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Article de méthode

Évaluation du risque agrochimique pour les reines d’abeilles mellifères accouplées

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DOI :

10.3791/62316

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3 mars 2021

 ,  ,  , 
1Invasive Species and Pollinator Health Research Unit, USDA-ARS, 2Carl R. Woese Institute for Genomic Biology, University of Illinois at Urbana-Champaign, 3Neuroscience Program, University of Illinois at Urbana-Champaign, 4Department of Entomology, University of Illinois at Urbana-Champaign

Dans cet article

Résumé

Ce protocole a été développé pour améliorer la compréhension de la façon dont les produits agrochimiques affectent la reproduction desabeilles mellifères (Apis mellifera)en établissant des méthodes pour exposer les reines des abeilles mellifères et leurs soignants travailleurs aux produits agrochimiques dans un laboratoire contrôlé et en surveillant attentivement leurs réponses pertinentes.

Résumé

Les stratégies actuelles d’évaluation des risques pour les abeilles mellifères reposent fortement sur des tests de laboratoire effectués sur des abeilles ouvrières adultes ou immatures, mais ces méthodes peuvent ne pas saisir avec précision les effets de l’exposition agrochimique sur les reines d’abeilles mellifères. En tant que seule productrice d’œufs fécondés à l’intérieur d’une colonie d’abeilles mellifères, la reine est sans doute le membre le plus important d’une unité de colonie fonctionnelle. Par conséquent, comprendre comment les produits agrochimiques affectent la santé et la productivité des reines devrait être considéré comme un aspect essentiel de l’évaluation des risques liés aux pesticides. Ici, une méthode adaptée est présentée pour exposer les reines d’abeilles mellifères et les préposées ouvrières à des facteurs de stress agrochimiques administrés par le biais d’un régime alimentaire de travailleurs, suivie d’un suivi de la production d’œufs en laboratoire et d’une évaluation de l’éclosion du premier stade à l’aide d’une cage spécialisée, appelée cage de surveillance des reines. Pour illustrer l’utilisation prévue de la méthode, les résultats d’une expérience dans laquelle les préposées ouvrières ont été nourries avec un régime contenant des doses sublétales d’imidaclopride et les effets sur les reines ont été surveillés sont décrits.

Introduction

En raison de la demande mondiale accrue de produits agricoles, les pratiques agricoles modernes nécessitent souvent l’utilisation de produits agrochimiques pour lutter contre de nombreux ravageurs connus pour réduire ou nuire aux rendements des cultures1. Simultanément, les producteurs de nombreuses cultures de fruits, de légumes et de noix comptent sur les services de pollinisation fournis par les colonies commerciales d’abeilles mellifères pour assurer des rendements abondants2. Ces pratiques peuvent entraîner l’exposition des pollinisateurs, y compris les abeilles mellifères (Apis mellifera), à des niveaux nocifs de résidus de pesticides3. Dans le même temps, la présence généralisée d’infestations parasites d’acariens Varroa destructor dans les colonies d’abeilles mellifères oblige souvent les apiculteurs à traiter leurs ruches avec des acaricides, ce qui peut également avoir des effets négatifs sur la santé et la longévité de la colonie4,5,6. Pour réduire et atténuer les effets nocifs des produits agrochimiques, il est nécessaire d’évaluer pleinement leur sécurité pour les abeilles mellifères avant leur mise en œuvre afin que des recommandations pour leur utilisation puissent être faites pour protéger les insectes utiles.

À l’heure actuelle, l’Agence de protection de l’environnement (EPA) s’appuie sur une stratégie d’évaluation des risques à plusieurs niveaux pour l’exposition des abeilles mellifères aux pesticides, qui comprend des tests de laboratoire sur des abeilles adultes et parfois des larves d’abeillesmellifères 7. Si les essais en laboratoire de niveau inférieur ne parviennent pas à atténuer les préoccupations de toxicité, des essais sur le terrain et sur semi-terrain de niveau supérieur peuvent être recommandés. Bien que ces tests de laboratoire fournissent des informations précieuses sur les effets potentiels des produits agrochimiques sur la longévité des travailleurs, ils ne sont pas nécessairement prédictifs de leurs effets sur les reines, qui diffèrent considérablement des ouvrières biologiquement8 et comportementalement9. En outre, il existe de nombreux effets potentiels des produits agrochimiques sur les insectes au-delà de la mortalité, ce qui peut avoir des conséquences considérables pour les insectes sociaux qui dépendent de comportements coordonnés pour fonctionner comme une unité de colonie10,11.

