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Article de méthode

Détection de virus et de protéines salivaires d’un vecteur cicadelle dans la plante hôte

2.8K vues

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DOI :

10.3791/63020

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14 septembre 2021

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Dans cet article

Résumé

Ce protocole montre comment utiliser la plante hôte pour détecter les protéines salivaires de la cicadelle et les protéines virales végétales libérées par les vecteurs de cicadelle.

Résumé

Les insectes vecteurs transmettent horizontalement de nombreux virus végétaux d’importance agricole. Plus de la moitié des virus végétaux sont transmis par des insectes hémiptères qui ont des pièces buccales perçantes-suceuses. Au cours de la transmission virale, la salive de l’insecte relie le virus-vecteur-hôte parce que les virus vecteurs de salive et les protéines d’insectes déclenchent ou suppriment la réponse immunitaire des plantes des insectes aux plantes hôtes. L’identification et les analyses fonctionnelles des protéines salivaires deviennent un nouveau domaine d’intérêt dans le domaine de recherche des interactions arbovirus-hôte. Ce protocole fournit un système pour détecter les protéines dans la salive des cicadelles à l’aide de la plante hôte. Le vecteur cicadelle Nephotettix cincticeps infecté par le virus nain du riz (RDV) en est un exemple. La vitellogénine et la principale protéine de capside externe P8 du RDV vecteur par la salive de N. cincticeps peuvent être détectées simultanément dans la plante de riz dont se nourrit N. cincticeps. Cette méthode est applicable pour tester les protéines salivaires qui sont retenues transitoirement dans la plante hôte après l’alimentation des insectes. On pense que ce système de détection sera bénéfique pour l’étude des interactions hémiptère-virus-plante ou hémiptère-plante.

Introduction

Le mode de transmission vecteur-hôte des arbovirus, problème fondamental, est à la frontière de la science biologique. De nombreux virus végétaux d’importance agricole sont transmis horizontalement par des insectes vecteurs1. Plus de la moitié des virus végétaux sont vecteurs d’insectes hémiptères, y compris les pucerons, les aleurodes, les cicadelles, les cicadelles et les thrips. Ces insectes ont des caractéristiques distinctes qui leur permettent de transmettre efficacement les virus végétaux1. Ils possèdent des pièces buccales perçantes-suceuses et se nourrissent de la sève du phloème et du xylème,<....

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Protocole

Les cicadelles adultes non virulifères ont été multipliées au Centre de recherche sur les virus à transmission vectorielle de l’Université d’agriculture et de foresterie du Fujian, en Chine.

1. Élevage d’insectes non virulifères

  1. Élever les adultes sur des plants de riz dans une cage cubique de 40 cm x 35 cm x 20 cm (longueur x largeur x hauteur). Gardez un côté de la cage recouvert d’un filet à l’épreuve des insectes pour la ventilation.
    1. Gardez les cages avec cicadelles dans un incubateur qui contient un régulateur d’humidité intégré à 26 ° C avec une humidité relative de 60-75% sous une photopériode de 16 h de lumière et 8....

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Résultats

La figure 1 illustre toutes les étapes de ce protocole : l’élevage des insectes, l’acquisition du virus, la collecte des protéines salivaires par l’alimentation du riz et le transfert Western. Les résultats des transferts Western ont montré que des bandes spécifiques et attendues d’environ 220 kDa ont été observées dans les échantillons de riz nourricier et de glandes salivaires d’insectes sur la membrane incubée avec des anticorps contre Vg. En revanche, aucune bande n’a été observ.......

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Discussion

La salive directement sécrétée par les glandes salivaires des insectes perçants-suceurs joue un rôle central car elle prédigère et détoxifie les tissus hôtes et les facteurs biologiques inter-règnes des vecteurs dans les hôtes 1,3,4. Les facteurs biologiques inter-règnes, y compris les éliciteurs, les effecteurs et les petits ARN, sont essentiels à la communication insecte-hôte14,15,16

