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Lorsque l’œil est exposé à un mouvement visuel soutenu sur tout le champ, un modèle distinct de mouvements oculaires rapides et fluides et de mouvements de la tête à faible accélération émerge dans la direction du mouvement visuel, appelé nystagmus optocinétique (OKN)1,2. La voie neurologique de l’OKN passe de la rétine au corps géniculé latéral, au lobe occipital et au flocculus cérébelleux et se connecte aux motoneurones oculaires3. Des lésions neuronales n’importe où le long de ces voies neuronales peuvent entraîner des changements dans les réponses OKN. La réponse OKN est utilisée comme outil pour évaluer la symétrie cérébrale, la cécité psychogène et l’acuité visuelle chez les patients humains 4,5. L’acuité visuelle est évaluée en quantifiant les réponses fonctionnelles, qui peuvent faire partie intégrante de la détermination du succès des traitements et des expériences centrés sur la restauration de la vision perdue en raison de maladies neurodégénératives 3,6,7. Chez les animaux, les réponses OKN peuvent être utilisées pour évaluer avec précision l’acuité visuelle, ce qui permet aux chercheurs de collecter des données quantitatives et qualitatives concernant la fonction visuelle. Chez les rongeurs, il est possible de mesurer l’acuité visuelle de l’œil gauche et de l’œil droit indépendamment en fonction du sens de rotation des bandes dans le sens des aiguilles d’une montre et dans le sens inverse des aiguilles d’une montre8. Ce mouvement dans le sens inverse des aiguilles d’une montre et dans le sens des aiguilles d’une montre expose chaque œil au mouvement naso-temporal (N-T) ou tempo-nasal (T-N)9, respectivement. Le stimulus T-N entraîne une réponse nettement plus élevée par rapport au stimulus N-T, car les rongeurs sont plus sensibles aux dangers venant de l’arrière ou du côté.
Auparavant, la fonction visuelle chez des rats de laboratoire normaux et des rats dégénérés rétiniens a été testée à l’aide de différentes méthodes de test OKN 6,10,11,12,13. Cependant, certaines variabilités dans les scores d’acuité visuelle sont observées entre les différentes études, y compris les données présentées dans la présente étude. Cette variabilité peut être principalement attribuée aux différences dans la configuration de test utilisée. Les différences dans la taille de l’arène de test et le type de stimuli visuels OKN utilisés 6,10 peuvent être les principaux facteurs. Les stimuli utilisés dans ces expériences comprennent des réseaux sinusoïdaux pour l’apparition d’un cylindre virtuel14, des cylindres rotatifs interchangeables15 et des bandes à contraste élevé (noir et blanc) affichées sur quatre écrans d’ordinateur10. Les principales limitations associées à ces appareils et méthodes d’essai OKN comprennent la grande taille de l’équipement, le mouvement des animaux dans l’arène d’essai et l’incidence fréquente des chutes de l’animal de la plate-forme d’essai 7,11,12.
Pour minimiser les limitations ci-dessus, un nouvel appareil pour les tests OKN chez le rat a été développé. Cet appareil est relativement peu coûteux, s’est avéré efficace, facile à utiliser et permet d’évaluer la fonction visuelle (Figure 1). L’appareil utilise deux écrans de tablette pour afficher les stimuli visuels OKN (logiciel de visualisation) à différentes fréquences spatiales. Une micro-caméra est utilisée pour enregistrer les activités de l’animal pendant les tests afin d’analyser ultérieurement les données. Dans le but de fabriquer un appareil OKN facile à installer dans les laboratoires de recherche, cette nouvelle configuration décrit les modifications critiques apportées à l’appareil de test OKN existant. Les stimuli OKN utilisés ici sont constitués de bandes noires et blanches à différentes fréquences spatiales et différentes directions de rotation (de gauche à droite ou de droite à gauche). Le composant principal de l’appareil de test OKN comprend deux écrans de tablette à écran tactile (7,9 pouces) utilisés pour afficher les stimuli OKN (Figure 2). Deux supports réglables sont utilisés pour maintenir les écrans de la tablette dans la position souhaitée. Les supports sont solidement fixés au bord d’une table d’intervention qui permet d’ajuster sa hauteur et son angle. Les rats sont placés dans un support à rats qui fait face aux écrans d’affichage. Les supports à rats sont fabriqués en tube de plastique transparent (polyméthacrylate de méthyle). Le support est fixé à un piédestal et à un support métallique pour assurer un placement stable sur la table d’intervention. La taille des tubes de retenue varie de 4 à 6 pouces de longueur et de 2,5 à 3 pouces de diamètre, selon la taille des rats utilisés. La distance entre le rat et l’écran d’affichage est ajustée en changeant la position du support pour rat. Le support pour rats aide à maintenir une exposition continue de la tête du rat vers les écrans d’affichage et réduit ses mouvements pendant les tests. Une micro-caméra est utilisée pour enregistrer les réponses de suivi de la tête. Les défauts de cette nouvelle configuration incluent des taux de rafraîchissement différents pour l’écran et la possibilité d’illusions d’optique lors de l’utilisation de bandes étroites. Cependant, ces problèmes peuvent être considérés comme courants associés à une configuration OKN sur ordinateur. En plus des problèmes ci-dessus, dans la configuration actuelle, les rats ne sont pas testés à l’aide d’un cylindre virtuel14 qui influence la réponse optimale de l’OKN. La nouveauté de cette méthode réside dans la technique et l’appareil dans lesquels la méthode est employée. Cette technique peut être facilement mise en place dans les laboratoires de recherche pour une mesure fiable de l’acuité visuelle chez les rongeurs.