Bien que la mortalité soit l’effet le plus couramment considéré des pesticides agrochimiques12,ces produits peuvent avoir un large éventail d’effets sur les arthropodes cibles et noncibles,y compris un comportement altéré13,14, 15,16, une répulsion ou une attractivité17,18,19, des changements dans les habitudes alimentaires20,21,22 , et a augmenté ou diminué la fécondité20,21,22,23,24,25. Pour les insectes sociaux, ces effets peuvent perturber systématiquement les interactions et les fonctions des colonies11. Parmi ces fonctions, la reproduction, qui dépend fortement d’une seule reine pondeuse soutenue par le reste de l’unité9de la colonie, peut être particulièrement vulnérable aux perturbations dues à l’exposition aux pesticides.

Des études réalisées sur des reines immatures ont démontré que l’exposition développementale aux acaricides peut affecter le comportement, la physiologie et la survie des reines adultes26,27. De même, des études utilisant des colonies de taille complète ou réduite ont démontré que les produits agrochimiques peuvent affecter les reines d’abeilles mellifères adultes en diminuant le succès d’accouplement28, diminuant la ponte29, et diminuant la viabilité des œufs produits25,30,31. Ces phénomènes étaient auparavant difficiles à observer sans l’utilisation de colonies entières, en grande partie en raison d’un manque de méthodes de laboratoire disponibles. Cependant, une méthode d’étude de la ponte des reines dans des conditions de laboratoire étroitement contrôlées à l’aide de cages de surveillance des reines (QMC)32 a récemment été adaptée pour examiner les effets des produits agrochimiques sur la fécondité des reines33. Ici, ces techniques sont décrites en détail ainsi que des méthodes supplémentaires pour mesurer et suivre la consommation alimentaire des travailleurs dans les QGC.

Ces méthodes sont plus avantageuses que les expériences nécessitant des colonies de taille normale car elles permettent l’administration de doses précises de produits agrochimiques à un nombre considérablement réduit de travailleurs par rapport aux dizaines de milliers généralement présents à l’intérieur d’une colonie34, qui approvisionnent ensuite la reine. Cette technique d’exposition reflète l’exposition de seconde main que les reines subiraient dans des scénarios réels car, au sein d’une colonie, les reines ne se nourrissent pas elles-mêmes et comptent sur les ouvrières pour leur fournir un régime alimentaire9. De même, les reines ne quittent généralement pas la ruche sauf pendant la reproduction de la colonie (essaimage) pour les vols d’accouplement35. Les reines d’abeilles accouplées peuvent être achetées auprès d’éleveurs de reines commerciaux et expédiées du jour au lendemain. En règle générale, les éleveurs de reines vendent des reines directement après avoir confirmé qu’elles ont commencé à pondre des œufs, ce qui est considéré comme une indication d’un accouplement réussi. Si des informations plus précises sur l’âge ou la parenté de la reine sont nécessaires, les chercheurs peuvent consulter l’éleveur de la reine avant de passer une commande.

