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Article de méthode

Génération et expansion de cardiomyocytes humains à partir de cellules mononucléaires du sang périphérique du patient

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DOI :

10.3791/62206

12 février 2021

Dans cet article

Résumé

Ici, nous présentons un protocole pour générer et développer de manière robuste des cardiomyocytes humains à partir de cellules mononucléaires du sang périphérique du patient.

Résumé

La génération de cardiomyocytes spécifiques au patient à partir d’une seule prise de sang a suscité un énorme intérêt pour la médecine de précision sur les maladies cardiovasculaires. La différenciation cardiaque à partir des cellules souches pluripotentes induites par l’homme (CSPi) est modulée par des voies de signalisation définies qui sont essentielles au développement cardiaque embryonnaire. De nombreuses méthodes de différenciation cardiaque sur des plateformes 2D et 3D ont été développées avec diverses efficacités et rendements cardiomyocytaires. Cela a intrigué les chercheurs en dehors du terrain, car la variété de ces méthodes peut être difficile à suivre. Nous présentons ici un protocole complet qui élabore la génération et l’expansion robustes de cardiomyocytes spécifiques au patient à partir de cellules mononucléaires du sang périphérique (PBMC). Nous décrivons d’abord un protocole de reprogrammation iPSC à haute efficacité à partir de l’échantillon de sang d’un patient en utilisant des vecteurs du virus Sendai non intégrés. Nous détaillons ensuite une méthode de différenciation monocouche médiée par de petites molécules qui peut produire de manière robuste des cardiomyocytes battants à partir de la plupart des lignées iPSC humaines. En outre, un protocole évolutif d’expansion des cardiomyocytes est introduit à l’aide d’une petite molécule (CHIR99021) qui pourrait rapidement étendre les cardiomyocytes dérivés du patient pour des applications de qualité industrielle et clinique. À la fin, des protocoles détaillés pour l’identification moléculaire et la caractérisation électrophysiologique de ces iPSC-CM sont décrits. Nous nous attendons à ce que ce protocole soit pragmatique pour les débutants ayant des connaissances limitées sur le développement cardiovasculaire et la biologie des cellules souches.

Introduction

La découverte de cellules souches pluripotentes induites par l’homme a révolutionné la médecine cardiovasculaire moderne1,2. Les CSPi humaines sont capables de s’auto-renouveler et de générer tous les types de cellules dans le cœur, y compris les cardiomyocytes, les cellules endothéliales, les cellules musculaires lisses et les fibroblastes cardiaques. Les cardiomyocytes dérivés de l’iPSC des patients (iPSC-MC) peuvent servir de ressources indéfinies pour modéliser les maladies cardiovasculaires génétiquement héréditaires (MCV) et tester la sécurité cardiaque pour les nouveaux médicaments3

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Protocole

Les protocoles expérimentaux et le consentement éclairé pour les sujets humains ont été approuvés par le Comité d’examen institutionnel (CISR) du Nationwide Children’s Hospital.

1. Préparation des milieux de culture cellulaire, des solutions et des réactifs

  1. Préparer les supports PBMC
    1. Mélanger 20 mL de milieux de culture PBMC basaux (1x) et 0,52 mL de supplément. Ajouter 20 μL de SCF et de FLT3 chacun (concentration en stock : 100 μg/mL), 4 μL d’IL3, d’IL6 et d’EPO chacun (concentration en stock : 100 μg/mL) et 200 μL d’alternative À la L-glutamine (100x). Mélangez-les bien. Filtrer dans une hotte stérile à l’aide d’une uni....

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Résultats

Reprogrammation iPSC humaine à partir de PBMC
Après une pré-culture avec des milieux sanguins complets pendant 7 jours, les PBMC deviennent gros avec des noyaux visibles et du cytoplasme (Figure 1B), indiquant qu’ils sont prêts pour la transfection du virus. Après la transfection avec les facteurs de reprogrammation du virus Sendai, les PBMC subiront un processus de reprogrammation épigénétique pendant une autre semaine. En règle générale,.......

