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Article de méthode

Préparation de coupes cérébrales aiguës du pôle dorsal de l’hippocampe chez des rongeurs adultes

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DOI :

10.3791/61699

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10 septembre 2020

Dans cet article

Résumé

Le but de ce protocole est de décrire une méthode permettant de produire des tranches de l’hippocampe dorsal pour un examen électrophysiologique. Cette procédure utilise la perfusion avec de l’ACSF réfrigéré avant la préparation de la tranche avec un angle de tranchage proche de la coronale qui permet de préserver les neurones principaux sains.

Résumé

Les enregistrements de cellules entières à partir de tranches de cerveau de rongeurs aigus sont un pilier de la recherche neurophysiologique moderne, permettant une mesure précise des propriétés cellulaires et synaptiques. Néanmoins, il est de plus en plus nécessaire d’effectuer des analyses corrélées entre différents modes expérimentaux en plus de l’électrophysiologie en tranches, par exemple : immunohistochimie, biologie moléculaire, imagerie in vivo ou enregistrement électrophysiologique ; pour répondre à des questions de plus en plus complexes sur le fonctionnement du cerveau. Cependant, il n’est pas simple de tirer des conclusions significatives de ces diverses approches expérimentales, car même au sein de structures cérébrales relativement bien décrites, il existe un degré élevé de variation sous-régionale de la fonction cellulaire. Cela n’est nulle part mieux illustré que dans le CA1 de l’hippocampe, qui a des propriétés dorso-ventrales bien définies, basées sur des propriétés cellulaires et moléculaires. Néanmoins, de nombreuses études publiées examinent les modèles d’expression des protéines ou l’activité in vivo corrélée au comportement dans l’étendue dorsale de l’hippocampe ; et expliquer les résultats de manière mécanique avec l’électrophysiologie cellulaire de la région ventro-médiale. Ceci est encore plus compliqué par le fait que de nombreuses expériences électrophysiologiques en tranches aiguës sont effectuées sur des animaux juvéniles, alors que d’autres modes expérimentaux sont réalisés sur des animaux plus matures. Pour résoudre ces problèmes, cette méthode intègre la perfusion transcardique de rongeurs matures (rongeurs matures âgés de >60 jours) avec du liquide céphalo-rachidien artificiel, suivie de la préparation de coupes coronales modifiées, y compris le pôle septal de l’hippocampe dorsal pour enregistrer à partir de cellules pyramidales CA1. Ce processus conduit à la génération de tranches aiguës saines de l’hippocampe dorsal, permettant une interrogation électrophysiologique cellulaire basée sur des tranches et associée à d’autres mesures.

Introduction

L’hippocampe est sans doute la structure la mieux étudiée du cerveau des mammifères, en raison de sa taille relativement grande et de sa structure laminaire proéminente. L’hippocampe a été impliqué dans un certain nombre de processus comportementaux : navigation spatiale, mémoire contextuelle et formation d’épisodes. Cela est dû en partie à la facilité relative d’accès aux parties dorsales de l’hippocampe chez les rongeurs pour l’analyse in vivo . En effet, les principales cellules de sortie sont généralement à moins de 2 mm de la surface piale.

Chez les rongeurs, l’hippocampe est une structure rel....

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Protocole

Tous les animaux ont été générés et entretenus conformément aux directives du Home Office and Institutional (HO# P135148E). Tous les rats ont été maintenus sur un cycle lumière/obscurité de 12 heures et ont eu un accès ad libitum à la nourriture et à l’eau.

1. Perfusion transcardique d’ACSF réfrigéré

  1. Avant toutes les expériences, placer ~200 mL de saccharose-ACSF (tableau 1) dans le congélateur à -20 °C (jusqu’à ce qu’il soit semi-congelé, pour le tranchage) et ~100-200 mL supplémentaires de saccharose-ACSF filtré sur de la glace (pour la perfusion), en bouillonnant ave....

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Résultats

Le protocole décrit ci-dessus permet de préparer des tranches viables à partir du pôle septal de l’hippocampe dorsal chez les rats matures. Un facteur clé de ce protocole est la perfusion de saccharose-ACSF réfrigéré, avant la préparation de la tranche, ce qui permet d’obtenir des PC CA1 sains à proximité de la surface de la tranche. La qualité de la tranche produite est évaluée visuellement sous optique IR-DIC, et les cellules saines identifiées comme ayant de grands corps cellulaires de forme ovoïde sont situées dans t.......