Les QMC permettent une observation et une quantification précises des taux de ponte des reines d’abeilles mellifères et d’éclosion des œufs32,33, ce qui donne des données précieuses sur les effets de l’exposition agrochimique sur la fécondité des reines. Les résultats représentatifs présentés ici décrivent une expérience quantifiant la ponte, la consommation alimentaire et la viabilité embryonnaire dans les MCM sous exposition chronique à des concentrations pertinentes sur le terrain du neurotoxicant systémique néonicotinoïde imidaclopride36. Une fois appliqué, l’imidaclopride se transloque dans les tissus végétaux37, et des résidus ont été détectés le pollen et le nectar de nombreuses plantes pollinisées par les abeilles38,39,40. L’exposition à l’imidaclopride peut avoir un large éventail d’effets néfastes sur les abeilles mellifères, notamment une altération des performances de recherche de nourriture16, une altération de la fonction immunitaire41et une diminution des taux d’expansion et de survie descolonies 42,43. Ici, l’imidaclopride a été sélectionné pour être utilisé comme substance d’essai parce que des expériences sur le terrain ont montré qu’il peut affecter la ponte de la reine des abeilles mellifères29

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Protocole

1. Assemblage QMC

  1. Assemblez les QGC à partir de pièces(Figure 1A)avec une seule plaque de ponte (PEL) insérée comme illustré à la Figure 1B. N’ajoutez pas de tubes d’alimentation avant que les travailleurs n’aient été ajoutés à la cage. Recouvrez temporairement les 4 trous d’alimentation avec du ruban adhésif de qualité laboratoire.
  2. Insérez l’excluseur de la reine et la porte de la chambre d’alimentation au-dessus de la chambre d’alimentation pour empêcher la reine d’entrer dans la chambre d’alimentation et de contacter le régime alimentaire traité. Voir Fine et al.32 pour plus de détails sur l’assemblage.
  3. Recueillir les cadres en rayon de cire contenant la couvée ouvrière coiffée des colonies d’abeilles mellifères 24 h avant l’éclosion adulte et les placer dans un incubateur (34,5 °C) à l’intérieur d’une boîte à couvain. 24 heures plus tard, brossez les abeilles écloses des cadres et dans un récipient ouvert qui a été tapissé d’une peinture barrière contre les insectes (p. ex., Fluon) pour empêcher les abeilles de ramper.
  4. Ajouter au moins 50 abeilles en poids (5 g ≈ 50 abeilles44,45) à la chambre de ponte de chaque QMC. Pour s’assurer qu’un pool génétique diversifié de travailleurs est représenté dans l’expérience, obtenez un nombre approximativement égal d’abeilles ouvrières d’au moins trois colonies et mélangez-les avant de les ajouter aux MCMC.
    REMARQUE: Les abeilles ouvrières nouvellement écloses de moins de 1 jour ne peuvent pas voler ou piquer en raison de leurs muscles de vol sous-développés et de leur cuticule non durcie. S’ils sont ajoutés à cet âge, il n’est pas nécessaire de les anesthésier avant la manipulation. Ils peuvent être pesés en ramassant doucement les abeilles du récipient à l’aide d’une petite tasse à mesurer de 1/4 tasse de volume et en les plaçant dans un deuxième récipient (tapissé de peinture barrière contre les insectes, par exemple Fluon) qui a été goudronné sur une balance. La superficie des cadres couverts par la couvée coiffée devrait être à peu près égale pour s’assurer que les colonies sources sont également représentées dans les populations de travailleurs du CQM. L’homogénéisation des abeilles ouvrières peut être réalisée en brossant les abeilles nouvellement écloses à partir de cadres prélevés dans toutes les colonies dans le même récipient et en leur permettant de se mélanger pendant 5 minutes avant de les ajouter aux QGC.
  5. Ajouter les mangeoires contenant une solution de saccharose, de l’eau et un supplément de pollen (voir rubrique 2).
  6. Exposez les reines accouplées individuelles au gaz CO2 pour stimuler la ponte46 et faciliter le transfert dans QMC.
    1. Utilisez des reines achetées auprès d’un éleveur commercial dans les 48 heures suivant leur réception. Pendant que la reine est encore à l’intérieur de la cage d’expédition, placez-la dans un sac en plastique transparent. Placez une extrémité d’un tube en plastique relié à un cannister de gaz CO2 à l’intérieur du sac et ouvrez doucement la vanne de cannister pour permettre au gaz CO2 de s’écouler.
    2. Lorsque le sac a été gonflé avec du gaz, fermez simultanément la vanne du cannister et maintenez le sac fermé pour piéger le gaz à l’intérieur. Gardez le sac fermé pendant 30 s ou jusqu’à ce que la reine ait cessé de bouger. Retirez la reine et ouvrez la cage d’expédition une fois qu’elle est observée comme inconsciente.
  7. Ouvrez partiellement la porte de la chambre de ponte, placez doucement la reine inconsciente à l’intérieur et fermez le couvercle, en prenant soin de ne pas écraser la reine ou les ouvrières à l’intérieur. Ajouter la deuxième plaque de ponte à chaque QMC comme illustré à la figure 1C. Placez un morceau de ruban adhésif de laboratoire sur le dessus des deux PEL pour les empêcher de se séparer du cadre QMC et empêcher les travailleurs de sortir de la cage.
  8. Placez les cages dans un incubateur sombre avec des conditions environnementales stables de 34 ± 0,5 ° C et 60% ± 10% d’humidité relative, comme les conditions à l’intérieur d’une colonie normale.

