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Isolement et caractérisation du phycobilisome intact chez les cyanobactéries

DOI:

10.3791/63272

November 10th, 2021

In This Article

Summary

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Le protocole actuel détaille l’isolement des phycobilisomes des cyanobactéries par centrifugation à travers un gradient de densité de saccharose discontinu. Les fractions de phycobilisomes intacts sont confirmées par le spectre d’émission fluorescent 77K et l’analyse SDS-PAGE. Les fractions phycobilisomes résultantes conviennent à la coloration négative de la TEM et à l’analyse par spectrométrie de masse.

Abstract

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Chez les cyanobactéries, le phycobilisome est un complexe protéique d’antenne vital qui récolte la lumière et transfère de l’énergie aux photosystèmes I et II pour la photochimie. L’étude de la structure et de la composition du phycobilisome est d’un grand intérêt pour les scientifiques car elle révèle l’évolution et la divergence de la photosynthèse chez les cyanobactéries. Ce protocole fournit une méthode détaillée et optimisée pour casser efficacement les cellules cyanobactériennes par un batteur de perles. Le phycobilisome intact peut ensuite être isolé de l’extrait cellulaire par ultracentrifugation par gradient de saccharose. Cette méthode s’est avérée adaptée aux cyanobactéries modèles et non modèles avec différents types de cellules. Une procédure étape par étape est également fournie pour confirmer l’intégrité et la propriété des phycobiliprotéines par spectroscopie de fluorescence 77K et SDS-PAGE coloré par sulfate de zinc et bleu de Coomassie. Le phycobilisome isolé peut également être soumis à d’autres analyses structurelles et compositionnelles. Dans l’ensemble, ce protocole fournit un guide de départ utile qui permet aux chercheurs qui ne connaissent pas les cyanobactéries d’isoler et de caractériser rapidement les phycobilisomes intacts.

Introduction

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Le phycobilisome (PBS) est un énorme complexe pigment-protéine soluble dans l’eau qui se fixe au côté cytoplasmique des photosystèmes dans les membranes thylakoïdes des cyanobactéries1. Le PBS est principalement composé de phycobiliprotéines colorées et de protéines linker incolores1,2. Les phycobiliprotéines peuvent être divisées en quatre grands groupes : la phycoérythrine, la phycoérythricyanine, la phycocyanine et l’allophycocyanine3. Les quatre grands groupes absorbent différentes longueurs d’onde d’énergie lumineuse dans la gamme de 490 à 650 nm, que les ch....

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Protocol

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La Synechocystis sp. PCC 6803, la souche modèle tolérante au glucose, a été obtenue auprès du Dr Chu, Hsiu-An à l’Academia Sinica, Taiwan. Leptolyngbya sp. JSC-1, le filamenteux non modèle, a été obtenu auprès du Dr Donald A. Bryant à la Pennsylvania State University, aux États-Unis.

1. Culture cellulaire et récolte

  1. Inoculez des cellules Syn6803 ou JSC-1 à l’aide d’une boucle d’inoculation métallique dans une fiole conique de 100 mL contenant 50 mL de milieu B-HEPES28. Cultiver les cellules à 30 °C sous 50 μmol photons m-2 s-1 (LED à lumière blanche) ....

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Results

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Les cellules Syn6803 et JSC-1 ont été cultivées dans des flacons coniques avec agitation constante en milieu B-HEPES à 30 °C, sous une lumière blanche LED (photons m-2s-1 de 50 μmol) dans une chambre de croissance remplie de 1% (v/v) de CO2. À la phase de croissance exponentielle (OD750 = ~0,5), les cellules ont été sous-cultivées en milieu frais avec une densité optique finale OD750 = ~0,2. Après avoir atteint la phase de croissance exponentielle tardive (OD750.......

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Discussion

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Ce protocole décrit une méthode simple et standard pour isoler le PBS intact dans deux types de cyanobactéries, le modèle unicellulaire Syn6803 et le non-modèle filamenteux JSC-1. Les étapes critiques du protocole sont l’homogénéisation cellulaire et l’ultracentrifugation sur un gradient de densité discontinu de saccharose. Généralement, la perturbation des cellules filamenteuses est plus compliquée que les cellules unicellulaires. L’augmentation de la quantité de matière première (le poids humide de la pastille cellulai.......