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Discussion

Lors de la reprogrammation iPSC, il est essentiel de cultiver des PBMC pendant 1 semaine jusqu’à ce qu’ils soient élargis avec des noyaux clairs et du cytoplasme. Étant donné que les PBMC ne prolifèrent pas, un nombre de cellules approprié pour la transduction virale est important pour une reprogrammation réussie des CSPi. Le nombre de cellules des PBMC, la multiplicité de l’infection (MOI) et le titre du virus doivent être pris en compte et ajustés pour atteindre les résultats optimaux de transduction. Pour la différenc.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun intérêt financier concurrent.

Remerciements

Cette étude a été soutenue par le prix de développement de carrière 18CDA34110293 (M-T.Z.) de l’American Heart Association (AHA), les prix Additional Ventures AVIF et SVRF (M-T.Z.), les subventions 1R01HL124245, 1R01HL132520 et R01HL096962 (I.D.). Le Dr Ming-Tao Zhao a également été soutenu par des fonds de démarrage de l’Institut de recherche Abigail Wexner du Nationwide Children’s Hospital.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
ABI 7300 Système de PCR rapide en temps réelThermo Fisher Scientific
Axon Axopatch 200B Amplificateur de microélectrodesDispositifs moléculaires Amplificateurde microélectrodes
B27 supplémentThermo Fisher Scientific17504044
B27 moins insulineThermo Fisher ScientificA1895601
BD Cytofix/Cytoperm Kit de fixation/perméabilisationBD Biosciences554714Solution de fixation/perméabilisation, Tampon de permisation/lavage
BD Vacutainer Tube CPTBD Biosciences362753Tube de séparation des cellules sanguines
CHIR99021Selleck ChemicalsS2924
CytoTune-iPS 2.0 Sendai Kit de reprogrammationThermo Fisher ScientificA16517Sendai
Digidata 1200BAxon InstrumentsCarte d’acquisition
Direct-zol RNA Miniprepkit Zymo ResearchR2050Kit d’extraction d’ARN
DMEM/F12 ThermoFisher Scientific11330057
Essential 8 mediumThermo Fisher ScientificA1517001milieux E8 pour la culture iPSC
Supplément GlutaMAXThermo Fisher Scientific35050061Alternative à la L-glutamine
Facteur de croissance réduit MatrigelCorning356231Matrice de membrane basale
iScript cDNA Snythesis KitBio-Rad1708891synthèse de l’ADNc
IWR-1-endoSelleck ChemicalsS7086
KnockOut Serum Replacement (KSR)Thermo Fisher Scientific10828028
pCLAMP 7.0Molecular Devices Logicield’acquisition et d’analyse de données d’électrophysiologie
EPO humain recombinantThermo Fisher ScientificPHC9631
Homme recombinant FLT3Thermo Fisher ScientificPHC9414
Humain recombinant IL3Peprotech200-03
Humain recombinant IL6Thermo Fisher Scientific
Homme recombinant SCFPeprotech300-07
RPMI 1640moyen Thermo Fisher Scientific11875093
RPMI 1640 moyen, sans glucoseThermo Fisher Scientific11879020
SlowFade Gold Antifade MountantThermo Fisher ScientificS36936Média de montage
StemPro-34 SFMThermo Milieuxde culture Fisher Scientific 10639011 PBMC
TaqMan Fast Advanced Master MixThermo Fisher Scientific4444964qPCR master mix
TrypLE Select Enzyme 10x, sans rouge de phénolThermo Fisher ScientificA1217703CM solution de dissociation
UltraPure 0,5 M EDTAThermo Fisher Scientific15575020solution de dissociation iPSC
Y-27632 2HClProduits chimiques SelleckS1049
virusPHC0065

Références

  1. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131 (5), 861-872 (2007).
  2. Yu, J., et al. Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells. Science. 318

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Réimpressions et autorisations

Mots-clés

G n ration de cardiomyocytesreprogrammation d iPSCreprogrammation par virus Sendaidiff renciation cardiaquediff renciation en monocoucheexpansion des cardiomyocytespatch clampexpression de la troponine Tactivation de Wnt