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Article de méthode

Le cerveau aigu de souris tranche pour étudier l’activité spontanée de réseau hippocampal

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DOI :

10.3791/61704

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28 août 2020

Dans cet article

Résumé

Ce protocole décrit la préparation des tranches horizontales de cortex hippocampal-entorhinal (HEC) des souris présentant l’activité spontanée d’ondulation d’onde forte. Les tranches sont incubées dans une chambre de rétention d’interface simplifiée et les enregistrements sont effectués dans des conditions submergées avec un fluide céphalo-rachidien artificiel à écoulement rapide pour favoriser l’oxygénation des tissus et l’émergence spontanée de l’activité au niveau du réseau.

Résumé

Le tranchage aigu du cerveau des rongeurs offre une approche expérimentale tractable pour mieux comprendre l’organisation et la fonction des circuits neuronaux avec résolution à cellule unique à l’aide d’électrophysiologie, de microscopie et de pharmacologie. Cependant, une considération majeure dans la conception des expériences in vitro est la mesure dans laquelle différentes préparations de tranche récapitulent des modèles naturalistes de l’activité neuronale comme observé in vivo. Dans le cerveau intact, le réseau hippocampal génère une activité de population hautement synchronisée reflétant l’état comportemental de l’animal, comme en illustrent les complexes d’ondulation à ondes vives (SWR) qui se produisent pendant les états de consommation éveillés ou le sommeil non paradoxal. Les DTS et d’autres formes d’activité réseau peuvent émerger spontanément dans des tranches hippocampiques isolées dans des conditions appropriées. Afin d’appliquer la boîte à outils puissante tranche de cerveau à l’étude de l’activité du réseau hippocampal, il est nécessaire d’utiliser une approche qui optimise la santé des tissus et la préservation de la connectivité fonctionnelle au sein du réseau hippocampal. Les souris sont transcardially perfusées avec le fluide céphalo-rachidien artificiel à base de saccharose froid. Les tranches horizontales contenant l’hippocampe sont coupées à une épaisseur de 450 μm pour préserver la connectivité synaptique. Les tranches se rétablissent dans une chambre de style interface et sont transférées dans une chambre submergée pour les enregistrements. La chambre d’enregistrement est conçue pour la superfusion à double surface du liquide céphalo-rachidien artificiel à un débit élevé afin d’améliorer l’oxygénation de la tranche. Ce protocole donne des tissus sains adaptés à l’étude de l’activité réseau complexe et spontanée in vitro.

Introduction

La mesure électrophysiologique à partir de tranches hippocampiques vivantes in vitro est une approche expérimentale puissante avec de nombreux avantages. L’expérimentateur peut utiliser un microscope, des micromanipulateurs et un système d’enregistrement pour visualiser et recueillir directement les mesures des neurones individuels dans le tissu. Les tranches de tissu sont également très accessibles à la photostimulation ou à l’administration de médicaments pour des expériences optogénétiques, chimiogénétiques ou pharmacologiques.

Le réseau hippocampal génère une activité de population hautement synchrone in vivo, visible ....

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Protocole

Toutes les méthodes décrites ici ont été approuvées par le Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux de l’Université Columbia (AC-AAAU9451).

1. Préparer des solutions

  1. Préparez la solution de coupe du saccharose pour le tranchage tel que décrit dans le tableau 1.
    REMARQUE : Après avoir préparé 1 L de solution de saccharose, congeler une petite quantité (environ 100 à 200 mL) dans un plateau de glace. Ces glaçons congelés au saccharose seront mélangés dans une boue glacée (voir l’étape 4.3).
  2. Préparer le liquide céphalo-rachidien artificiel (ACSF) pour l’enregistrement ....

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Résultats

Présentés ici sont des enregistrements représentatifs de tranches HEC préparé tel que décrit dans ce protocole. Après récupération dans une chambre de détention d’interface (figure 1C), les tranches sont transférées individuellement dans une chambre d’enregistrement submergée (figure 2B). La chambre d’enregistrement est fournie avec acsf saturé de carbogen à l’aide d’une pompe périssaltique (Figure 2A). La pompe aspire d’abord ACSF .......

