Le présent protocole décrit une procédure simple pour acquérir et analyser la topographie des potentiels évoqués visuels épicrâniens avec 32 électrodes à couche mince multicanaux chez la souris.
Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.
Article de méthode
Le présent protocole décrit une procédure simple pour acquérir et analyser la topographie des potentiels évoqués visuels épicrâniens avec 32 électrodes à couche mince multicanaux chez la souris.
Les potentiels évoqués visuels (VEP) permettent de caractériser la fonction visuelle dans des modèles murins précliniques. Diverses méthodes existent pour mesurer les VEP chez la souris, de l’EEG non invasif, des électrodes uniques sous-cutanées et de l’ECoG aux enregistrements intracorticaux multicanaux du cortex visuel entièrement invasifs. Il peut être utile d’acquérir une caractérisation topographique globale au niveau de l’EEG des réponses visuelles avant les mesures locales de microélectrodes intracorticales dans des contextes expérimentaux aigus. Par exemple, un cas d’utilisation consiste à évaluer les changements intermodaux globaux de la topographie VEP dans des modèles de surdité avant d’étudier ses effets à un niveau intracortical local. L’EEG épicraniel multicanal est une méthode robuste pour acquérir une telle mesure globale de l’activité visuelle corticale. L’EEG épicranial multicanaux fournit des résultats comparables grâce à une approche standardisée et cohérente pour, par exemple, identifier les changements intermodaux, pathologiques ou liés à l’âge dans la fonction visuelle corticale. La présente étude présente une méthode permettant d’obtenir la distribution topographique des VEP évoqués par flash avec un réseau d’électrodes EEG à couche mince à 32 canaux chez des souris anesthésiées. Combinée à une analyse dans le domaine temporel et fréquentiel, cette approche permet une caractérisation et un dépistage rapides de la topographie et des propriétés visuelles de base de la fonction visuelle corticale de la souris, qui peuvent être combinées avec divers contextes expérimentaux aigus.
Les souris sont un modèle préclinique des processus dégénératifs de la vision et des maladies ophtalmologiques 1,2,3,4. Les potentiels évoqués visuels (VEP) sont couramment utilisés pour mesurer la fonction visuelle corticale et, par exemple, pour évaluer la dégénérescence visuelle dans des modèles pathologiques 5,6. La latence VEP, le temps de conduction, l’amplitude, les caractéristiques multifocales ou l’acuité spatiale des p....
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Tous les animaux ont été manipulés et logés conformément aux normes allemandes (TierSchG, BGBl. I S. 1206, 1313) et de l’Union européenne (STE 123 ; Directive 2010/63/UE) pour la recherche sur les animaux. Les expériences sur les animaux ont été approuvées par les autorités allemandes (Office du Land de Basse-Saxe pour la protection des consommateurs et la sécurité alimentaire, LAVES) et ont été surveillées par le responsable du bien-être animal de l’université. Une souris mâle C57BL/6J âgée de 3 mois a été utilisée pour la présente étude.
1. Détails sur l’animal
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
L’enregistrement des potentiels évoqués visuels avec l’EEG multicanal permet d’évaluer la topographie des amplitudes, des latences ou des composantes de fréquence VEP chez la souris. La figure 2A montre un exemple de topographie VEP évoquée par flash enregistrée avec un EEG épicraniel à 32 canaux d’une souris mâle C57BL/6J âgée de 3 mois. L’activité visuelle évoquée la plus forte se produit dans la région occipitale au-dessus du cortex visuel.
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Cet article décrit une méthode d’enregistrement de l’EEG multicanal épicrânien avec des électrodes à couche mince et comment acquérir une représentation topographique cohérente des potentiels évoqués visuels chez la souris. Ici, nous avons montré de manière exemplaire la stimulation par flash binoculaire, mais cette approche peut également être appliquée avec d’autres types de stimuli visuels (c’est-à-dire monoculaires, réseaux spatiaux, champ visuel focal) en utilisant, par exemple, un .......
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Les auteurs ne déclarent aucun intérêt financier concurrent ou autre conflit d’intérêts.
Ce travail a été soutenu par la Fondation allemande pour la recherche (Deutsche Forschungsgemeinschaft, Cluster of Excellence 2177 « Hearing4all », numéro de projet 390895286).
....Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| Bepanthen 5 % Dexpantheol | Bayer | Gel ophtalgique | |
| Logiciel guépard 5.11 | Neuralnyx | Version 5.11 | Logiciel d’enregistrement des signaux neurophysiologiques |
| Digital Lynx SX | Neuralynx | Digital Lynx 16SX | Système d’enregistrement |
| ECG amplificateur différentiel | Otoconsult | WDA2 V1.0 | |
| Rasoir électrique | Aesculap | GT420 | |
| Porte-électrode | TSE Systems | 430005-HE | |
| Lampe d’examen | Heine | HL 5000 | Lampe à source de lumière froide |
| Coussin chauffant + Système de contrôle de la température | CWE | TC-1000 Souris | |
| Histoacryl 0,5 mL | B.Braun | Adhésif tissulaire | |
| Lampe chauffante infrarouge ; | Sanitas | SIL 06 | |
| Kétamine 10 % ; | WDT | Ketaminhydrochlorid | |
| LED stroboscope ; | Monarch | Nova Strobe PBL | Stimulation visuelle |
| Matlab 2021a | The Mathworks | 2021a | Contrôle et analyse des stimuli |
| Moria Vessel Clamp | Fine Science Tools | 18320-11 | |
| Électrode EEG de souris ; | NeuroNexus | H32 (réticulaire) | Électrode EEG à 32 canaux. Épaisseur : 20 &mu ; m; longueur : 8,6 mm ; Largeur 6,8 mm. Sites Platine : 500 &mu ; m de diamètre Cadre |
| de souris ; | sur mesure Informations disponibles sur demande | ||
| Dispositif d’E/S multifonction | National Instruments | PCIe-6353 avec BNC 2090A | Génération, sortie et déclenchement de stimulus analogiques |
| NaCl 0,9 % | B.Braun | Neuralynx HS36 isotonique, stérile et apyrogène | |
| Neuralynx | HS-36 | Headstage | |
| Connecteur de sonde Neuronexus | Neuralynx | ADPT-HS36-N2T-32A | Connecteur d’électrode |
| Oscilloscope | Tektronix | TDS 2014B | |
| Progent Nettoyant intensif | Menicon | Solution décapante et désinfectante pour lentilles rigides perméables aux gaz | |
| Enregistrement PC ; | HP | HP Z800 | Recording PC |
| Rimadyl (Carprofène) | Zoetis | Carprofène | |
| Huile de silicium M 1000 | Carl Roth | 4045.1 | |
| Fil d’argent ; | Science Products | AG-8W | Diamètre 203 µ ; m; ECG et électrode de référence |
| Chambre d’insonorisation | Acoustique | ||
| Micromanipulateur stéréotaxique | TSE Systems | 430005-M/P | Pour le placement des électrodes EEG |
| PC de stimulation Dell | Dell Precision T5810 | PC de stimulation | |
| Microscope chirurgical | Zeiss | Op-Mi | |
| Bande chirurgicale | 3M | 1527-0 | 1,25 cm x 9,1 m |
| Thilo-Tears 3 mg/g | Alcon Pharma GmbH | Gel ophtalgique | |
| Vaselin Lichtenstein | Winthrop | Pommade à la vaseline blanche | |
| Xylazin 2 % ; ; | Bernburg | Xylazinehydrochlorure | |
| Xylocaïne en spray (10 mg/bouffée) | Aspen | Lidocaïne |
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Cet article a été publié
Vidéo bientôt disponible