Ce protocole décrit un nouveau test d’amplificateur-rapporteur transitoire basé sur le rAAV. Ce test peut être utilisé pour induire une expression pilotée par l’amplificateur in vivo dans le cerveau de la souris.
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Article de méthode
Ce protocole décrit un nouveau test d’amplificateur-rapporteur transitoire basé sur le rAAV. Ce test peut être utilisé pour induire une expression pilotée par l’amplificateur in vivo dans le cerveau de la souris.
Les amplificateurs sont des plates-formes de liaison pour un large éventail de facteurs de transcription qui conduisent à des modèles d’expression spécifiques de gènes spécifiques aux tissus et aux types cellulaires. De multiples moyens d’évaluer l’ADN non codant et divers états de chromatine se sont révélés utiles pour prédire la présence de séquences d’amplificateurs dans le génome, mais valider l’activité de ces séquences et trouver les organes et les stades de développement dans lesquels elles sont actives est un processus à forte intensité de main-d’œuvre. Les progrès récents dans les vecteurs de virus adéno-associés (AAV) ont permis la livraison généralisée de transgènes aux tissus de souris, permettant des tests d’amplificateur in vivo sans nécessiter un animal transgénique. Ce protocole montre comment une construction rapporteur qui exprime l’EGFP sous le contrôle d’un promoteur minimal, qui ne conduit pas d’expression significative par elle-même, peut être utilisée pour étudier les modèles d’activité des séquences d’amplificateurs candidats dans le cerveau de la souris. Une construction de rapporteur emballée AAV est livrée au cerveau de la souris et incubée pendant 1 à 4 semaines, après quoi l’animal est sacrifié et des sections de cerveau sont observées au microscope. L’EGFP apparaît dans les cellules dans lesquelles l’amplificateur testé est suffisant pour initier l’expression génique, en localisant l’emplacement et le stade de développement dans lequel l’amplificateur est actif dans le cerveau. Les méthodes de clonage standard, l’emballage AAV à faible coût, les sérotypes AAV en expansion et les méthodes d’administration in vivo et de lecture d’imagerie standard en font une approche accessible pour l’étude de la régulation de l’expression génique dans le cerveau.
Les amplificateurs sont des éléments cis-régulateurs génomiques qui servent de sites de liaison au facteur de transcription et peuvent conduire l’expression d’un gène cible d’une manière spatio-temporellement spécifique 1,2. Ils sont différentiellement actifs dans différents types de cellules, tissus et stades de développement et peuvent être des substrats de variation génomique liée au risque de maladie 3,4. Ainsi, la nécessité de comprendre la dynamique de la fonction de l’amplificateur est essentielle pour progresser dans les applications scientifiq....
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Ce protocole a été approuvé par le comité institutionnel de soin et d’utilisation des animaux de UC Davis (protocole #22339) et le comité de biosécurité institutionnel de UC Davis (BUA-R1903). Ce protocole a été testé sur des souris C57BL/6J des deux sexes au jour postnatal 0-1.
1. Cloner la séquence candidate amplificateur dans le plasmide vecteur AAV.
REMARQUE : Les protocoles représentatifs sont donnés, mais la stratégie de clonage a un degré élevé de flexibilité.
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En utilisant ces méthodes, une séquence de 915 pb dans le troisième intron associé au risque psychiatrique du gène CACNA1C19,49,50 a été testée pour l’activité d’amplificateur dans le cerveau postnatal de la souris. Cette séquence a été découverte dans un MPRA de 345 séquences d’amplificateurs candidats centrées sur les SNP de risque psychiatrique et neurologique12 et les expériences de caractéri.......
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Ce protocole décrit une méthode basée sur rAAV pour le déploiement de transgènes pilotés par amplificateur dans le cerveau postnatal de la souris. Dans ce protocole généralisé, un amplificateur candidat, un promoteur minimal, un gène rapporteur et une séquence de codes-barres optionnelle sont clonés dans un squelette plasmidique AAV. Ces expériences peuvent être réalisées avec une seule séquence d’amplificateur candidat ou avec plusieurs séquences en parallèle. Le plasmide est emballé dans un rAAV et livré au cerveau pos.......
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Les auteurs ne déclarent aucun intérêt financier concurrent.
Le séquençage a été effectué à l’UC Davis DNA Technologies Core. Nous remercions le laboratoire de Lin Tian à UC Davis pour la formation sur l’emballage rAAV et pour nous avoir généreusement offert des plasmides d’aide AAV et de rep/capuchon. Ce travail a été soutenu par NIH/NIGMS R35GM119831.
