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Article de méthode

Spectroscopie CD pour étudier les interactions ADN-protéine

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DOI :

10.3791/63147

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10 février 2022

Dans cet article

Résumé

L’interaction d’un remodeleur de chromatine dépendant de l’ATP avec un ligand d’ADN est décrite à l’aide de la spectroscopie CD. Les changements conformationnels induits sur un promoteur de gène analysés par les pics générés peuvent être utilisés pour comprendre le mécanisme de régulation transcriptionnelle.

Résumé

La spectroscopie de dichroïsme circulaire (CD) est une méthode simple et pratique pour étudier la structure secondaire et les interactions des biomolécules. Les progrès récents de la spectroscopie CD ont permis d’étudier en détail les interactions ADN-protéine et la dynamique conformationnelle de l’ADN dans différents microenvironnements pour une meilleure compréhension de la régulation transcriptionnelle in vivo. La zone autour d’une zone de transcription potentielle doit être déroulée pour que la transcription se produise. Il s’agit d’un processus complexe nécessitant la coordination des modifications des histones, la liaison du facteur de transcription à l’ADN et d’autres activités de remodelage de la chromatine. En utilisant la spectroscopie CD, il est possible d’étudier les changements conformationnels dans la région promotrice causés par les protéines régulatrices, telles que les remodeleurs de chromatine dépendants de l’ATP, pour favoriser la transcription. Les changements conformationnels qui se produisent dans la protéine peuvent également être surveillés. En outre, les questions concernant l’affinité de la protéine pour son ADN cible et la spécificité de la séquence peuvent être traitées en incorporant des mutations dans l’ADN cible. En bref, la compréhension unique de cette méthode sensible et peu coûteuse peut prédire les changements dans la dynamique de la chromatine, améliorant ainsi la compréhension de la régulation transcriptionnelle.

Introduction

Le dichroïsme circulaire (CD) est une technique spectroscopique qui repose sur la chiralité inhérente des macromolécules biologiques qui conduit à l’absorption différentielle de la lumière polarisée circulairement pour droitiers et gauchers. Cette absorption différentielle est connue sous le nom de dichroïsme circulaire. La technique peut donc être utilisée pour délimiter la conformation des macromolécules biologiques, telles que les protéines et l’ADN, qui contiennent toutes deux des centres chiraux1,2.

Les ondes électromagnétiques contiennent à la fois des composants électriques e....

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Protocole

1. Concentration en fonction des composants de la réaction

  1. Préparer à nouveau les concentrations de travail des tampons pour la MC et d’autres composants de réaction (voir tableau 1) et les maintenir à 4 °C avant de mettre en place les réactions.
    REMARQUE: Pour les réactions CD décrites dans le présent article, les concentrations de travail des composants sont les suivantes: tampon phosphate de sodium (pH 7,0) 1 mM, ATP 2 mM, ADN 500 nM, protéine 1 μM, MgCl2 10 mM, EDTA 50 mM, ADAADiN 5 μM.

2. Activité ATPase

  1. Avant la spectroscopie CD, établissez l’ac....

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Résultats

ADAAD stabilise une structure en forme de boucle de tige sur le promoteur MYC
Des preuves expérimentales antérieures ont montré que SMARCAL1 est un régulateur négatif de MYC29. L’analyse de la région promotrice de 159 pb de long du gène MYC par le cartographe QGRS a montré que le brin avant avait le potentiel de former un G-quadruplex (tableau 2). Mfold a montré que les deux brins de l’ADN MYC

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Discussion

Le but de cet article est d’introduire la technique de spectroscopie CD comme une approche pour étudier les changements conformationnels se produisant dans l’ADN en présence de protéines de remodelage de la chromatine dépendantes de l’ATP et de lier ces changements conformationnels à l’expression des gènes. La spectroscopie CD fournit une méthode rapide et facilement accessible pour étudier les changements conformationnels dans l’ADN.

Un point crucial à considérer pour cette technique .......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à déclarer.

Remerciements

Les auteurs tiennent à remercier l’Advanced Instrumentation Research Facility, JNU, pour le spectrophotomètre CD. V.J. et A.D. ont été soutenus par une bourse du CSIR.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
2-MercaptoethanolFisher scientificO3446I-100
Adénosine 5&prime ;-triphosphate disodium sel hydratéSigmaaldrichA2383
CD Quartz CuvetteSTARNA21-Q-1
Chirascan V100 Spectromètre CDPhotophysique appliquéeNon disponible
EDTA Sel disodique DihydrateSRL43272
Glutathion Sépharose 4BGE Healthcare17-0756-01Chromatographie d’affinité au glutathion
Solution de nettoyage Hellmanex IIIHellma9-307-011-4-507
L-Lactic déshydrogénaseSigmaaldrich  ; L2625
Acétate de magnésium tétrahydratéFisher scientificBP215-500
Chlorure de magnésium hexahydratéFisher scientificM33-500
Sel disodique NADHSigmaaldrich10107735001
Phosphoenolpyruvate Sel de monocyclohexylammoniumSRL40083
Acétate de potassiumFisher scientificP178-3
Pyruvate kinaseSigmaaldrichP1506
Phosphate de sodium dibasique AnhydreFisher scientificS374-500
Phosphate de sodium monobasique MonohydratéFisher scientificS369-500
Synergy HT lecteur de microplaquesBioTekNon disponible
Tris BaseFisher scientificBP152-500

Références

  1. Woody, R. W. Circular dichroism. Methods in Enzymology. 246, 34-71 (1995).
  2. Kelly, S., Price, N. The Use of Circular Dichroism in the Investigation of Protein Structure and Function. Current Protein & Peptide Science. 1 (4), 349-384 (2000).
  3. Rodg....

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Réimpressions et autorisations

Étiquettes

Dichroïsme circulaireRemodelage de la chromatineRégulation de la transcriptionActivité ATPaseADN G-quadruplexeRégion promotriceStructure secondaireStructure des oligonucléotides