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Article de méthode

Criblage à haut débit des composés chimiques pour élucider leurs effets sur la persistance bactérienne

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DOI :

10.3791/61597

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23 février 2021

 , 

Dans cet article

Résumé

Dans ce document de méthode, nous présentons une stratégie de criblage à haut débit pour identifier les composés chimiques, tels que les osmolytes, qui ont un impact significatif sur la persistance bactérienne.

Résumé

Les bactéries persistantes sont définies comme une petite sous-population de variantes phénotypiques ayant la capacité de tolérer des concentrations élevées d’antibiotiques. Ils constituent un problème de santé important, car ils ont été associés à des infections chroniques récurrentes. Bien que la dynamique stochastique et déterministe des mécanismes liés au stress soit connue pour jouer un rôle significatif dans la persistance, les mécanismes sous-jacents au passage phénotypique à/de l’état de persistance ne sont pas complètement compris. Bien que les facteurs de persistance déclenchés par les signaux environnementaux (p. ex. épuisement des sources de carbone, d’azote et d’oxygène) aient fait l’objet d’études approfondies, les effets des osmolytes sur la persistance n’ont pas encore été déterminés. À l’aide de puces à ADN (c.-à-d. 96 plaques de puits contenant divers produits chimiques), nous avons conçu une approche pour élucider les effets de divers osmolytes sur la persistance d’Escherichia coli de manière à haut débit. Cette approche est transformatrice car elle peut être facilement adaptée à d’autres réseaux de dépistage, tels que les panels de médicaments et les bibliothèques de gènes knock-out.

Introduction

Les cultures bactériennes contiennent une petite sous-population de cellules persistantes qui sont temporairement tolérantes à des niveaux anormalement élevés d’antibiotiques. Les cellules persistantes sont génétiquement identiques à leurs parents sensibles aux antibiotiques, et leur survie a été attribuée à l’inhibition transitoire de la croissance1. Les cellules persistantes ont été découvertes pour la première fois par Gladys Hobby2, mais le terme a été utilisé pour la première fois par Joseph Bigger lorsqu’il les a identifiées dans des cultures de Staphylococcus pyogenes traitées à la pénicilline

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Protocole

1. Préparation du milieu de croissance, de la solution d’ofloxacine et des stocks de cellules D’E. coli

  1. Milieu régulier Luria-Bertani (LB) : Ajouter 10 g/L de tryptone, 10 g/L de chlorure de sodium (NaCl) et 5 g/L d’extrait de levure dans de l’eau désionisée (DI). Stériliser le milieu par autoclavage.
  2. Plaques de gélose LB : Ajouter 10 g/L de tryptone, 10 g/L de NaCl, 5 g/L d’extrait de levure et 15 g/L de gélose dans de l’eau DI et stériliser le milieu par autoclavage. À la température désirée (~55 °C), verser ~30 mL de milieu de gélose dans des plaques carrées (10 x 10 cm). Sécher les assiettes et conserver à 4 °C.
  3. ....

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Résultats

La figure 1 décrit notre protocole expérimental. Les expériences sur le cycle de dilution/croissance (voir protocole 2) ont été adaptées d’une étude menée par Keren et al.5 pour éliminer les persistants provenant des cultures nocturnes. La figure 2A est une image représentative des plaques de gélose utilisées pour déterminer les niveaux d’UFC des cultures cellulaires avant et après le traitement ofx. Dans ces expériences, les cellules ont.......

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Discussion

L’essai de persistance à haut débit décrit ici a été mis au point pour élucider les effets de divers produits chimiques sur la persistance de E. coli. En plus des plaques de particules commerciales, les puces à ADN peuvent être construites manuellement comme décrit à l’étape 4.2. De plus, le protocole présenté ici est flexible et peut être utilisé pour filtrer d’autres puces à ADN, telles que les panneaux de médicaments et les bibliothèques cellulaires, qui sont dans 96 formats de plaques de puits. Les condition.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Nous tenons à remercier les membres d’Orman Lab pour leurs précieuses contributions au cours de cette étude. Cette étude a été financée par le nih/niaid K22AI125468 prix de transition de carrière et une subvention de démarrage de l’Université de Houston.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Tube à essai de 14 mlFisher Scientific14-959-1B
souche E. coli MG1655UniversitéObtenu du laboratoire Brynildsen
Plaque à fond plat à 96 puitsUSA Scientific5665-5161
Membrane d’étanchéité perméable aux gazVWR102097-058Stérilisé par irradiation gamma et exempt de cytotoxines
Demi-surface plaque à fond plat à 96 puitsVWR82050-062
LB géloseFisher ScientificBP1425-2Qualité génétique moléculaire
Sel d’ofloxacineVWR103466-232HPLC &ge ; 97.5
Microréseau de phénotypes (PM-9 et PM-10)BiologN/ALes plaques PM-9 et PM-10 contenaient respectivement divers osmolytes et tampons
Plaque à fond rond à 96 puitsUSA Scientific5665-0161
Chlorure de sodiumFisher ScientificS271-500Certifié de qualité ACS
Nitrate de sodiumFisher ScientificAC424345000de qualité réactif ACS
Nitrite de sodiumFisher ScientificAAA186680B98 % de pureté
Boîte de Pétri carréeFisher ScientificFB0875711A
TryptoneFisher ScientificBP1421-500Qualité de génétique moléculaire
Varioskan lux lecteur de microplaques multimodeThermo Fisher ScientificVLBL00D0Utilisé pour la mesure de la densité optique à 600 nm
Extrait de levureFisher ScientificBP1422-100Grade génétique moléculaire
de Princeton

Références

  1. Lewis, K. Persister cells, dormancy and infectious disease. Nature Reviews Microbiology. 5 (1), 48-56 (2007).
  2. Hobby, G. L., Meyer, K., Chaffee, E. Observations on the Mechanism of Action of Penicillin. Experimental Biology and Medicine. 50 (2), 281....

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Réimpressions et autorisations

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