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| 10x Tampon de citrate | Sigma-Aldrich | C9999-1000ML | |
| 5'-gatcactctcggcatggac-3'Integrated | DNA Technologies | N/A : Amorce Forward conçue sur mesure | pour la vérification des clones après transformation. Ces amorces sont spécifiques au vecteur utilisé et ont été conçues pour le vecteur spécifique utilisé dans nos expériences. |
| 5'-gatggctggcaactagaagg-3'Integrated | DNA Technologies | N/A : | Amorce inversée conçue sur mesure pour la vérification des clones après transformation. Ces amorces sont spécifiques au vecteur utilisé et ont été conçues pour le vecteur spécifique utilisé dans nos expériences. |
| Agarose | VWR | VWRVN605-500G | |
| Assemblages de tubes d’aspirateur | Sigma-Aldrich | A5177-5EA | pour l’administration par voie orale de rAAV |
| Boîtes de Pétri bactériologiques | Thermo Fisher Scientific | 08-757-100D | |
| Carbenicilline | Sigma-Aldrich | C1389-5G | |
| Chicken IgY anti-GFP | Thermo Fisher Scientific | A10262 | |
| Microscope confocal | Zeiss | LSM900 | Les images ont été prises sur le modèle LSM800, mais Zeiss a lancé le modèle LSM900 ces dernières années pour remplacer le LSM800. |
| Tubes à centrifuger coniques 15 mL | Thermo Fisher Scientific | 12-565-269 | |
| Cryomoules | Thermo Fisher Scientific | NC9806558 | Ces moules sont adaptés au cerveau de souris P28. D’autres tailles peuvent être plus appropriées pour des tissus plus grands ou plus petits. |
| DAPI | Sigma-Aldrich | D9542-10MG | |
| Ciseaux de dissection, 4.5" | VWR | 82027-578 | |
| Âne anti-poulet AlexaFlour-488 | Jackson ImmunoResearch | 703-545-155 | |
| Dulbecco’s PBS 1x | Thermo Fisher Scientific | MT21031CV | |
| Eppendorf Microcentrifugeuses tubes 2.0 mL | Thermo Fisher Scientific | ||
| Falcon tubes à fond rond 14 mL | Thermo Fisher Scientific | 352059 | |
| Colorant vert rapide | Grainger | F0099-1G | |
| Set de pinceaux à détails fins | Artbrush Tower | B014GWCLFO | |
| Gibson Assembly Master Mix | NEB | E2611S Tubes capillaires | |
| en verre | Drummond Scientific Company | 5-000-2005 | |
| HiSpeed Plasmid Maxi Kit | QIAGEN | 12663 | Kit de préparation maxi de plasmide commercial |
| HyClone HyPure Molecular Biology Grade Eau | VWR | SH30538.03 | |
| IV Set de perfusion papillon avec tube 12" et aiguille 25G | Thermo Fisher Scientific | 26708 | |
| Kimwipes | Kimberly Clark | 34155 | Lingette non pelucheuse |
| LB Agar | Thermo Fisher Scientific | BP1425-500 | LB Prémélange de gélose pour milieux sélectifs |
| McPherson Vannas ciseaux à iris | Integra LifeSciences | 360-215 | |
| Huile minérale | Sigma Life Science | 69794-500ML | |
| NEB Stable Competent E. coli | NEB | C3040I | |
| NucleoSpin Gel et nettoyage PCR | Takara | 740609.5 | Kit pour réaction enzymatique nettoyage et extraction de gel |
| OCT moyen | VWR | 25608-930 | |
| Agitateur orbital | Cole Parmer | 60-100 | |
| Paraformaldéhyde | Sigma-Aldrich | 158127-500G | |
| Tubes de bandelettes PCR 0,2 mL | VWR | 490003-692 | |
| Pompe péristaltique | Gilson | F155005 | |
| Saline tamponnée au phosphate (PBS) 10x | Thermo Fisher Scientific | 70011044 | |
| Phusion Hot Start II ADN polymérase haute fidélité | Thermo Fisher Scientific | F549L | |
| Lait en poudre | Sunny Select | ||
| ProLong Gold Antifade Mountant | Thermo Fisher Scientific | P36934 | |
| QIAquick Kit de purification PCR | QIAGEN | 28106 | |
| rCutSmart Tampon | NEB | B6004S | Tampon pour la digestion de restriction avec PacI, AscI et XmaI |
| Enzyme de restriction : AscI | NEB | R0558L | |
| Enzyme de restriction : PacI | NEB | R0547L | |
| Enzyme de restriction : XmaI | NEB | R0180L | |
| Milieu de croissance SOC | NEB | B0920S | Milieu de récupération après transformation |
| Saccharose ( RNase/DNase free) | Millipore Sigma | 033522.5KG | |
| TAE buffer | Apex | 20-194 | |
| Tubulure de transfert | Gilson | F1179941 | Pour pompe péristaltique |
| Triton X100 | Sigma-Aldrich | X100-100ML | |
| Wizard Plus SV Minipreps Système de purification d’ADN | Thermo Fisher Scientific | A1460 | Plasmid mini prep kit |
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