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La méthylation de l’ADN, une forme de régulation épigénétique des gènes, est importante pour la fonction cellulaire normale. Dans les cellules, des protéines appelées ADN méthyltransférases (DNMT) établissent et maintiennent le schéma de méthylation de l’ADN. Les changements dans le schéma normal de méthylation de l’ADN sont liés au développement et à la progression du cancer, ce qui fait des DNMT des cibles potentielles pour les médicaments anticancéreux. Ainsi, l’identification et la caractérisation de nouvelles petites molécules inhibitrices de ces enzymes sont d’une grande importance. Cet article présente un protocole qui peut être utilisé pour dépister les inhibiteurs de l’ADN méthyltransférase. Le test cinétique couplé continu permet de déterminer les vitesses initiales de méthylation de l’ADN en présence et en l’absence d’inhibiteurs potentiels de petites molécules. Le test utilise l’endonucléase méthyl-sensible Gla I pour coupler la méthylation d’un substrat d’ADN hémiméthylé à la génération de fluorescence.
Ce test continu permet de surveiller l’activité enzymatique en temps réel. La réalisation du test en petits volumes dans des plaques de microtitrage réduit le coût des réactifs. À l’aide de ce test, un petit exemple de dépistage a été effectué pour les inhibiteurs de DNMT1, l’isozyme DNMT le plus abondant chez l’homme. Le produit naturel anthraquinone hautement substitué, l’acide laccaïque A, est un puissant inhibiteur de DNMT1 compétitif pour l’ADN. Ici, nous examinons trois inhibiteurs potentiels de petites molécules – anthraquinones ou molécules semblables à l’anthraquinone avec un à trois substituants – à deux concentrations pour décrire le protocole de dosage. Les vitesses initiales sont utilisées pour calculer le pourcentage d’activité observé en présence de chaque molécule. L’un des trois composés examinés présente une inhibition dépendante de la concentration de l’activité DNMT1, ce qui indique qu’il s’agit d’un inhibiteur potentiel de DNMT1.