Article de méthode

Coloration immunofluorescente pour la visualisation des protéines associées à l’hétérochromatine dans les glandes salivaires de la drosophile

DOI :

10.3791/62408

21 août 2021

Dans cet article

Résumé

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Ce protocole vise à visualiser les agrégats d’hétérochromatine dans les cellules de polytène de drosophile.

Résumé

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La visualisation des agrégats d’hétérochromatine par immunostaining peut être provocante. De nombreux composants mammifères de la chromatine sont conservés chez Drosophila melanogaster. Par conséquent, c’est un excellent modèle pour étudier la formation et l’entretien de l’hétérochromatine. Les cellules polyténisées, telles que celles trouvées dans les glandes salivaires des larves de D. melanogaster du troisième stade, fournissent un excellent outil pour observer la chromatine amplifiée près de mille fois et ont permis aux chercheurs d’étudier les changements dans la distribution de l’hétérochromatine dans le noyau. Bien que l’observation des composants de l’hétérochromatine puisse être effectuée directement dans des préparations chromosomiques polytènes, la localisation de certaines protéines peut être modifiée par la gravité du traitement. Par conséquent, la visualisation directe de l’hétérochromatine dans les cellules complète ce type d’étude. Dans ce protocole, nous décrivons les techniques immunostaining utilisées pour ce tissu, l’utilisation des anticorps fluorescents secondaires, et la microscopie confocale d’observer ces agrégats d’hétérochromatine avec une plus grande précision et détail.

Introduction

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Depuis les premières études d’Emil Heitz1,l’hétérochromatine a été considérée comme un régulateur important des processus cellulaires tels que l’expression des gènes, la séparation méiotique et mitotique des chromosomes et le maintien de la stabilité du génome2,3,4.

L’hétérochromatine est principalement divisée en deux types: l’hétérochromatine constitutive qui définit de manière caractéristique les séquences répétitives, et les éléments transposables qui sont présents à des sites chromosomiques spécifiques tels que les télo....

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Protocole

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1. Culture de larves du troisième stade

  1. Préparez 1 litre de milieux standards en ajoutant 100 g de levure, 100 g de sucre de canne entier non raffiné, 16 g de gélose, 10 mL d’acide propionique et 14 g de gélatine. Dissoudre tous les ingrédients sauf la levure dans 800 mL d’eau du robinet, puis dissoudre la levure. Autoclave immédiatement pendant 30 minutes.
    1. Ensuite, laissez le support refroidir à 60 °C et ajoutez l’acide propionique à une concentration finale de 0,01 %. Laissez la bouteille reposer jusqu’à ce que la gélatine soit formée.
  2. Pour optimiser la culture de larves de 3o stades, collectez d’abord des adultes âgés de 5 à....

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Résultats

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Les résultats représentatifs de l’immunomarquage de HP1a dans les glandes salivaires de la drosophile sont illustrés à la figure 1. Un résultat positif est d’observer un point focal(figure 1a)(agrégat ou condensat hétérochromatique). Un résultat négatif est l’absence de signal ou un signal dispersé. Parfois, un double signal peut être observé, c’est-à-dire avec un point double (Figure 1c), mais il se produit généralement en.......

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Discussion

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La fonction cellulaire des organismes eucaryotes peut définir la structure 3D dans le noyau, qui est soutenue par des interactions entre différentes protéines avec la chromatine et diverses molécules, y compris l’ARN. Au cours des trois dernières années, les condensats biologiques qui ont eu de la pertinence, y compris l’hétérochromatine, ont joué un rôle fondamental dans la détermination de la séparation de phase favorisant l’organisation spatiale nucléaire distincte de la chromatine active et répressive

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Déclarations de divulgation

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Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts concurrents.

Remerciements

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Nous remercions Marco Antonio Rosales Vega et Abel Segura d’avoir pris certaines des images confocales, Carmen Muñoz pour la préparation des médias et le Dr Arturo Pimentel, M.C. Andrés Saralegui et le Dr Chris Wood de la LMNA pour des conseils sur l’utilisation des microscopes.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Tubes de microcentrifugation de 1,5 mLAxygen MCT-150-C11351904marque non critique
16 % formaldéhydeThermo Scientific28908
AF1 CitifluorTed pella1947025 mL
BSA, biologie moléculaire QualitéRoche10735078001marque non critique
Complet, inhibiteurs de protéase Ultra sans EDTA
protéase inhibiteurs
Merck5892953001
CoverslipCorningCLS285022-200EA22x22, marque non critique
DTTSigmad9779marque non critique
EDTASigmaE5134marque non critique
EGTAmarque non critique
Glissière en verreseal3011marque non critique
H3BO3Baker0084-01marque non critique
H3K9me3Abcam8889
HP1aHybridoma BankC1A9Forme du produit  ; Concentré 0,1 mL
KClBaker3040-01marque non critique
MéthanolBaker9070-03marque non critique
NaClSigma71376marque non critique
marque NaOHnon critique
PIPESnon critique
RotatorThermo Scientific13-687-12Q  ; Labquake Tube Shaker
Thermo Mixer CEppendorf13527550SmartBlock 1,5 mL
TrisMilipore648311marque non critique
Triton X-100SigmaT8787100 mL, marque non critique
&bêta ;-mercaptoéthanolBio-Rad161071025 mL, marque non critique
Gold marque

Références

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  1. Berger, F. Emil Heitz, a true epigenetics pioneer. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 20 (10), 572(2019).
  2. Irick, H. A new function for heterochromatin. Chromosoma. 103 (1), 1-3 (1994).
  3. Kasinathan, B., et al.

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Mots-clés

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