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Article de méthode

Isolement de myocytes auriculaires et ventriculaires murins de haute qualité pour des mesures simultanées des transitoires Ca2+ et du courant calcique de type L

3.6K vues

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DOI :

10.3791/61964

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3 novembre 2020

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Les modèles murins permettent d’étudier les mécanismes clés de l’arythmogenèse. À cette fin, des cardiomyocytes de haute qualité sont nécessaires pour effectuer des mesures patch-clamp. Ici, une méthode pour isoler les myocytes auriculaires et ventriculaires murins via une perfusion de Langendorff à base d’enzymes rétrogrades, qui permet des mesures simultanées des transitoires de calcium et du courant de calcium de type L, est décrite.

Résumé

Les modèles murins jouent un rôle crucial dans la recherche sur l’arythmie et permettent d’étudier les mécanismes clés de l’arythmagénèse, y compris la fonction altérée des canaux ioniques et la manipulation du calcium. À cette fin, des cardiomyocytes auriculaires ou ventriculaires de haute qualité sont nécessaires pour effectuer des mesures patch-clamp ou pour explorer les anomalies de manipulation du calcium. Cependant, le rendement limité des cardiomyocytes de haute qualité obtenus par les protocoles d’isolement actuels ne permet pas les deux mesures chez la même souris. Cet article décrit une méthode pour isoler des myocytes auriculaires et ventriculaires murins de haute qualité via une perfusion de Langendorff à base d’enzymes rétrogrades, pour des mesures simultanées ultérieures des transitoires de calcium et du courant de calcium de type L d’un animal. Des cœurs de souris sont obtenus et l’aorte est rapidement canulée pour éliminer le sang. Les cœurs sont ensuite perfusés dans un premier temps avec une solution sans calcium (37 °C) pour dissocier le tissu au niveau des disques intercalés, puis avec une solution enzymatique contenant peu de calcium pour perturber la matrice extracellulaire (37 °C). Le cœur digéré est ensuite disséqué en oreillettes et ventricules. Les échantillons de tissus sont coupés en petits morceaux et dissous en pipetant soigneusement de haut en bas. La digestion enzymatique est arrêtée et les cellules sont réintroduites progressivement aux concentrations physiologiques de calcium. Après chargement avec un indicateur Ca2+ fluorescent, des cardiomyocytes isolés sont préparés pour la mesure simultanée des courants de calcium et des transitoires. De plus, les pièges d’isolement sont discutés et des protocoles de patch-clamp et des traces représentatives de courants de calcium de type L avec des mesures transitoires de calcium simultanées dans les myocytes murins auriculaires et ventriculaires isolés comme décrit ci-dessus sont fournis.

Introduction

Les arythmies cardiaques sont courantes et constituent l’un des principaux défis actuels en matière de soins de santé, car elles touchent des millions de personnes dans le monde. Les arythmies sont associées à une morbidité et une mortalité élevées 1,2 et représentent la cause sous-jacente de la majorité des morts subites cardiaques3. Les options de traitement à jour ont amélioré la survie des patients, mais sont encore principalement des traitements symptomatiques plutôt que de cibler les mécanismes sous-jacents. Ainsi, ces traitements ont une efficacité limitée et peuvent fréquemment ....

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Protocole

Toutes les procédures relatives aux animaux ont été approuvées par le Conseil d’examen des animaux de Basse-Saxe (LAVES, AZ-18/2900) et ont été menées conformément à toutes les directives institutionnelles, nationales et internationales en matière de bien-être animal.

1. Préarrangements

  1. Préparer 1 L de tampon de perfusion 10x (tableau 1), 500 mL de tampon de perfusion 1x (tableau 2), 50 mL de tampon de digestion (tableau 3), 10 mL de tampon stop (tableau 4), 1 L de solution Tyrode (tableau 5), 10 mL de chaque solution calcique (solution Tyrode avec glucose et quan....