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par des subventions de la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (31772124 et 31972239) et de l’Université d’agriculture et de foresterie du Fujian (subvention KSYLX014).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Réactifs
Tris baseRocheD609K69032pour 5&fois ; Tampon de tris-glycine et 10× ; TBS préparation tampon
glycineSigma-AldrichWXBD0677Vpour 5&fois ; Préparation de tampon de tris-glycine
SDSSigma-AldrichSLCB4394pour 5&fois ; Préparation de tampon de tris-glycine
NaClSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd10019318pour 10 fois ; Préparation tampon TBS
KClSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd10016318pour 10&fois ; Préparation de tampon TBS
ß ;-mercaptoéthanolRéactif XiyaB14492Pour 4&temps ; préparation de tampon d’échantillon de protéines
bleu de bromophénolSigma-AldrichSHBL3668Pour 4&temps ; préparation de tampon d’échantillon de protéines
glycérolSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd10010618Pour 4× préparation de tampon d’échantillon de protéines
méthanolSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd10014118Pour la préparation du tampon de transfert
Tween 20Coolaber SCIENCE& TeCHNoLoGYCT30111220Pour la préparation
TBST lait écrémé en poudreBecton.Dickinso et compagnie252038Pour le blocage membranaire, dilution d’anticorps
chèvre anti-lapinIgG Sangon BiotechD110058-0001Reconnaissance du primaire et du tibody
ECL Western kitThermoFisher Scientific32209Substrat chimiluminescent
nitrocellulose membranePall Corporation25312915Pour le transfert de protéines
Tampons et solutions>
TamponCompositionCommentaires/Description
 ; 5&fois ; Tris-glycine tampon15,1 g Tris base
94 g glycine
FDS de 5 g dans 1 L d’eau
Solution mère
1& fois ; Tampon tris-glycine200 mL de 5& fois ; Tampon tris-glycine
800 mL d’eau
Solution de travail, pour SDS-PAGE
10&fois ; Tampon salin tamponné au tris (TBS)80 g NaCl
30 g Tris base
2 g de KCl
dans 1 L d’eau
Solution mère
TBS avec Tween 20 (TBST) solution100 mL 10&fois ; TBS solution
3 mL Tween 20
900 mL d’eau stérile
Solution de travail
de protéines8 g SDS
4 mL ß ;-mercaptoéthanol
0,02 g de bleu de bromophénol
40 mL de glycérol
dans 40 mL 0,1 M Tris-HCl (pH 6,8)
Pour l’extraction des protéines
Tampon de transfert800 mL Tampon de tris-glycine
200 mL de méthanol
transfert de protéines
Instruments
Bleu de bromophénolSigma-AldrichSHBL3668Pour la préparation de 4x tampons d’échantillons de protéines
Incubateur à température constanteNingbo Saifu Experimental Instrument Co., Ltd.PRX-1200BPour l’élevage des cicadelles
ÉlectrophorèseTanon Science & Technology Co., Ltd.Tanon EP300Pour SDS-PAGE
de noyau de transfert électrophorétiqueBIO-RAD1703935Pour SDS-PAGE
glycérolSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd10010618Pour 4x préparation de tampon d’échantillon de protéine
glycineSigma-AldrichWXBD0677VPour 5x préparation de tampon de tris-glycine
chèvre anti-lapin IgGSangon BiotechD110058-0001Reconnaissance de l’instrument de meulage tissulaire passe-haut primaire et tibody
Shanghai Jingxin Industrial Development Co., Ltd.JXFSIPRP-24Pour le broyage des tissus végétaux
KClSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd10016318Pour 10x préparation de tampon TBS
méthanolSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd10014118Pour la préparation de tampon de transfert
Mini auge de transfert de chaleur humideBIO-RAD1703930Pour SDS-PAGE
NaClSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd10019318Pour la préparation du tampon 10x TBS
Membrane nitrocellulosiquePall Corporation25312915Pour le transfert de protéines
Lait écréméen poudre Becton.Dickinso and company252038Pour le blocage membranaire, la dilution des anticorps
Pierce ECL Western kitThermoFisher Scientific32209Substrat chimiluminescent
Instrument de couleur de protéinesGE Soins de santé biosciences ABAmersham lmager 600Pour la détection
des protéines SDSSigma-AldrichSLCB4394Pour 5x Préparation de tampon Tris-glycine Base
TrisRocheD609K69032Pour 5x Tampon Tris-glycine et 10× ; Préparation du tampon TBS
Tween 20Coolaber SCIENCE& TeCHNoLoGYCT30111220Pour la préparation TBST
Réservoir d’électrophorèse à plaque verticaleBIO-RAD1658001Pour SDS-PAGE
Bain-marieShanghai Jinghong Équipement expérimental Co., Ltd.XMTD-8222Pour faire bouillir les échantillons de protéines
&bêta ;-mercaptoéthanolRéactif XiyaB14492Pour la préparation de tampons d’échantillons de protéines 4x
de stérile stérile stérile 4&fois tampon d’échantillon Pour Module

Références

  1. Hogenhout, S. A., Ammar el, D., Whitfield, A. E., Redinbaugh, M. G. Insect vector interactions with persistently transmitted viruses. Annual Review of Phytopathology. 46, 327-359 (2008).
  2. Cranston, P. S., Gullan, P. J. Phylogeny of insects. Encyclopedia of Insects. Resh, V. H., Carde, R. T. , Academic. Amste....

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Réimpressions et autorisations

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