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Discussion

Il y a plusieurs étapes dans ce protocole de tranchage conçus pour favoriser la santé des tissus et favoriser l’émergence de l’activité spontanée du réseau naturaliste : la souris est transcardially perfusée avec la solution de coupe de saccharose réfrigérée ; les tranches de cortex horizontal-entorhinal (HEC) sont coupées à une épaisseur de 450 μm de l’hippocampe intermédiaire ou ventral ; les tranches se rétablissent à l’interface de l’ACSF réchauffé et de l’air humidifié et riche en carbogen; pendant les enregistremen.......

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Déclarations de divulgation

L’auteur n’a rien à divulguer.

Remerciements

L’auteur tiens à remercier Steve Siegelbaum pour son soutien. Le financement est fourni par 5R01NS106983-02 ainsi que par 1 F31 NS113466-01.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Imprimante 3DLulzbotLulzBot TAZ 6
Support d’incubation de tranche de cerveau aiguëNIH 3D Print Exchange3DPX-001623Conçu par ChiaMing Lee, disponible chez https://3dprint.nih.gov/discover/3dpx-001623
Adenosine 5&prime ;-triphosphate selde magnésium Sigma AldrichA9187-500MG
Ag-Cl granulés moulusWarner64-1309, (E205)
géloseBecton, Dickinson214530-500g
d’acide ascorbiqueAlfa Aesar36237
bécher (250 mL)Kimax14000-250
bécher (400 mL)Kimax14000-400
biocytineSigma AldrichB4261
mélangeurOsterBRLY07-B00-NP0
Ciseaux de Bonn, petitbecton,14184-09
avec filament (D.E. 1,5 mm, D.E. 0,86 mm, longueur 10 cm)Sutter InstrumentsBF150-86-10HPcapillaires polis au feu sont préférables.
solution de chlorure de calcium (1 M)G-BiosciencesR040
appareil photoOlympusOLY-150
gaz carbogène comprimé (95 % d’oxygène / 5 % de dioxyde de carbone)AirgasX02OX95C2003102
oxygène compriméAirgasOX 200
stimulateur isolé à tension constanteDigitimer Ltd.Lamelles DS2A-Mk.II
(22x50 mm)VWR16004-314
colle cyanoacrylateKrazy GlueKG925Utilisez idéalement le formulaire à appliquer pour un logiciel d’acquisition de données de précision
AxographN/ATout logiciel équivalent (par ex. pClamp) ferait l’affaire.
de travail tour Dell Precision T1500 DesktopDellN/ALe numéro de catalogue dépend de l’ordinateur spécifique : tout ordinateur fonctionne tant qu’il peut exécuter un logiciel d’acquisition d’électrophysiologie.
Digidata 1440AMolecular Devices1-2950-0367
minuterie numériqueVWR62344-6414 canaux Minuterie traçable
tampons absorbants jetablesVWR56616-018
ciseaux de dissecteurOutils de science fine14082-09
lames de rasoir à double tranchantPersonnaBP9020
double automatique régulateur de températureWarner Instrument CorporationTC-344B
Chambre d’enregistrement optimisée à double surface ou à flux laminaireN/A N/ALa chambre présentée dans ce protocole est fabriquée sur mesure. Un équivalent commercial serait le RC-27L de Warner Instruments.
rack d’équipementAutomate ScientificFR-EQ70"Un rack n’est pas strictement nécessaire mais utile pour l’organisation de l’électrophysiologie
Ethylène glycol-bis(2-aminoethyiether)- N,N,N',N'-acide tétraacétique (EGTA)Sigma Aldrich324626-25GM
papier filtreWhatman1004 070
échelle fineMettler ToledoXS204DR
Extracteur de micropipettes enflammé/brunSutter InstrumentsP-97
boîte de Pétri en verre (100 x 15 mm)Corning3160-101
glucoseFisher ScientificD16-1
Guanosine 5&prime ;-triphosphate sodium sel hydrateSigma AldrichG8877-250MG
seaux à glaceSigma AldrichBAM168072002-1EA
