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Article de méthode

Bioimpression directe de sphéroïdes mammaires multicellulaires 3D sur les réseaux endothéliales

4.7K vues

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DOI :

10.3791/61791

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2 novembre 2020

 , 

Dans cet article

Résumé

Le but de ce protocole est de bioimprimer directement les cellules épithéliales du sein sous forme de sphéroïdes multicellulaires sur les réseaux endothéliales pré-formés pour créer rapidement des modèles de co-culture mammaire-endothéliale 3D qui peuvent être utilisés pour des études de dépistage de médicaments.

Résumé

La bioimpression est en train d’émerger comme un outil prometteur pour fabriquer des modèles 3D de cancer humain qui récapitulent mieux les caractéristiques critiques de l’architecture tissulaire in vivo. Dans la bioimpression actuelle de l’extrusion couche par couche, les cellules individuelles sont extrudées dans un bioink ainsi que des indices spatiaux et temporels complexes pour favoriser l’auto-assemblage hiérarchique des tissus. Cependant, cette technique de biofabrication repose sur des interactions complexes entre les cellules, les bioinks et les indices biochimiques et biophysiques. Ainsi, l’auto-assemblage peut prendre des jours, voire des semaines, peut nécessiter des bioinks spécifiques, et peut ne pas toujours se produire quand il ya plus d’un type de cellule impliqués. Nous avons donc développé une technique pour bioimprimer directement les sphéroïdes épithéliales pré-formés du sein 3D dans une variété de bioinks. Les sphéroïdes épithéliales 3D pré-formés de sein bioimprimés ont soutenu leur viabilité et leur architecture polarisée après impression. Nous avons en outre imprimé les sphéroïdes 3D sur les réseaux cellulaires endothéliales vasculaires pour créer un modèle de co-culture. Ainsi, la nouvelle technique de bioimpression crée rapidement un modèle de sein humain 3D plus pertinent physiologiquement à moindre coût et avec une plus grande flexibilité que les techniques traditionnelles de bioimpression. Cette technique polyvalente de bioimpression peut être extrapolée pour créer des modèles 3D d’autres tissus dans des bioinks supplémentaires.

Introduction

Les modèles de tumeurs vascularisées in vitro 3D sont des outils essentiels pour l’étude mécaniste de la croissance et de la métastase du cancer. Pour le cancer du sein en particulier, les cellules épithéliales du sein cultivés à Matrigel s’organisent en sphéroïdes polarisés qui ressemblent plus étroitement à l’architecture in vivo mammaire acinus1,2,3,4,5,6,7,8. La culture cellulaire épithéliale du sein....

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Protocole

1. Croissance épithéliale des cellules mammaires et médias d’analyse

  1. MCF10Une cellule épithéliale du sein
    NOTE : La ligne épithéliale immortalisée non tumorigenic de cellules épithéliales de sein est dérivée d’un patient présentant la maladie fibrocystic43. Les cellules n’expriment pas le récepteur d’oestrogène.
    1. Pour préparer le facteur épidermique de croissance (EGF) de 20 μg/mL, dissoudre 100 μg d’EGF lyophilisé dans 500 μL de dHstérile 2O pour faire 200 μg/mL EGF. Ajouter 500 μL de 200 μg/mL EGF dans 4,5 mL de BSA stérile de 0,1 % en dH2O pour faire une solution de stock EGF de 20 μg/mL. Conserver l....

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Résultats

Les cellules épithéliales du sein devraient s’auto-organiser en sphéroïdes 3D après 5-8 jours de culture sur la solution matricielle et dans le milieu de culture avec la solution matricielle de 2%. Les sphéroïdes épithéliales du sein MCF10A non tumoriogènes devraient apparaître ronds et avoir un centre creux, l’intégrine α6 polarisée jusqu’au bord externe du sphéroïde(figure 1, inset montre des centres creux). Les cellules épithéliales très invasives du cancer du sein MDA-MB-231 forment des .......

