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Article de méthode

Isolement et sélection de champignons entomopathogènes à partir d’échantillons de sol et évaluation de la virulence fongique contre les insectes nuisibles

11.2K vues

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DOI :

10.3791/62882

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28 septembre 2021

Dans cet article

Résumé

Nous présentons ici un protocole basé sur le système d’appât du ver de farine (Tenebrio molitor) qui a été utilisé pour isoler et sélectionner les champignons entomopathogènes (EPF) à partir d’échantillons de sol. Une formule de nombre de conidies efficaces (ECN) est utilisée pour sélectionner un EPF à haute tolérance au stress en fonction des caractéristiques physiologiques de la lutte microbienne des ravageurs sur le terrain.

Résumé

Les champignons entomopathogènes (FPE) sont l’un des agents de lutte microbienne pour la lutte intégrée contre les ravageurs. Pour lutter contre les ravageurs locaux ou envahissants, il est important d’isoler et de sélectionner les FPE indigènes. Par conséquent, la méthode de l’appât du sol combinée au système d’appât d’insecte (ver de farine, mouoliteur Tenebrio) a été utilisée dans cette étude avec quelques modifications. Les EPF isolés ont ensuite été soumis au test de virulence contre le ravageur agricole Spodoptera litura. De plus, les souches EPF potentielles ont été soumises à des identifications morphologiques et moléculaires. En outre, la production de conidies et le test de thermotolérance ont été effectués pour les souches EPF prometteuses et comparés; ces données ont ensuite été substituées dans la formule du nombre de conidies effectives (ECN) pour le classement en laboratoire. Le système appât-ver de farine du sol et la formule ECN peuvent être améliorés en remplaçant les espèces d’insectes et en intégrant plus de facteurs de stress pour l’évaluation de la commercialisation et l’application sur le terrain. Ce protocole fournit une approche rapide et efficace pour la sélection des FPE et améliorera la recherche sur les agents de lutte biologique.

Introduction

Actuellement, les champignons entomopathogènes (FPE) sont largement utilisés dans la lutte microbienne contre les ravageurs agricoles, forestiers et horticoles. Les avantages de l’EPF sont ses larges gammes d’hôtes, sa bonne adaptabilité environnementale, sa nature écologique et le fait qu’il peut être utilisé avec d’autres produits chimiques pour montrer l’effet synergique de la lutte intégrée contre les ravageurs1,2. Pour l’application en tant qu’agent antiparasitaire, il est nécessaire d’isoler un grand nombre d’EPF des insectes malades ou de l’environnement naturel.

L’échantillo....

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Protocole

REMARQUE : L’organigramme complet est illustré à la figure 1.

1. Isolement et sélection des champignons entomopathogènes potentiels (FPE)

  1. Prélever l’échantillon de sol
    1. Retirez 1 cm du sol de surface, puis recueillez le sol à une profondeur de 5 à 10 cm à l’aide d’une pelle de chaque site d’échantillonnage.
      NOTE : Les sites d’échantillonnage seraient des montagnes, des forêts ou des zones peu peuplées afin d’éviter la contamination des souches de FPE pulvérisées artificiellement. Assurez-vous que les zones de collecte des échantillons de sol sont recouvertes de mauvaises herbes à la surface.....

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Résultats

Isolement et sélection de champignons entomopathogènes potentiels (EPF)
En utilisant la méthode de construction de la bibliothèque de champignons entomopathogènes à médiation molitoreuse (EPF) de Tenebrio, le nombre de champignons sans activité de destruction d’insectes serait exclu; ainsi, l’efficacité de l’isolement et la sélection du FPE pourraient être largement augmentées. Au cours de l’application de cette méthode, les informations sur les sites d’échan.......

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Discussion

Les champignons entomopathogènes (EPF) ont été utilisés pour la lutte contre les insectes. Il existe plusieurs méthodes pour isoler, sélectionner et identifier les FPE30,31,32. En comparant les différents types de méthodes d’appâts à insectes, Beauveria bassiana et Metarhizium anisopliae ont été couramment trouvés dans les appâts à insectes6,12,13,14.

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’il n’y a pas de conflit d’intérêts impliqué dans ce travail.