figure-protocol-1
Graphique 1. R : QMC démonté. B: QMC partiellement assemblé avec 1 ELP inséré. C: QMC entièrement assemblé avec 2 PEL. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

2. Préparer et administrer des régimes alimentaires contenant des produits agrochimiques

  1. Pour préparer 1000 g de solution de saccharose à 50% (g/g), placez une barre d’agitation dans le fond d’un flacon de réactif en verre propre de 1 L. Ajouter 500 g de saccharose et 500 mL d’eau désionisée. Dévissez le couvercle de la bouteille et utilisez une plaque d’agitation chauffée réglée à feu doux pour mélanger la solution jusqu’à ce que tout le saccharose soit dissous. Laisser refroidir la solution à température ambiante avant d’ajouter les solutions mères agrochimiques.
  2. Préparer les solutions mères de produits agrochimiques dans un solvant approprié, tel que l’acétone, à une concentration qui peut être ajoutée à l’alimentation pour atteindre la concentration finale souhaitée de l’agrochimie d’intérêt.
    NOTE: Lors de l’utilisation de l’acétone comme solvant pour véhicule, les lignes directrices de l’Organisation de coopération et de développement économiques (OCDE) stipulent que la concentration finale d’acétone dans l’alimentation doit être de ≤ 5% pour les essais de toxicité orale chronique sur les abeilles mellifères adultes47. Cependant, certains solvants tels que la n-méthyl-2-pyrrolidone5, 31 et le diméthylsulfoxyde25 peuvent exercer des effets toxiques en dessous de cette concentration, il est donc recommandé de maintenir les concentrations de solvants aussi faibles que possible dans le régime de traitement. Selon le volume et le type de solvant utilisé, il peut être nécessaire d’inclure à la fois un groupe témoin des solvants et un groupe témoin négatif pour s’assurer que les effets potentiels dus à la toxicité des solvants sont détectés. Lors de l’utilisation de produits formulés, la quantité de produit utilisée doit être ajustée en fonction de la concentration présente dans la formulation. Selon la stabilité de l’agrochimique d’intérêt dans le solvant, les solutions mères peuvent être conservées jusqu’à 2 semaines à -20 °C.
  3. Sélectionner les doses sublétales en fonction des résultats de l’essai n° 245 de l’OCDE : Abeille mellifère (Apis mellifera L.),Essai de toxicité orale chronique (alimentation de 10 jours)47, et identifier la littérature pertinente en interrogeant la base de connaissances Ecotox48.
  4. Administrer les traitements agrochimiques dans une solution de saccharose, un supplément de pollen commercial (s’il est disponible sous forme de poudre), ou les deux. Préparez le régime expérimental pour une utilisation le jour même en ajoutant une quantité appropriée de solution mère à une solution de saccharose réfrigérée / à température ambiante à 50% (p / p). Bien mélanger en vortexant ou avec une barre d’agitation réglée à vitesse moyenne. Pour les suppléments de pollen, ajoutez la solution de saccharose lacée agrochimique au supplément en poudre au lieu du sirop selon les protocoles du fabricant, en veillant à ajuster le volume de la solution mère utilisée en fonction du poids final du régime pollinique. Voir le tableau 1 pour des exemples de calculs.
  5. Préparer les tubes d’alimentation à partir de tubes de microcentrifugation de 2 mL.
    1. Pour les mangeoires liquides, chauffez la pointe d’une aiguille de calibre 20 sur une plaque chauffante / cuisinière et perforez le fond du tube deux fois. Fermez le couvercle du tube et pipettez environ 1,5 mL de solution de saccharose ou d’eau à travers l’un des trous de perforation. Posez le tube avec le côté perforé vers le haut jusqu’à ce qu’il soit ajouté au QMC.
    2. Pour les mangeoires de suppléments de pollen, utilisez une lame de rasoir pour trancher le fond du tube. Fermez le couvercle et poussez une boule de 1 à 2 g de supplément de pollen dans le tube jusqu’à ce qu’il touche le couvercle.
  6. Enregistrez les poids d’alimentation avant de les placer dans les QGC. Ne conservez pas le régime alimentaire inutilisé à 4 °C pendant plus de 48 heures.
Concentration souhaitéeConcentration souhaitée dans le véhicule de solvantVolume/masse final souhaité de solution de saccharoseVoume de solution de stockImidaclopride en solution mèreRecette de solution de stock suggérée
Solution de saccharose10 ppb (p/p)0,05 % (v/v)81,45 mL/100 g*40,7 μL0,001 mg/40,7 μL0,02 mg/814 μL
Supplément de pollen10 ppb (p/p)10 g**4,07 μL0,0001 mg/4,07 μL0,02 mg/814 μL
Solution de saccharose50 ppb (p/f)0,05 % (v/v)78,5 mL/100 g*40,7 μL0,005 mg/40,7 μL0,1 mg/814 μL
Supplément de pollen50 ppb (p/f)10 g**4,07 μL0,0005 mg/4,07 μL0,1 mg/814 μL

