Ici, nous présentons un protocole pour générer et développer de manière robuste des cardiomyocytes humains à partir de cellules mononucléaires du sang périphérique du patient.
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Article de méthode
Ici, nous présentons un protocole pour générer et développer de manière robuste des cardiomyocytes humains à partir de cellules mononucléaires du sang périphérique du patient.
La génération de cardiomyocytes spécifiques au patient à partir d’une seule prise de sang a suscité un énorme intérêt pour la médecine de précision sur les maladies cardiovasculaires. La différenciation cardiaque à partir des cellules souches pluripotentes induites par l’homme (CSPi) est modulée par des voies de signalisation définies qui sont essentielles au développement cardiaque embryonnaire. De nombreuses méthodes de différenciation cardiaque sur des plateformes 2D et 3D ont été développées avec diverses efficacités et rendements cardiomyocytaires. Cela a intrigué les chercheurs en dehors du terrain, car la variété de ces méthodes peut être difficile à suivre. Nous présentons ici un protocole complet qui élabore la génération et l’expansion robustes de cardiomyocytes spécifiques au patient à partir de cellules mononucléaires du sang périphérique (PBMC). Nous décrivons d’abord un protocole de reprogrammation iPSC à haute efficacité à partir de l’échantillon de sang d’un patient en utilisant des vecteurs du virus Sendai non intégrés. Nous détaillons ensuite une méthode de différenciation monocouche médiée par de petites molécules qui peut produire de manière robuste des cardiomyocytes battants à partir de la plupart des lignées iPSC humaines. En outre, un protocole évolutif d’expansion des cardiomyocytes est introduit à l’aide d’une petite molécule (CHIR99021) qui pourrait rapidement étendre les cardiomyocytes dérivés du patient pour des applications de qualité industrielle et clinique. À la fin, des protocoles détaillés pour l’identification moléculaire et la caractérisation électrophysiologique de ces iPSC-CM sont décrits. Nous nous attendons à ce que ce protocole soit pragmatique pour les débutants ayant des connaissances limitées sur le développement cardiovasculaire et la biologie des cellules souches.
La découverte de cellules souches pluripotentes induites par l’homme a révolutionné la médecine cardiovasculaire moderne1,2. Les CSPi humaines sont capables de s’auto-renouveler et de générer tous les types de cellules dans le cœur, y compris les cardiomyocytes, les cellules endothéliales, les cellules musculaires lisses et les fibroblastes cardiaques. Les cardiomyocytes dérivés de l’iPSC des patients (iPSC-MC) peuvent servir de ressources indéfinies pour modéliser les maladies cardiovasculaires génétiquement héréditaires (MCV) et tester la sécurité cardiaque pour les nouveaux médicaments3
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Les protocoles expérimentaux et le consentement éclairé pour les sujets humains ont été approuvés par le Comité d’examen institutionnel (CISR) du Nationwide Children’s Hospital.
1. Préparation des milieux de culture cellulaire, des solutions et des réactifs
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Reprogrammation iPSC humaine à partir de PBMC
Après une pré-culture avec des milieux sanguins complets pendant 7 jours, les PBMC deviennent gros avec des noyaux visibles et du cytoplasme (Figure 1B), indiquant qu’ils sont prêts pour la transfection du virus. Après la transfection avec les facteurs de reprogrammation du virus Sendai, les PBMC subiront un processus de reprogrammation épigénétique pendant une autre semaine. En règle générale,.......
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Lors de la reprogrammation iPSC, il est essentiel de cultiver des PBMC pendant 1 semaine jusqu’à ce qu’ils soient élargis avec des noyaux clairs et du cytoplasme. Étant donné que les PBMC ne prolifèrent pas, un nombre de cellules approprié pour la transduction virale est important pour une reprogrammation réussie des CSPi. Le nombre de cellules des PBMC, la multiplicité de l’infection (MOI) et le titre du virus doivent être pris en compte et ajustés pour atteindre les résultats optimaux de transduction. Pour la différenc.......
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Les auteurs ne déclarent aucun intérêt financier concurrent.
Cette étude a été soutenue par le prix de développement de carrière 18CDA34110293 (M-T.Z.) de l’American Heart Association (AHA), les prix Additional Ventures AVIF et SVRF (M-T.Z.), les subventions 1R01HL124245, 1R01HL132520 et R01HL096962 (I.D.). Le Dr Ming-Tao Zhao a également été soutenu par des fonds de démarrage de l’Institut de recherche Abigail Wexner du Nationwide Children’s Hospital.
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| ABI 7300 Système de PCR rapide en temps réel | Thermo Fisher Scientific | ||
| Axon Axopatch 200B Amplificateur de microélectrodes | Dispositifs moléculaires Amplificateur | de microélectrodes | |
| B27 supplément | Thermo Fisher Scientific | 17504044 | |
| B27 moins insuline | Thermo Fisher Scientific | A1895601 | |
| BD Cytofix/Cytoperm Kit de fixation/perméabilisation | BD Biosciences | 554714 | Solution de fixation/perméabilisation, Tampon de permisation/lavage |
| BD Vacutainer Tube CPT | BD Biosciences | 362753 | Tube de séparation des cellules sanguines |
| CHIR99021 | Selleck Chemicals | S2924 | |
| CytoTune-iPS 2.0 Sendai Kit de reprogrammation | Thermo Fisher Scientific | A16517 | Sendai |
| Digidata 1200B | Axon Instruments | Carte d’acquisition | |
| Direct-zol RNA Miniprep | kit Zymo Research | R2050 | Kit d’extraction d’ARN |
| DMEM/F12 Thermo | Fisher Scientific | 11330057 | |
| Essential 8 medium | Thermo Fisher Scientific | A1517001 | milieux E8 pour la culture iPSC |
| Supplément GlutaMAX | Thermo Fisher Scientific | 35050061 | Alternative à la L-glutamine |
| Facteur de croissance réduit Matrigel | Corning | 356231 | Matrice de membrane basale |
| iScript cDNA Snythesis Kit | Bio-Rad | 1708891 | synthèse de l’ADNc |
| IWR-1-endo | Selleck Chemicals | S7086 | |
| KnockOut Serum Replacement (KSR) | Thermo Fisher Scientific | 10828028 | |
| pCLAMP 7.0 | Molecular Devices Logiciel | d’acquisition et d’analyse de données d’électrophysiologie | |
| EPO humain recombinant | Thermo Fisher Scientific | PHC9631 | |
| Homme recombinant FLT3 | Thermo Fisher Scientific | PHC9414 | |
| Humain recombinant IL3 | Peprotech | 200-03 | |
| Humain recombinant IL6 | Thermo Fisher Scientific | ||
| Homme recombinant SCF | Peprotech | 300-07 | |
| RPMI 1640 | moyen Thermo Fisher Scientific | 11875093 | |
| RPMI 1640 moyen, sans glucose | Thermo Fisher Scientific | 11879020 | |
| SlowFade Gold Antifade Mountant | Thermo Fisher Scientific | S36936 | Média de montage |
| StemPro-34 SFM | Thermo Milieux | de culture Fisher Scientific 10639011 PBMC | |
| TaqMan Fast Advanced Master Mix | Thermo Fisher Scientific | 4444964 | qPCR master mix |
| TrypLE Select Enzyme 10x, sans rouge de phénol | Thermo Fisher Scientific | A1217703 | CM solution de dissociation |
| UltraPure 0,5 M EDTA | Thermo Fisher Scientific | 15575020 | solution de dissociation iPSC |
| Y-27632 2HCl | Produits chimiques Selleck | S1049 |
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