vaporisateur d’isofluraneGeneral Anesthetic ServicesTec 3
bande de laboratoireFisher Scientific15-901-10R
papier lentilleFisher Scientific11-996
source lumineuseOlympusTH4-100
solution de chlorure de magnésium (1 M)Qualité Biologique351-033-721EA
magnétique barres d’agitationFisher Scientific14-513-56Le numéro de catalogue dépendra de la taille de la barre d’agitation.
micromanipulateurLuigs & SM-5
(manuel)Microscope ScientificaLBM-2000-00
Microspatule OlympusBX51WI
Outils scientifiques fins10089-11
moniteurDell2007FPb
MultiClamp 700B Amplificateur de microélectrodesDispositifs moléculairesMULTICLAMP 700BLe MultiClamp 700B doit inclure des étages supérieurs, des porte-pipettes et une cellule modèle.
N-(2-Hydroxyéthyl)pipérazine-N&prime ;-(acide 2-éthanesulfonique), (HEPES)Aiguille Sigma AldrichH3375-25G
(calibre 20, longueur 1,5Becton, Dickinson305176
filament de nylonYLI Wonder Invisible Thread212-15-004taille 0.004. Ce chat. # provient de Amazon.com
maille de nylonWarner Instruments Corporation64-0198
pompe perstaltiqueHarvard Apparatus70-2027
Phosphocréatine di(tris) selSigma AldrichP1937-1G
Supports de pipetteMolecular Devices1-HL-U
fil de platineWorld PrecisionPT0203
filament d’acide polylactique (PLA)UltimakerRAL 9010
chlorure de potassiumSigma AldrichP3911-500G
gluconate de potassiumSigma Aldrich1550001-200MG
hydroxyde de potassiumSigma Aldrich60377-1KG
lames de rasoirVWR55411-050
pince à rouleauMonde Precision Instruments14041
échelleMettler ToledoPM2000
manche de scalpelFine Science Tools10004-13
harpe à tranchesWarnerSHD-26GH/2
bicarbonate de sodiumFisher ChemicalS233-500
chlorure de sodiumSigma AldrichS9888-1KG
phosphate de sodium monobasique anhydreFisher ChemicalS369-500
pyruvate de sodiumFisher ChemicalBP356-100
spatuleVWR82027-520
spatule/cuillère, grandesstériles VWR470149-442
Feather72044-10
agitateur / plaque chauffanteCorning6795-220
robinets d’arrêt, 1 voieWorld Precision Instruments14054
robinets d’arrêt, 3 voiesWorld Precision Instruments14036
saccharoseAcros OrganicsAC177142500
support pour pinces pivotantesFisher Scientific14-679Q
ciseaux chirurgicaux, tranchants/émoussésOutils de science fineSeringue 14001-12
(1 mL)309659Becton, Dickinson
(60 mL avec embout Luer-Lok)Pinceà
Scientific05-769-8Q
, grande
pipettes de transfertFisher Scientific13-711-7M
tubeTygonE-3603ID 1/16 pouce, OD 3/16 pouce
tube TygonR-3603ID 1/8 pouce, OD 1/4 pouce
videDow Corning14-635-5D
microtome à lame vibranteLeicaVT 1200S
table d’amortissement des vibrations avec cage de FaradayMicro-G / TMC-ametek2536-516-4-30PE
fiole jaugée (1 L)KimaxKIM-28014-1000
(2 L)PYREX65640-2000
bain d’eau chaudeVWR1209
  ;
capillaires en verre borosilicate Dickinson Les Station Micromanipulateur Neumann ) lames de scalpel Seringue trois dents Fisher Scientific 05-769-8Q Fisher Scientific 05-769-8Q, grande pince à tissus 11021-15 pince à tissus, petite pince à 309653 dents Fisher pince à tissus 11023-10 graisse sousFiole jaugée

Références

  1. Buzsáki, G., Lai-Wo, S., Vanderwolf, C. H. Cellular bases of hippocampal EEG in the behaving rat. Brain Research Reviews. 6, 139-171 (1983).
  2. Buzsáki, G. Hippocampal sharp waves: Their origin and significance. Brain Research. 398, 242-253 (1986).
  3. Buzsáki, G.....

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Réimpressions et autorisations

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