Tableau 1 : Exemples de recettes pour une solution de saccharose traitée, un supplément de pollen et une solution mère. *Volume basé sur la densité d’une solution de saccharose à 50 % (p/p) (1,228 g/mL). **La densité du supplément de pollen variera en fonction du produit utilisé, mais si ce volume de solvant est utilisé, la concentration finale de solvant dans le supplément de pollen sera dans la plage souhaitée de ≤ 5% en volume.

3. Surveillance - Taux de production d’œufs

  1. Quantifiez la ponte 1 à 2 fois par jour le matin et/ou le soir. Commencez par retirer les MGC de l’incubateur pour vérifier la présence d’œufs.
    REMARQUE: Dans une expérience réussie, la production d’œufs commencera dans la plupart des GRGC de contrôle dans les 3 jours suivant l’assemblage initial de la cage. Ne sortez de l’incubateur qu’autant de GRQ de l’incubateur à la fois qui peuvent être vérifiés et alimentés dans les 10 minutes. Des périodes plus longues à l’extérieur de l’incubateur peuvent perturber la production d’œufs.
  2. Examinez le dos des PEL clairs pour les œufs. Si des œufs sont présents, retirez le panneau de porte devant la plaque d’intérêt. Retirez le ruban adhésif de l’autre côté des PEL et faites glisser soigneusement le panneau de porte entre le PEL et les abeilles à l’intérieur du QMC, en prenant soin de ne pas écraser les abeilles qui pourraient nettoyer les cellules des PEL.
  3. Une fois le panneau de porte en place, retirez le PEL, comptez et enregistrez le nombre d’œufs à l’intérieur des cellules du PEL. Retirez les œufs en tapotant le bord du PEL, côté cellule ouverte vers le bas, sur une surface dure (comme la lèvre d’un récipient à déchets). Une fois que les œufs tombent, remplacez le PEL vide dans le QMC. Retirez et remplacez délicatement le panneau de porte derrière le PEL à l’extérieur du QMC. Répétez l’opération si nécessaire avec le deuxième PEL et remplacez la bande sur le QMC lorsque vous avez terminé.
    NOTE: La production d’œufs diminue généralement et la mortalité augmente dans les MCMC après 2 semaines32,33, il est donc recommandé de conclure les expériences après 14 jours.