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Discussion

Ici, un protocole est décrit pour produire des coupes cérébrales de haute qualité à partir de l’extension dorsale du CA1 de l’hippocampe, permettant des enregistrements de plusieurs neurones viables dans cette région. L’approche combinatoire de l’enregistrement de cellules entières à partir de coupes quasi-coronales suivie d’une visualisation des neurones est essentielle à la confirmation de la viabilité et de l’identité cellulaires.

Ce protocole produit de ma.......

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Déclarations de divulgation

L’auteur déclare qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Remerciements

L’auteur tient à remercier le professeur David JA Wyllie, le Dr Emma Perkins, Laura Simoes de Oliveira et le professeur Peter C Kind pour leurs commentaires utiles sur l’optimisation du manuscrit et du protocole, ainsi que l’Initiative Simons pour le développement du cerveau pour les frais de publication.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Logiciel d’acquisitionMolecular DevicespClamp 10
Rats adultesDiversn/aToute souche de rat adulte (60 jours et plus)
AmplificateurMolecular DevicesAxopatch 700B
Logiciel d’analyseFreewareStimfithttps://github.com/neurodroid/stimfit
Ciseaux à osFST16152-12Le style Littauer
Verre capillaireHarvard Apparatus30-0060Pipettes en verre borosilicaté avec filament de 1,5 mm de diamètre extérieur, 0,86 mm de diamètre intérieur.
CarbogenBOCDivers95 % O2/5 % CO2
CCDcaméra ScientificaSciCamProhttps://www.scientifica.uk.com/products/
Chemicals/ReagentsSigma AldrichDiversTous les réactifs de laboratoire achetés auprès de Sigma Aldrich.
Cyanoacrylate (c’est-à-dire RS Pro 3)Composants RS918-6872Eviter les formulations de cyanoacrylate à base de gel
NumériseurDispositifs moléculairesDigidata 1550B
Dissection broches/aiguillesDiversUtilisation Aiguillescalibre 16 (ci-dessus)
Système d’électrophysiologieScientificaSliceScopehttps://www.scientifica.uk.com/products/ scientifica-slicescope
Ciseaux à iris finsFST14568-12Avec pointes en carbure de tungstène
Boîte de Pétri en verreFisher Scientific12911408
Aiguilles hypodermiquesBD HealthcareDiverscalibres 16, 18 et 22
Isofluorane 100 % W/W (c’est-à-dire IsoFlo)
Mayo ZoetisFST14110-17
Micromanipulateurs à pointes émousséesScientificaMicrostarhttps://www.scientifica.uk.com/products/scientifica-microstar-micromanipulator
PaintbrushArt storen/aUn pinceau à poils fins, acheté dans un magasin d’art local.
Pipette PasteurFisher Scientific11546963Une pipette Pasteur en verre, mais coupée de manière à ce que l’extrémité émoussée soit utilisée pour la pipette de transfert.
Pompe péristaltiqueWatson Marlow12466260Pompe péristaltique monocanal
Extracteur de pipettesSutter InstrumentsP-97D’autres modèles et méthodes de production de pipettes fonctionneraient tout aussi bien.
Seringues en plastique (1, 2, 5 mL)BD HealthcareDivers
Outil en os de RongeurFST16021-14
Chambre de maintiendes tranches Fait maison
Poids de tranche/harpeHarvard AppareilSHD-22L/15Des alternatives conviendraient.
Pentobarbital sodique (c’est-à-dire Pentoject)Animalcare Ltd10347/4014200 mg/mL ; d’autres formulations de pentobarbital conviendraient
SpatuleBochem3213Disponible auprès de Fisher Scientific
Filtres à seringueFisher Scientific10482012Filtres à seringue de marque Corning, 0,22 & micro ; m diamètre des pores.
VibtratomeLeica1491200S001modèle VT1200S avec bain-marie Vibrocheck
Fisher Scientific15167015bain-marie de 5 litres, par exemple : Grant Instruments&trade ; JBA5 scientifica-scicam-pro
de Ciseaux de type 50019100

Références

  1. Amaral, D. G., Witter, M. P. The three-dimensional organization of the hippocampal formation: a review of anatomical data. Neuroscience. 31 (3), 571-591 (1989).
  2. Moser, M. B., Moser, E. I. Functional differentiation in the hippocampus. Hippocampus. 8....

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Réimpressions et autorisations

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