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Article de méthode

Assemblage de modèles de bicouches lipidiques supportées et suspendues imitant des cellules pour l’étude des interactions moléculaires

3.4K vues

DOI :

10.3791/62599

3 août 2021

Dans cet article

Résumé

Ce protocole décrit la formation de cellules imitant les vésicules unilipidiques et multilipidiques, les bicouches lipidiques soutenues et les bicouches lipidiques en suspension. Ces modèles in vitro peuvent être adaptés pour incorporer une variété de types de lipides et peuvent être utilisés pour étudier diverses interactions entre molécules et macromolécules.

Résumé

Les membranes cellulaires modèles sont un outil de dépistage utile avec des applications allant de la découverte précoce de médicaments aux études de toxicité. La membrane cellulaire est une barrière protectrice cruciale pour tous les types de cellules, séparant les composants cellulaires internes de l’environnement extracellulaire. Ces membranes sont composées en grande partie d’une bicouche lipidique, qui contient des groupes de tête hydrophile externe et des groupes de queue hydrophobes internes, ainsi que diverses protéines et cholestérol. La composition et la structure des lipides eux-mêmes jouent un rôle crucial dans la régulation de la fonction biologique, y compris les interactions entre les cellules et le microenvironnement cellulaire, qui peut contenir des produits pharmaceutiques, des toxines biologiques et des toxiques environnementaux. Dans cette étude, des méthodes pour formuler des bicouches unilipidiques et multilipidiques soutenues et en suspension imitant les cellules lipidiques sont décrites. Auparavant, des bicouches lipidiques unilipidiques phosphatidylcholine (PC) ainsi que des bicouches lipidiques multilipidiques inspirées du trophoblaste placentaire ont été développées pour être utilisées dans la compréhension des interactions moléculaires. Ici, les méthodes pour réaliser les deux types de modèles bicouches seront présentées. Pour les cellules imitant les bicouches multilipidiques, la composition lipidique souhaitée est d’abord déterminée par extraction lipidique à partir de cellules primaires ou de lignées cellulaires, suivie d’une chromatographie liquide-spectrométrie de masse (LC-MS). En utilisant cette composition, les vésicules lipidiques sont fabriquées à l’aide d’une méthode d’hydratation et d’extrusion en couche mince et leur diamètre hydrodynamique et leur potentiel zêta sont caractérisés. Les bicouches lipidiques supportées et en suspension peuvent ensuite être formées à l’aide d’une microbalance à cristaux de quartz avec surveillance de la dissipation (QCM-D) et sur une membrane poreuse pour une utilisation dans un test de perméabilité à membrane artificielle parallèle (PAMPA), respectivement. Les résultats représentatifs mettent en évidence la reproductibilité et la polyvalence des modèles de bicouches lipidiques de membrane cellulaire in vitro. Les méthodes présentées peuvent aider à évaluer rapidement et facilement les mécanismes d’interaction, tels que la perméation, l’adsorption et l’incorporation, de diverses molécules et macromolécules avec une membrane cellulaire, aidant ainsi au dépistage des candidats médicaments et à la prédiction de la toxicité cellulaire potentielle.

Introduction

La membrane cellulaire, composée principalement de phospholipides, de cholestérol et de protéines, est un composant crucial de toutes les cellules vivantes1. Avec une organisation guidée par l’amphiphilie lipidique, la membrane cellulaire fonctionne comme une barrière protectrice et régule la façon dont la cellule interagit avec son environnementenvironnant 2. Plusieurs processus cellulaires dépendent de la composition lipidique et protéique de la membrane1,2. Par exemple, les interactions de la membrane cellulaire sont importantes pour une administration efficac....

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Protocole

1. Développer des vésicules unilipidiques

  1. Méthode d’hydratation en couche mince
    1. Préparation et stockage de solutions mères lipidiques
      REMARQUE: Toutes les étapes d’utilisation du chloroforme doivent être effectuées dans une hotte chimique. Le chloroforme doit toujours être pipeté à l’aide d’embouts de pipette en fibre de carbone sans danger pour les solvants. Les solutions contenant du chloroforme doivent toujours être stockées dans des flacons en verre.
      1. Préparer une solution mère lipidique de 10 mg/mL en ajoutant le volume approprié de chloroforme dans le flacon contenant la poudre lipidique et bien mélanger. Par exemple, ajouter 20 mL de....

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Résultats

Ce protocole détaille les méthodes de formation des bicouches lipidiques supportées et suspendues (Figure 1). La première étape pour former une bicouche lipidique soutenue consiste à développer des vésicules lipidiques. La mini-extrudeuse permet de préparer de petits volumes de vésicules lipidiques (1 mL ou moins), tandis que la grande extrudeuse permet de préparer 5 à 50 mL de vésicules lipidiques en un seul lot. Les distributions granulométriques des vésicules unilipidiques formées par la .......

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Discussion

Ce protocole permet la formation de vésicules lipidiques, de bicouches lipidiques soutenues et de bicouches lipidiques en suspension. Ici, des étapes critiques sont présentées pour former chacune de ces structures. Lors de la formation de vésicules lipidiques, il est important d’extruder au-dessus de la température de transition du lipide39. Lorsqu’il est en dessous de la température de transition, le lipide est physiquement présent dans sa phase de gel ordonnée39. Dans cet.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas de conflit d’intérêts ou d’intérêts financiers concurrents.