4. Surveillance - Consommation alimentaire

  1. Remplacez tous les aliments restants dans les mangeoires QMC par un régime fraîchement préparé tous les deux jours. Préparez de nouveaux tubes d’alimentation (y compris de l’eau) et pesez-les avant de retirer les QGC de l’incubateur pour surveillance. Remplacez tous les vieux tubes par de nouveaux et pesez les vieux tubes avant de vous débarrasser du régime non consommé. Comparez le poids final du tube d’alimentation et du régime non consommé au poids du même tube d’alimentation avant de le placer dans le QMC pour estimer la consommation alimentaire.
  2. Entre les jours où il est prévu de remplacer les mangeoires, vérifiez la consommation alimentaire une fois par jour (en même temps que lesQMC sont surveillés pour la production d’œufs) pour vous assurer que les mangeoires ne sont jamais vides. Si un tube d’alimentation est vide ou presque vide, retirez-le, remplissez-le, enregistrez le poids du tube avant et après et ajoutez la différence au total de consommation de régime sur 2 jours pour le QMC.

5. Surveillance - Viabilité des embryons

  1. À un moment choisi au cours d’une expérience QMC, retirez les PEL contenant des œufs fraîchement pondus du QMC conformément à l’étape 3,mais ne délogez pas les œufs du PEL.
  2. Couvrir le PEL avec un couvercle universel en microplaque et le placer à l’intérieur d’un dessiccateur avec une solution saturéedeK2 SO4 (150 g K2SO4 dans 1 L d’eau, conservé dans un plat peu profond).
    REMARQUE: Un peu de sel doit être visible au fond du plat après que le mélange soit arrivé à température dans l’incubateur.
  3. Gardez le dessiccateur dans un incubateur réglé à 34,5 °C, ce qui entraîne une humidité relative de 95% à l’intérieur du dessiccateur, similaire aux conditions utilisées par Collins49.
    REMARQUE: Presque tous les œufs éclosent dans les 72 ± 6 heures suivant leur ponte49, de sorte que les taux d’éclosion peuvent être évalués dès 78 heures après le retrait des PEL du CQ. Une larve en forme de « C » au fond de la cellule est révélatrice d’un éclosion réussi. Une certaine variation dans ce calendrier est possible si, par exemple, les œufs sont des drones et non des travailleurs50.

6. Échantillonnage des travailleurs

  1. Si les QGC ont été remplis de travailleurs en excès, échantillonnez les abeilles ouvrières à un moment choisi au cours de l’expérience pour évaluer les changements induits par le traitement dans leur physiologie. Effectuer les collectes en conjonction avec les activités quotidiennes d’alimentation et de comptage des œufs afin de minimiser le temps pendant lequel les MCGC sont à l’extérieur de l’incubateur.
  2. Avant l’échantillonnage, placez un panneau de porte entre un PEL et l’intérieur du QMC, puis retirez le PEL. Soulevez délicatement le panneau de porte à environ 0,5 cm de la base de la cage et retirez une abeille ouvrière de l’intérieur du QMC à l’aide d’une pince à épiler au poids plume. Pour empêcher les abeilles de s’échapper, couvrez des portions de l’ouverture de 0,5 cm avec un doigt ganté ou un morceau de coton si nécessaire.
  3. Conservez l’abeille prélevée pour une analyse de suivi et répétez ce processus jusqu’à ce que le nombre souhaité d’échantillons ait été prélevé. Pour l’analyse de l’expression génique, il est fortement recommandé de congeler les abeilles dans de l’azote liquide et de les stocker immédiatement à -80 °C51.