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Discussion

Ce protocole est le premier du genre à bioimprimer les sphéroïdes dans leur architecture 3D pour la co-culture avec les cellules endothéliales également dans leur architecture 3D. Les étapes critiques du protocole incluent la formation initiale de sphéroïdes épithéliales du sein et de réseaux HUVEC. Il faut faire preuve d’une extrême prudence dans l’alimentation des sphéroïdes épithéliales du sein, car ils sont facilement perturbés par la solution matricielle. De même, les sphéroïdes épithéliales du sein doivent être tra.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Cette recherche a été financée par NIH 1R01HL140239-01 à AMC. Nous tenons à remercier le Cell Imaging Center de l’Université Drexel.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
37° ; Incubateur C, 5 % de CO2 et 95 % d’humiditéSanyoMCO-20AICIncubation de cellules
Imprimante 3D Biosur mesureAucunUtilisé pour la bio-impression
lames de chambre à 8 puitsVWR, Radnor, PA53106-306pour l’ensemencement de sphéroïdes
Aiguille de calibre 25Sigma, St. Louis, MOZ192406-100EAAiguille de seringue de bio-impression
Éthanol absolu (200 proof )Sigma, St.Louis, MOE7023-500MLreconstitution des composants de média
Affinipure F(ab&prime ;)2 fragments de chèvre anti-souris IgGJackson ImmunoResearch, West Grove, PA115006020bloc secondaire - Immunofluorescence
Alexa Fluor 488 (1:200)Thermo Fisher, Waltham, MAA-11006Seconday anticorps-Immunofluorescence
Insuline bovineSigma, St.Louis, MOI-035-0.5MLMCF10A Additif médiatique
Albumine sérique bovine (BSA)Sigma, St.Louis, MOA2153-500GAgent bloquant -Immunofluorescence
Falcon 70 µ ; m Cell StrainerCorning, Corning, NY352350Supprimer les sphéroïdes de grande taille ou en grappes
CellTracker&trade ; Colorant CMTPX rougeThermo Fisher, Waltham, MAC34552Pré-coloration pour tubes HUVEC
Centrifugeuse compacteHermle-Labnet, Edison ,NJZ206APour les centrifugations cellulaires Toxine
cholériqueSigma, St.Louis, MOC8052-.5MGMCF10A Additif de média
Tubes coniques 15 mLVWR, Radnor, PA62406-200Cellules collectrices et remises en suspension
Countess II-FL Compteur de cellulesThermo Fisher, Waltham, MACellules de comptageAMQAF1000
Pipettes en verre (10 mL)VWR, Radnor, PA76184-746resuspension cellulaire
DMEM F :12Thermo Fisher, Waltham, MA11320033MCF10A média basal
DMEM 1XVWR, Radnor, PA10-014-CVMDA-MB-231 média basal
endothélial, Milieu basal-2 (EBM-2)Lonza, Durham, NCCC-3156Milieu basal HUVEC
Milieu de croissance endothéliale-2 (EGM-2)Lonza, Durham, NCCC-3162Accompagné d’un kit de balles (contenant des facteurs de croissance)
Alexa Fluor&trade ; 488 PhalloidinThermo Fisher, Waltham, MAÉtiquetage MDA-MB-231 sphéroïdes
Sérum fœtal bovinCytiva, Logan, UTSH30071.03HUVEC/MDA-MB-231 additif
Sérum de chèvreThermo Fisher, Waltham, MA16210064Composant de marquage par immunofluorescence
GlycineSigma, St.Louis, MOG8898-500GComposant tampon d’immunofluorescence
Hoescht 33342Thermo Fisher, Waltham, MA62249Coloration des noyaux Immunofluorescence
Sérum de chevalThermo Fisher, Waltham, MA16050130MCF10A Additif de milieu
HydrocortisoneSigma, St.Louis, MOH0888-5GMCF10A Additif médiatique
Cellules endothéliales de la veine ombilicale humaine (HUVECs)Applications cellulaires, San Diego , CA200-05fLignées cellulaires endothéliales
Intégrine et alpha ; 6Millipore, Billerica, MAMAB1378Composant de marquage de sphéroïdes d’immunofluorescence
vivanteThermo Fisher, Waltham, MAL3224Essai de coloration de cellules vivantes et mortes pour la viabilité cellulaire
LSM 700 Microscope confocal Zeiss, Thornwood, NYUtilisé pour visualiser les cellules
Matrigel - facteur de croissance réduit 10 mg/mlVWR, Radnor, PA354230Sphéroïde formation
MCF10A cellulesATCCCRL-10317Lignée cellulaire mammaire
MDA-MB-231 cellulesATCCHTB-26Lignée cellulaire mammaire
ParaformaldéhydeSigma, St.Louis, MO158127-500Gfixateur cellulaire
Pénicilline et streptomycineThermo Fisher, Waltham, MA15140122MCF10A / MDA-MB-231/HUVEC Additif de milieu
Phosphate Tamponné Saline 1X (PBS)Thermo Fisher, Waltham, MA7001106Tampon de lavage pour cellules avant trypsinisation
Tampon de phosphate solution saline 10XThermo Fisher, Waltham, MAAM9625composant tampon d’immunofluorescence
Or prolongé anti-décolorationThermo Fisher, Waltham, MAP36934milieu de montage d’immunofluorescence
Facteur de croissance épidermique humain recombinant, EGFPeprotech, Rocky Hill, NJAF-100-15MCF10A/ composant du milieu
de dosage Sodium Azide Sigma, St.Louis, MOtampon d’immunofluorescenceS2002-25G
Seringue stérile (10 mL)VWR, Radnor, PA75846-757Procédé de bio-impression
Boîte de culture tissulaire (10cm)VWR, Radnor, PA25382-166culture cellulaire monocouche
Triton X-100Sigma, St.Louis, MOT8787-250MLComposant tampon d’immunofluorescence
Trypan blue 0,4 %Thermo Fisher, Waltham, MAAdditif de compteurde cellules 15250061
Trypsine-EDTA 0,05 %Thermo Fisher, Waltham, MA25300054détachement de cellules
Tween -20Thermo Fisher, Waltham, MA85113Composant de tampon d’immunofluorescence
Facteur de croissance endothéliale vasculaire (VEGF165)Peprotech, Rocky Hill, NJ100-20HUVEC tube additif
Volocity 6.3 logiciel d’imagerie cellulairePerkinElmer, Hopkinton, MAZ compresseur de pile
de de milieu Essai de mort Composant

Références

  1. Barcellos-Hoff, M. H., Aggeler, J., Ram, T. G., Bissell, M. J. Functional differentiation and alveolar morphogenesis of primary mammary cultures on reconstituted basement membrane. Development. 105 (2), 223-235 (1989).
  2. Debnath, J., Muthuswamy, S. K., Brugge, J. S.

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Réimpressions et autorisations

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