Le présent protocole décrit une méthode pour extraire les vésicules extracellulaires du sang périphérique et des tissus solides avec profilage ultérieur des antigènes de surface et des cargaisons de protéines.
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Article de méthode
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Le présent protocole décrit une méthode pour extraire les vésicules extracellulaires du sang périphérique et des tissus solides avec profilage ultérieur des antigènes de surface et des cargaisons de protéines.
Les vésicules extracellulaires (VE) circulantes et résidentes dans les tissus représentent des cibles prometteuses en tant que nouveaux biomarqueurs théranostiques, et elles apparaissent comme des acteurs importants dans le maintien de l’homéostasie de l’organisme et la progression d’un large éventail de maladies. Alors que les recherches actuelles se concentrent sur la caractérisation des exosomes endogènes d’origine endosomale, les microvésicules qui s’échappent de la membrane plasmique ont attiré de plus en plus d’attention dans les domaines de la santé et de la maladie, qui se caractérisent par une abondance de molécules de surface récapitulant la signature membranaire des cellules mères. Ici, une procédure reproductible est présentée basée sur la centrifugation différentielle pour extraire et caractériser les VE du plasma et des tissus solides, tels que l’os. Le protocole décrit en outre le profilage ultérieur des antigènes de surface et des cargaisons protéiques des véhicules électriques, qui sont donc traçables pour leurs dérivations et identifiés avec des composants liés à la fonction potentielle. Cette méthode sera utile pour l’analyse corrélative, fonctionnelle et mécaniste des VE dans les études biologiques, physiologiques et pathologiques.
Des vésicules extracellulaires (VE) ont été proposées pour définir les structures extracellulaires enfermées dans la bicouche lipidiquelibérée par les cellules 1, qui jouent un rôle important dans divers événements physiologiques et pathologiques2. Les VE libérés par les cellules saines peuvent être divisés en deux catégories principales, à savoir les exosomes (ou petits VE) formés par une voie de trafic endocytaire intracellulaire3 et les microvésicules (ou gros VE) développées par le bourgeonnement vers l’extérieur de la membrane plasmique de la cellule4. Alors que de nom....
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Les expériences sur les animaux ont été réalisées conformément aux lignes directrices du Comité institutionnel de soin et d’utilisation des animaux de la quatrième Université médicale militaire et aux directives ARRIVE. Pour la présente étude, des souris C57Bl/6 âgées de 8 semaines (aucune préférence pour les femelles ou les mâles) ont été utilisées. Les étapes de l’isolement des VE plasmatiques et tissulaires sont illustrées à la figure 1. Le plasma est pris comme représentant pour décrire la procédure d’isolation EV des fluides corporels. L’os maxillaire est pris comme représentant pour expliquer la procédure d’isolement EV des tissus s....
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Selon le flux de travail expérimental, les VE peuvent être extraits du sang périphérique et des tissus solides (Figure 1). L’os maxillaire d’une souris âgée de 8 semaines est d’environ 0,1 ± 0,05 g, et environ 300 μL de plasma peuvent être prélevés sur la souris. En suivant les étapes du protocole, 0,3 mg et 3 μg de VE peuvent être collectés, respectivement. Comme analysé par TEM et NTA, les caractéristiques morphologiques typiques des VE sont des vésicules membranaires rondes en forme de co.......
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Lors de l’étude des caractéristiques, du devenir et de la fonction des véhicules électriques, il est crucial d’isoler les véhicules électriques à haut rendement et à faible contamination. Diverses méthodes existent pour extraire les VE, telles que la centrifugation par gradient de densité (DGC), la chromatographie d’exclusion de taille (SEC) et les tests d’immunocapture 4,20. Ici, l’une des méthodes les plus couramment utilisées, la centrifugation différentielle,.......
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Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.
Ce travail a été soutenu par des subventions de la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (32000974, 81870796, 82170988 et 81930025) et de la China Postdoctoral Science Foundation (2019M663986 et BX20190380). Nous sommes reconnaissants de l’aide du Centre national expérimental de démonstration de l’enseignement de la médecine de base (AMFU).
