516Support
DMEM (Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium-high glucose)SigmaD5671Medium
EDTASigmaED4SS-500gRéactif
Epi Epi Episomal iPSC Reprogramming KitInvitrogenA15960Reagent
FAST - READ 102BiosigmaBVS100Outil
Sérum fœtal bovin (FBS)Gibco10270106Medium
FibronectineMerckFC010Revêtement
GlycérolSigmaG5516Réactif
H2OMILLIQ
HoechstThermofisher33342Réactif
Laminin 521Stem Cell Technologies77003Revêtement
L-Glutamine (200 mM)Gibco LS25030081 Réactif
MatrigelCorning Matrigel hESC-Qualified Matrix354277Coating
Fibroblastes embryonnaires de souris (MEF)Life TechnologiesA24903Coating
MTESR1Medium Stem Cell Technologies85851
Medium MTESR1 SupplementStem Cell Technologies85852Medium
Pénicilline-Streptomycine (10 000 U/mL)Gibco15140122 Réactif
PhalloidinSigmaP1951Réactif
VitronectineStem Cell Technologies7180Revêtement
Y-27632SigmaY0503Réactif
stériles stériles

Références

  1. Masotti, A., et al. Aged iPSCs display an uncommon mitochondrial appearance and fail to undergo in vitro neurogenesis. Aging (Albany NY). 6 (12), 1094-1108 (2014).
  2. Xu, C., et al. Feeder-free growth of undifferentiated hu....

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Réimpressions et autorisations

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