Remerciements

Cette recherche a été soutenue par la subvention 109-2313-B-005 -048 -MY3 du ministère de la Science et de la Technologie (MOST).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Gélose de qualité bactériologiqueBIOMAN SCIENTIFIC Co., Ltd.AGR001Convient à la plupart des applications de culture cellulaire/moléculaire, de biologie.
AGAROSE, qualité biotechnologieBIOMAN SCIENTIFIC Co., Ltd.AGA001Pour l’électrophorèse de l’ADN.
BioGreen Safe DNA Gel BufferBIOMANSDB001T
Perceur de liège en laitonDoggerD89A-44001
Canon kiss x2CanonEOS 450DPour une morphologie de colonie de souche record
Incubateur à température constanteYihder Co., Ltd.LE-509RDÉlevage de champignons.
cubee Mini-centrifugeuseGeneReachMC-CUBEE
DigiGel 10 Système d’image numérique sur gelTOPBIODGIS-12S
Finnpipette F2 0.2 à 2 & micro ; L PipetteThermo Scientific4642010
Finnpipette F2 1 à 10 & micro ; L PipetteThermo Scientific4642030
Finnpipette F2 10 à 100 & micro ; L PipetteThermo Scientific4642070
Finnpipette F2 100 à 1000 & micro ; L PipetteThermo Scientific4642090
Finnpipette F2 2 à 20 & micro ; L PipetteThermo Scientific4642060
Finnpipette F2 20 à 200 & micro ; L PipetteThermo Scientific4642080
GeneAmp PCR System 9700Applied Biosystems4342718
GenepHlow Gel/PCRKit GeneaidDFH100
Genius Dry Bath IncubatorMajor ScienceMD-01N
Cylindre gradué Custom A 100mLSIBATASABP-1195906Mesurez le volume des réactifs.
Compteur de pointage manuelSDINO.1055
HémocytomètrebiomanAP-0650010Calculer le nombre de spores
Boucle d’inoculationDoggerD8GA-23000
couvercleIDEAHOUSERS92004
Micro verre de couvertureMUTO PURE CHEMICALS CO.,LTD24241
Système d’imagerie microscopeSAGE VISION CO.,LTDSGHD-3.6C
Lames de microscopeDOGGERDG75001-07105
Mupid-2plus Électrophorèse sur gel d’ADNADVANCEAD110
Microscope optique NikonSAGE VISION CO.,LTDEclipse CI-L
Gobelet en plastiqueIDEAHOUSECS60016
Presto Mini gDNA Kit de levureGeneaidGYBY300Kit d’extraction d’ADN génomique fongique
Bouillon de dextrose Sabouraud (Sabouraud Liquid Medium)HiMedia Leading BioSciencesCompany M033Utilisé pour la culture de levures, de moisissures et de micro-organismes aciduriques.
Lame de scalpel n°23Swann-Morton310
Manche de scalpel n°4AGARWAL SURGICALSSSS -FOR-01-91
PelleSave & SûrA  ;-1580242  ;-00
Silwet L-77bioman(phytotech)S7777Tensioactif
Sorvall Legend Micro 17 Micro 17 MicrocentrifugeuseThermo Scientific75002403
Pince à épiler en acierSIPEL ELECTRONIC SAGG-SA
Boîte de Pétri stérileBIOMAN SCIENTIFIC Co., Ltd.1621Récipients cylindriques peu profonds avec couvercles ajustés, spécialement conçus pour la microbiologie ou la culture cellulaire.
ThermoCell MixingBlockBIOERMB-101
Tween 80FUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation164-21775
TwinGuard ULT CongélateurPanasonic Healthcare Holdings Co., Ltd.MDF-DU302VX-80° ; C stocké.
Armoire à plancher verticalChih ChinBSC-3Opération fongique de culture.
Vortex Genie IIScientificSIG560
Sacs de rangement à fermeture éclairSave & SûrA  ;-1248915  ;-00
100 bp Échelle d’ADNGeneaidDL007-20
° ; C CongélateurFRIGIDAIREFrigidaireFFFU21M1QW-20° ; C et réactifs expérimentaux stockés.
2X SuperRed PCR Master MixTOOLSTE-SR01
50X TAE BufferBIOMANTAE501000

Références

  1. Wraight, S. P., Carruthers, R. I. Biopesticides: use and Delivery. , Springer. 233-269 (1999).
  2. Chase, A., Osborne, L., Ferguson, V. Selective isolation of the entomopathogenic fungi Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae from an artificial potting medium. Flor....

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Réimpressions et autorisations

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