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| 4 % de paraformaldéhyde ; | Biosharp | 143174 | Microscope électronique à transmission |
| Alexa fluor 488 Anticorps secondaire anti-chèvre | Yeason | 34306ES60 | Cytométrie en flux |
| Alexa fluor 488 Anticorps secondaire anti-lapin | Invitrogen | A11008 | Cytométrie |
| en flux Anticorps anti-CD18 | Abcam | ab131044 | Cytométrie en flux |
| Anticorps anti-CD81 | Abcam | ab109201 | Western blot |
| Anticorps anti-CD9 | Huabio | ET1601-9 | Western blot |
| Anticorps anti-mitofline | Abcam | ab110329 | Western blot |
| APOA1 Rabbit pAbAb | Abclone | A14211 | Western blot |
| BCA protein assay kit | TIANGEN | PA115 | Western blot |
| BLUeye Prestained Protein Ladder | Sigma-Aldrich | 94964-500UL | Western blot |
| Albumine sérique bovine | MP Biomedical | 218072801 | Western blot |
| Anticorps anti-cavéoline-1 | Santa Cruz Biotechnology | sc-53564 | Western blot |
| CellMask Coloration de membrane de plasma orange | Invitrogen | C10045 | Cytométrie en flux |
| Chimiluminescence | Amersham Biosciences | N/A | blot |
| Ciseaux opératoires incurvés | JZ Instrument chirurgical | J21040 | EV |
| Isolation Balance électronique | Zhi Ke | ZK-DST | EV |
| Spectrophotomètre Epoch | BioTek | N/A | Western blot |
| Tubes Eppendorf | Eppendorf | 3810X | EV |
| isolation Flotillin-1 anticorps | PTM BIO | PTM-5369 | Western blot |
| Système d’imagerie sur gel | Tanon | 4600 | Western blot |
| Golgin84 | Novus | nbp1-83352 | |
| Western blot Grids - Formvar/Carbon Coated - Cuivre 200 mesh | Polysciences | 24915 | Microscope électronique à transmission |
| Heparine Solution | StemCell ; | 7980 | Isolement EV |
| Liberase Research Grade | Sigma-Aldrich | 5401127001 | EV isolement |
| Pince à épiler microscopique | JZ Instrument chirurgical | JD1020 | Isolement EV |
| Cytomètre en flux NovoCyte | ACEA | N/A | Cytométrie en flux |
| Omni-PAGE Hepes-Tris Gels Hepes 4~20 %, 10 puits | Epizyme | LK206 | Western blot |
| OSCAR( D-19) | Santa Cruz Biotechnology | SC-34235 | Cytométrie en flux |
| PBS (2x) | ZHHC | PW013 | Western blot |
| Pentobarbital sodique | Sigma-Aldrich | 57-33-0 | Anesthésie |
| Peroxydase AffiniPure Goat Anti-Mouse IgG (H+L) | Jacson | 115-035-003 | blot |
| Peroxydase AffiniPure Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) | Jacson | 111-035-003 | Transfert Western |
| Acide phosphotungstique | RHAWN | 12501-23-4 | Microscope électronique à transmission |
| PKM2(d78a4) xp rabbit ; mab ; | Signalisation cellulaire | 4053t | Western blot |
| Film de polyéthylène (PE) | Xiang yi | 200150055 | Microscope électronique à transmission |
| Membranes de fluorure de polyvinylidène ; | Roche | 3010040001 | Western blot |
| Inhibiteurs de protéase | Roche | 4693132001 | Western blot |
| Anticorps recombinant anti-DPI | Abcam | ab129199 | Western blot |
| Tampon de lyse RIPA | Beyotime | P0013 | Western blot |
| SDS-PAGE tampon de chargement (5x) | Cwbio | CW0027S | Western blot |
| Taille billes | Invitrogen | F13839 | Cytométrie en flux |
| Microcentrifugeuses de table à grande vitesse | Hitachi | CT15E | EV Isolation |
| Microscope électronique à transmission | HITACHI | H-7650 | Microscope électronique à transmission |
| Tween-20 | MP Biomedicals | 19472 | Mélangeur vortex Western blot |
| Genie | Scientific Industries | SI0425 | EV isolation |
| ZetaView BASIC NTA - Suivi des nanoparticules Microscope vidéo PMX-120 | Particle Metrix | N/A | Analyse du suivi des nanoparticules |
| &alpha ;-actinine-4 Rabbit mAbclone | A3379 | Western blot | |
| &beta ;-actin | Cwbio | CW0096M | Western blot |
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