Remerciements

Ce matériel est basé sur des travaux soutenus par la National Science Foundation dans le cadre de la subvention n ° 1942418 attribuée à A.S., et une bourse de recherche supérieure de la National Science Foundation décernée à C.M.B.H., sous la subvention n ° 1644760. Toutes les opinions, constatations et conclusions ou recommandations exprimées dans ce document sont celles des auteurs et ne reflètent pas nécessairement les points de vue de la National Science Foundation. Les auteurs remercient le Dr Noel Vera-González pour l’acquisition de données sur la caractérisation des vésicules lipidiques. Les auteurs remercient le professeur Robert Hurt (Brown University) pour l....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
1-palmitoyl-2-oléoyl-glycéro-3-phosphocholine  ; (POPC, 16:0-18:1 PC)Avanti Polar Lipids850457
1-palmitoyl-2-oleoyl-sn-glycero-3-phospho-L-sérine (sel de sodium) (POPS, 16:0-18:1 PS)Avanti Polar Lipids840034
1-palmitoyl-2-oleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine (16:0-18:1 PE)Avanti Polar Lipids850757
1,2-dioleoyl-sn-glycero-2-phospho-L-sérine (DOPS, 18:1 PS)Avanti Polar Lipids840035
1,2-dioléoyl-sn-glycéro-3-phosphocholine (DOPC, 18:1 (&Delta ; 9-Cis) PC)Avanti Polar Lipids850375
1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine (DOPE, 18:1 (&Delta ; 9-Cis) PE)Avanti Polar Lipids850725
1,2-distearoyl-sn-glycero-3-ethylphosphocholine (sel de chlorure) (18:0 EPC (sel Cl))Avanti Polar Lipids890703
seringues Luer-Loc de 3 mLd’échantillon BD 309657
40 mL, ambré avec doublure en polytétrafluoroéthylène (PTFE)/caoutchoucDuran Wheaton KimbleW224605
acétonitrileSigma-Aldrich271004
AlconoxFisher Scientific50-821-781
Formate d’ammoniumMillipore SigmaLSAC70221
C18, colonne de 3,5 um x 50 mm, SunFireWaters  ;
ChloroformeMillipore SigmaLSAC288306
Cuvette UV Micro LCH 8,5 mm, 50 um, RPKSarstedt67.758.001
Phtalate de di(2-éthylhexyle) (DEHP)Millipore Sigma36735
Diméthyl sulfoxyde (DMSO)Millipore SigmaLSAC472301
EthanolPharmco111000200
Supports de filtre, 10 mmAvanti Polar Lipids610014Taille pour mini extrudeuse
Cellule zêta capillaire pliéeMalvern PanalyticalDTS1070
IsopropanolSigma-Aldrich190764-4L
KimwipesKimberly Clark34256
L-&alpha ;-phosphatidylinositol (soja) (Soy PI)Avanti Polar Lipids
L-&alpha ;-phosphitidylcholine (œuf, poulet)Avanti Polar Lipids840051
LiposoFast ® ; LF-50Avestin, Inc.
MéthanolSigma-Aldrich179337 - 4L
Mini-extrudeuse set avec support/bloc chauffantAvanti Polar Lipids610000
MultiScreen-IP Plaque filtrante, 0.45  ; et micro ; m, transparent, stérileMillipore SigmaMAIPS4510pour études PAMPA
Azote gazeux, ultra-purTechAirNI T5.0
Membranes hydrophiles nuclépores, polycarbonate, 19 mm, 0,1 μmWhatman800309Taille pour mini-extrudeuse
Membranes hydrophiles Nuclepore, polycarbonate, 25 mm, 0,1 μmWhatman110605Taille pour grande extrudeuse
ParafilmBemisPM999
Tampon phosphate salin (PBS), 10xGenesee Scienfitic25-507XDilué à 1x
logiciel Qsoft 401Biolin Scientific
avec dissipation Analyseur Q-SenseBiolin Scientific
Flacons à scintillation, flacons en verre borosilicaté, 20 mLDuran Wheaton Kimble986561
Dioxyde de silicium, mince QSensorsBiolin ScientificQSX 303
Chlorure de sodium (NaCl)Millipore SigmaLSACS5886
Dodécylsulfate de sodium (SDS)Fisher ScientificBP166-100
Pointes de pipette sans solvantSigma-AldrichS8064
Sphingomyéline (œuf, poulet)Avanti Polar Lipids
Base TrizmaMillipore SigmaLSACT1503
Trypsine-éthylènediaminetretaacétiqueCaisson LabsTRL01-6X100ML
Disque de vidange Whatman, 25 mmWhatman230600Taille pour grande extrudeuse
Zetasizer ZS90Malvern Panalytical
Zetasizer 7.01 logicielMalvern Panalytical
Flacon 186002551840044 Microbalance à cristal de quartz 860061

Références

  1. Lucio, M., Lima, J. L. F. C., Reis, S. Drug-Membrane Interactions: Significance for Medicinal Chemistry. Current Medicinal Chemistry. 17 (17), 1795-1809 (2010).
  2. Mayne, C. G., et al. The cellular membrane as....

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Réimpressions et autorisations

Mots-clés

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