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Un protocole de dosage en fosse simple pour visualiser et quantifier la résorption ostéoclastique in vitro

DOI:

10.3791/64016

June 16th, 2022

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Erratum

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Formal Correction: Erratum: A Simple Pit Assay Protocol to Visualize and Quantify Osteoclastic Resorption In Vitro
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Summary

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Nous présentons ici une procédure de dosage simple et efficace pour les essais en fosse de résorption utilisant des plaques de culture cellulaire revêtues de phosphate de calcium.

Abstract

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Les ostéoclastes matures sont des cellules multinucléées qui peuvent dégrader les os par la sécrétion d’acides et d’enzymes. Ils jouent un rôle crucial dans diverses maladies (p. ex. ostéoporose et cancer des os) et sont donc des objets de recherche importants. In vitro, leur activité peut être analysée par la formation de fosses de résorption. Dans ce protocole, nous décrivons une méthode simple de dosage en fosse utilisant des plaques de culture cellulaire revêtues de phosphate de calcium (CaP), qui peuvent être facilement visualisées et quantifiées. Des précurseurs d’ostéoclastes dérivés de cellules mononucléaires du sang périphérique humain (PBMC) ont été cultivés sur les plaques revêtues en présence de stimuli ostéoclastogènes. Après 9 jours d’incubation, les ostéoclastes ont été fixés et colorés pour l’imagerie par fluorescence tandis que le revêtement CaP a été contre-coloré par la calcéine. Pour quantifier la zone résorbée, le revêtement CaP sur les plaques a été coloré avec 5% d’AgNO3 et visualisé par imagerie en champ clair. La zone de la fosse de résorption a été quantifiée à l’aide d’ImageJ.

Introduction

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Les ostéoclastes (OC) sont des macrophages spécifiques aux tissus dérivés de cellules souches hématopoïétiques (CSH), jouant un rôle central dans le remodelage osseux avec les ostéoblastes1. Les troubles osseux induits par les hormones sexuelles, immunologiques et malins qui détruisent les os de manière systémique ou locale sont dus à une activité ostéoclastique excessive, y compris l’ostéoporose liée à la ménopause2, la polyarthrite rhumatoïde3, la maladie parodontale4, la maladie osseuse myélomateuse5 et les métastases osseuses ostéolytiques

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Protocol

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Le protocole a été examiné et approuvé par le comité d’éthique local (numéro d’approbation 287/2020B02).

1. Préparation de plaques de culture cellulaire revêtues de phosphate de calcium

  1. Préparation de la solution mère de calcium (25 mM CaCl2·2H2O, 1,37 mM NaCl, 15 mM MgCl2·6H2O dans le tampon Tris)
    1. Préparez un tampon Tris de 1,0 M et ajustez le pH à 7,4 à l’aide de 1 M HCl.
    2. Installez un bécher en verre sur un agitateur magnétique et ajoutez 100 mL de tampon Tris de 1,0 M.
    3. Peser 0,368 g de CaCl2·2H2O, 8,0 g de NaCl et 0,....

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Results

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Le revêtement de phosphate de calcium sur le fond des plaques de culture cellulaire a été effectué en deux étapes de revêtement comprenant une pré-calcification de 3 jours et une étape de calcification de 1 jour. Comme le montre la figure 1, du phosphate de calcium uniformément réparti a été obtenu au fond des plaques de 96 puits. Le revêtement a très bien adhéré au fond après les étapes de lavage effectuées.

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Discussion

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Nous décrivons ici une méthode simple et fiable pour un test de résorption ostéoclastique utilisant des CO dérivés et développés in vitro à partir de PBMC. Les plaques de culture cellulaire revêtues de CaP utilisées peuvent être facilement préparées et visualisées à l’aide de matériaux disponibles en laboratoire. En plus des PBMC non triés adoptés dans ce protocole, les OC générés à partir de cellules monocytaires murines21 et de cellules macrophages de moelle osseuse17<.......

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Disclosures

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Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Acknowledgements

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Ce travail a été partiellement financé par le China Scholarship Council [CSC n° 201808440394]. W.C. a été financé par le SCC.

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
AgNO3SERVA Electrophoresis GmbH35110Nitrate d’argent
a-MEMGibco32561-029MEM alpha, GlutaMAX, sans nucléosides
amphotéricine BBiochrom03-028-1BAmphotéricine B Solution
CaCl2Sigma-Aldrich21097-50GChlorure de calcium dihydraté
CalceinSigma-AldrichC0875Calcein
FBSSigma-AldrichF7524sérum fœtal bovin
FicollCytiva17144002Ficoll Paque Plus
Tampon de fixationBiolegend420801Paraformaldéhyde
HClMerk1.09057.1000Acide chlorhydrique
Hoechst 33342PromokinePK-CA707-40046Hoechst 33342
M-CSFPeproTech300-25Humain recombinant M-CSF
MgCl2Sigma-Aldrich7791-18-6Chlorure de magnésium
Na2HPO4AppliChem GmbHA2943,0250di- Hydrogénophosphate de sodium anhydre
NaClMerkS7653-250Gchlorure de sodium
NaHCO3MerkK15322429Bicarbonate de soude
PBSLonza17-512FSolution saline tamponnée au phosphate de Dulbecco (1X), DBPS sans calcium et magnésium
Pen-StrepLonzaDE17-602EMélange pénicilline-streptomycine
Phalloidin-Alexa Fluor 546InvitrogenA22283Alexa Fluor 546 Phalloïdine
RANKLPeproTech310-01Ligand sRANK humain recombinant (dérivé d’E. coli)
TrisSigma-Aldrich93362Tris(hydroxyméthyl)aminométhane
Triton X-100Sigma-AldrichT8787Alkyl Phényl Polyéthylène Glycol
TrypLE ExpressGibco12605010Enzymes de dissociation cellulaire recombinante

References

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  1. Jacome-Galarza, C. E., et al. Developmental origin, functional maintenance and genetic rescue of osteoclasts. Nature. 568 (7753), 541-545 (2019).
  2. Moller, A. M. J., et al. Aging and menopause reprogram osteoclast precursors for aggressive bone....

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Pit AssayOsteoclastic ResorptionCalcium Phosphate CoatingOsteoclast DifferentiationPBMC IsolationResorption Pit QuantificationVon Kossa StainingFluorescence ImagingM CSF RANKLImageJ Analysis

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