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Disclosures

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Les auteurs ne déclarent aucun intérêt concurrent.

Acknowledgements

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Les auteurs remercient Technology Commons, College of Life Science, National Taiwan University pour l’utilisation pratique de l’ultracentrifugeuse. Les souches cyanobactériennes Synechocystis sp. PCC 6803 et Leptolyngbya sp. JSC-1 ont été offertes par le Dr Chu, Hsiu-An à l’Academia Sinica, Taiwan, et le Dr Donald A. Bryant à la Pennsylvania State University, USA, respectivement. Ce travail a été financé par le ministère de la Science et de la Technologie (Taïwan) (109-2636-B-002-013- et 110-2628-B-002-065-) et le ministère de l’Éducation (Taïwan) Yushan Young Scholar Program (109V1102 et 110V1102).

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Billes de verre de 0,1 mmBioSpec11079101pour extraction PBS
Tube de centrifugation de 13 mL Tube de centrifugationHitachi13PAUltracentrifugation
40 mLUltracentrifugationHitachi40PA
Acide acétiqueMerck8.1875.2500pour coloration au bleu de Coomassie
B-HEPES mediumUn milieu cyanobactérien modifié à partir du milieu BG-11
Brilliant Blue R-250SigmaB-0149pour la coloration au bleu de Coomassie Bleu de
bromophénolWako pure chemical industries2-291Tampon de chargement de protéines
Balance électroniqueRadwagWLC 2/A2/C/2pour la mesure du poids humide des pastilles de cellules
Spectrophotomètre de fluorescenceHitachiF-7000Spectrophotomètre
GlycérolBioShopGly001.500Tampon de chargement de protéines
Centrifugeuse réfrigérée à grande vitesseHitachiCR22Npour l’échange
tampons Leptolyngbya sp. JSC-1du Dr Donald A. Bryant de l’Université d’État de Pennsylvanie, États-Unis.
Accessoire de mesure à basse températureHitachi5J0-0112L’accessoire comprend un récipient Dewar transparent pour la spectroscopie de fluorescence 77K.
MéthanolMerck1.07018,2511pour coloration au bleu de Coomassie
MicrocentrifugeuseThermo FisherPico 21pour l’extraction PBS
Mini-Beadbeater-16BioSpecModèle 607pour l’extraction PBS
Phosphate de potassium dibasiquePanReac AppliChem121512.121pour l’extraction PBS
Phosphate de potassium monobasiquePanReac AppliChem141509.121pour l’extraction PBS
Flacon à bouchon à visBioSpec10832pour l’extraction PBS
SmartView Pro ImagerMajor ScienceUVCI-2300pour la détection du signal de coloration Znic
Dodécylsulfate de sodiumZymesetBSD101 Tampon dechargement de protéines
SaccharoseZymesetBSU101pour l’isolation
PBSSynechocystis sp. Souche tolérante au glucose PCC 6803du Dr Chu, Hsiu-An à l’Academia Sinica, Taïwan
TrisBioShopTRS 011.1tampon de charge protéique
Triton X-100BioShopTRX 506.500pour l’extraction PBS
Filtre centrifuge à membrane Ultra 10 KMilliporeUFC901024pour l’échange
de tamponFiltre centrifuge à membrane Ultra 3 KMilliporeUFC500324pour l’échange de tampon
Ultracentrifugeused’ultracentrifugationHitachiCP80WX
SpectrophotomètreAgilentCary 60Sulfate
zincPanReac AppliChem131787.121pour coloration Znic
&beta ;-MercaptoethanolBioBasicMB0338Tampon de chargement de protéines
de de Tampon de charge de protéines Spectrophotomètre UV/Vis de

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Bryant, D. A., Guglielmi, G., de Marsac, N. T., Castets, A. M., Cohen-Bazire, G. The structure of cyanobacterial phycobilisomes: A model. Archives of Microbiology. 123 (2), 113-127 (1979).
  2. Glazer, A. N. Phycobilisomes: Structure and dynamics. Annual Review of Microbiology.

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Phycobilisome IsolationCyanobacteriaSucrose GradientUltracentrifugationBead BeaterPhycobiliproteinsSDS PAGE77K FluorescenceCell LysisProtein Composition

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