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Résultats

Le rendement d’isolement est déterminé après la réintroduction du calcium en pipetant 10 μL de suspension cellulaire sur une lame de microscope. Plus de 100 cellules viables, en forme de bâtonnet, non contractantes/10 μL pour l’isolement de cellules auriculaires et plus de 1 000 cellules viables, en forme de bâtonnet, non contractantes/10 μL pour l’isolement des cellules ventriculaires sont considérées comme un rendement suffisant et sont couramment obtenues à l’aide de ce protocole. Les cellules auriculaires obtenues av.......

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Discussion

Cet article fournit un moyen simple et fonctionnel d’obtenir des myocytes auriculaires et ventriculaires de haute qualité à partir de la même souris pour des études patch-clamp avec des enregistrements transitoires de calcium simultanés. La qualité des données obtenues dépend fortement de la qualité de l’isolement cellulaire. Comme mentionné ci-dessus, de nombreuses méthodes pour isoler les cardiomyocytes murins ont été décrites précédemment 9,10,11,12.

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Remerciements

Ce travail a été soutenu par la Fondation allemande pour la recherche (DFG; Clinician Scientist Program In Vascular Medicine (PRIME), MA 2186/14-1 à P. Tomsits et D. Schüttler; VO1568/3-1, IRTG1816 et SFB1002 projet A13 à N. Voigt), Fondation allemande pour la recherche dans le cadre de la stratégie d’excellence de l’Allemagne (EXC 2067/1- 390729940 à N. Voigt), Centre allemand de recherche cardiovasculaire (DZHK; 81X2600255 à S. Clauss et N. Voigt; 81Z0600206 à S. Kääb), la Fondation Corona (S199/10079/2019 à S. Clauss), l’ERA-NET sur les maladies cardiovasculaires (ERA-CVD; 01KL1910 à S. Clauss), la Heinrich-and-Lotte-Mühlfenzl Stiftung (à S. Clauss) et la Fondatio....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
2,3-Butanedione MonoxymeSigma-Aldrich31550
27G canuleServopraxL10220
4-aminopyridineSigma-AldrichA78403
Anhydre DMSOSigma-AldrichD12345
Canule aortiqueRadnoti130163-20
BaCl2Sigma-Aldrich342920
Pince chirurgicale émousséeKent ScientificINS650915-4
Sérum de veau bovinSigma-Aldrich12133C
CaCl2Sigma-AldrichC5080
Bain-marie chauffé à circulationJulaboME
Collagénase Type IIWorthingtonLS994177
Ciseaux de disscétionKent ScientificINS600124
DL-aspartat K+-selSigma-AldrichA2025
EGTASigma-AldrichE4378
Fluo-3InvitrogenF3715
Fluo-3 AMInvitrogenF1242
GlucoseSigma-AldrichG8270
Guanosine 5&prime ;-triphosphate tris selSigma-AldrichG9002
Bobine chauffanteRadnoti158821
HeparineRatiopharm25.000 IE/5ml
HEPESSigma-AldrichH9136
chambre d’inductionCWE incorporated13-40020
IsofluraneCp-pharma1214
Chambre de cœur gainéeRadnoti130160
KClMerck1049360250
KH2PO4Sigma-AldrichP5655
MgCl x 6H2OSigma-AldrichM0250
MgSO4 x 7H2OSigma-AldrichM9397
Na2ATPSigma-AldrichA2383
Na2HPO4 x 2H2OSigma-AldrichS5136
NaClSigma-AldrichS3014
NaHCO3Sigma-AldrichS5761
Maille nylon (200 & micro ; m)VWR-Germany510-9527
Pipette pasteurSigma AldrichZ331759
boîtes de PetriThermo Fisher150318
Acide pluronique F-127Sigma-AldrichP2443
ProbenecidSigma-AldrichP8761
Pompe à rouleauxIsmatecISM597D
chirurgicale pinceKent ScientificINS650908-4
ciseaux chirurgicauxKent ScientificINS700540
suture de la soieFine Science ToolsNC9416241
seringueMerckZ683531-100EA
TaurinSigma-Aldrich86330

Références

  1. Camm, A. J., et al. Guidelines for the management of atrial fibrillation: the Task force for the management of atrial fibrillation of the European Society of Cardiology (ESC). Europace. 12 (10), 1360-1420 (2010).
  2. Chugh, S. S., et al.

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Réimpressions et autorisations

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