$$\rightleftharpoonup{xx}$$
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La morphogenèse implique de nombreux mouvements cellulaires pour organiser les cellules en tissus et organes. Pour un bon développement, tous ces mouvements doivent être étroitement coordonnés, et l’accumulation de preuves suggère que cela est réalisé, au moins en partie, par des interactions mécaniques. Tester cela dans l’embryon nécessite des perturbations physiques directes. Les ablations au laser sont une option de plus en plus utilisée qui permet d’alléger les contraintes mécaniques ou d’isoler physiquement deux populations cellulaires l’une de l’autre. Cependant, de nombreuses ablations sont effectuées avec un laser ultraviolet (UV), qui offre une résolution axiale et une pénétration tissulaire limitées. Une méthode est décrite ici pour ablation de volumes profonds, significatifs et spatialement bien définis à l’aide d’un microscope à deux photons. Les ablations sont démontrées dans une lignée transgénique de poisson zèbre exprimant la protéine fluorescente verte dans le mésendoderme axial et utilisées pour couper le mésendoderme axial sans affecter l’ectoderme sus-jacent ou la cellule vitellin sous-jacente. Le comportement cellulaire est surveillé par imagerie en direct avant et après l’ablation. Le protocole d’ablation peut être utilisé à différents stades de développement, sur n’importe quel type de cellule ou de tissu, à des échelles allant de quelques microns à plus d’une centaine de microns.