Les cellules endothéliales (CE) sont cruciales pour le fonctionnement vasculaire et du corps entier grâce à leur réponse dynamique aux signaux environnementaux. L’élucidation du transcriptome et de l’épigénome des CE est primordiale pour comprendre leur rôle dans le développement, la santé et la maladie, mais est limitée dans la disponibilité de cellules primaires isolées. Les technologies récentes ont permis le profilage à haut débit du transcriptome et de l’épigénome EC, conduisant à l’identification de sous-populations de cellules EC et de trajectoires de développement auparavant inconnues. Alors que les cultures EC sont un outil utile dans l’exploration de la fonction et du dysfonctionnement EC, les conditions de culture et les multiples passages peuvent introduire des variables externes qui modifient les propriétés de l’EC native, y compris la morphologie, l’état épigénétique et le programme d’expression des gènes. Pour surmonter cette limitation, le présent article démontre une méthode d’isolement des CE primaires humains des artères mésentériques des donneurs visant à capturer leur état natif. Les CE dans la couche intimale sont dissociés mécaniquement et biochimiquement avec l’utilisation d’enzymes particulières. Les cellules résultantes peuvent être directement utilisées pour le séquençage de l’ARN en vrac ou de l’ARN unicellulaire ou plaquées pour la culture. En outre, un flux de travail est décrit pour la préparation de tissu artériel humain pour la transcriptomique spatiale, en particulier pour une plate-forme disponible dans le commerce, bien que cette méthode convienne également à d’autres techniques de profilage du transcriptome spatial. Cette méthodologie peut être appliquée à différents vaisseaux collectés auprès d’une variété de donneurs dans des états de santé ou de maladie pour mieux comprendre la régulation transcriptionnelle et épigénétique de la CE, un aspect central de la biologie des cellules endothéliales.