7. Mortalité des travailleurs

  1. Évaluer la mortalité des travailleurs au cours de l’expérience en comptant le nombre d’abeilles mortes au fond de la chambre d’alimentation et de la chambre de ponte. Effectuez cette évaluation en conjonction avec la quantification quotidienne de la ponte.
  2. À l’aide d’une pince, retirez soigneusement les abeilles mortes à travers les trous d’alimentation, en recouvrant le trou d’un doigt ganté ou d’un morceau de coton pendant que les pinces ne sont pas insérées.
  3. Retirez les abeilles mortes de la chambre de ponte en soulevant soigneusement le panneau de porte à environ 0,5 cm de la base de la cage et en insérant des pinces. Pour empêcher les abeilles de s’échapper, couvrez des portions de l’ouverture de 0,5 cm avec un doigt ganté ou un morceau de coton si nécessaire.
  4. Évaluer la mortalité des travailleurs à la fin de l’expérience en retirant et en comptant toutes les abeilles mortes des GRQ à l’aide des méthodes décrites précédemment avant d’euthanasier les abeilles restantes.
    REMARQUE: En l’absence d’abeilles ouvrières, les reines ne produiront pas d’œufs et mourront de faim dans les 24 heures. Par conséquent, si tous les travailleurs d’un QMC sont morts, le QMC doit être retiré de l’expérience. De même, si une reine meurt pendant l’expérience, le QMC doit être supprimé et les données doivent être censurées de manière appropriée.

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Résultats

La production d’œufs a été surveillée dans des GRQ assemblés et entretenus comme décrit ci-dessus avec des observations une fois par jour de la production d’œufs et 15 cages par groupe de traitement. Des reines nouvellement accouplées de souche principalement carniolienne ont été achetées et expédiées pendant la nuit auprès d’un éleveur de reines, et les ouvrières d’abeilles mellifères ont été obtenues à partir de 3 colonies maintenues selon les méthodes commerciales standard au Bee Research Facility de l’Université de l...

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Discussion

La fécondité des insectes solitaires femelles ainsi que des reines dans les colonies d’insectes eusociaux peut être influencée par des facteurs de stress abiotiques tels que les produits agrochimiques25,28,29,30,33. Chez les abeilles mellifères, les effets des produits agrochimiques sur les reines peuvent être indirects, car ils peuvent se produire via des cha...

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à déclarer.

Remerciements

Merci à la Dre Amy Cash-Ahmed, à Nathanael J. Beach et à Alison L. Sankey pour leur aide dans la réalisation de ce travail. La mention de noms commerciaux ou de produits commerciaux dans cette publication a uniquement pour but de fournir des informations spécifiques et n’implique pas de recommandation ou d’approbation par le département de l’Agriculture des États-Unis. L’USDA est un fournisseur et un employeur d’égalité des chances. Cette recherche a été soutenue par une subvention de la Defense Advanced Research Projects Agency # HR0011-16-2-0019 à Gene E. Robinson et Huimin Zhao, le projet USDA 2030-21000-001-00-D, et l’expérience de recherche sur la plasticité phénotypique pour les étudiants des collèges communautaires de l’Université de l’Illinois à Urbana Champaign.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
FluonBioQuip, Rancho Dominguez, CA2871A
Reines d’abeilles mellifèresOlivarez Honey Bees, Orland, CA
ImidaclopridSigma-Aldritch, St. Louis, MO37894
MegaBee PowderMegaBee, San Dieago, CA
Tubes de microcentrifugation 2 mLThermoFisher Scientific, Waltham, MA02-682-004
Aiguilles calibre 20W. W. Grainger, Lake Forest, IL5FVK4
Sulfate de potassiumSigma-Aldritch, St. Louis, MOP0772
Queen Monitoring CagesUniversity of Illinois Urbana-ChampaignNuméro de demande de brevet : 20190350175
SucroseSigma-Aldritch, St. Louis, MOS8501
Couvercles universelspour microplaquesThermoFisher Scientific, Waltham, MA5500

Références

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