Method Article

Reconstitution de l’assemblage de septines au niveau des membranes pour étudier les propriétés et les fonctions biophysiques

DOI:

10.3791/64090

July 28th, 2022

In This Article

Summary

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La reconstitution sans cellules a été un outil clé pour comprendre l’assemblage du cytosquelette, et les travaux de la dernière décennie ont établi des approches pour étudier la dynamique des septines dans des systèmes minimaux. Voici trois méthodes complémentaires pour observer l’assemblage de septines dans différents contextes membranaires : les bicouches planes, les supports sphériques et les supports de tiges.

Abstract

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La plupart des cellules peuvent sentir et changer leur forme pour effectuer des processus cellulaires fondamentaux. Chez de nombreux eucaryotes, le cytosquelette septine fait partie intégrante de la coordination des changements de forme tels que la cytocinèse, la croissance polarisée et la migration. Les septines sont des protéines formant des filaments qui s’assemblent pour former diverses structures d’ordre supérieur et, dans de nombreux cas, se trouvent dans différentes zones de la membrane plasmique, notamment dans les régions de courbure positive à l’échelle du micron. La surveillance du processus d’assemblage de la septine in vivo est entravée par les limites de la microscopie optique dans les cellules, ainsi que par la complexité des interactions avec les membranes et les éléments cytosquelettiques, ce qui rend difficile la quantification de la dynamique de la septine dans les systèmes vivants. Heureusement, il y a eu des progrès substantiels au cours de la dernière décennie dans la reconstitution du cytosquelette de septine dans un système sans cellule pour disséquer les mécanismes contrôlant l’assemblage de la septine à des résolutions spatiales et temporelles élevées. Les principales étapes de l’assemblage de la septine comprennent l’association et la dissociation de l’hétérooligomère de septine avec la membrane, la polymérisation en filaments et la formation de structures d’ordre supérieur par le biais d’interactions entre filaments. Ici, nous présentons trois méthodes pour observer l’assemblage de septine dans différents contextes: les bicouches planes, les supports sphériques et les supports de tige. Ces méthodes peuvent être utilisées pour déterminer les paramètres biophysiques des septines à différents stades d’assemblage: en tant qu’octamères simples liant la membrane, en tant que filaments et en tant qu’assemblages de filaments. Nous utilisons ces paramètres associés à des mesures d’échantillonnage de courbure et d’adsorption préférentielle pour comprendre comment la détection de courbure fonctionne à diverses échelles de longueur et de temps.

Introduction

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Les formes des cellules et beaucoup de leurs compartiments internes dépendent des membranes lipidiques qui les entourent. Les membranes sont des structures viscoélastiques qui peuvent être déformées par des interactions avec les protéines, le tri des lipides et l’action des forces internes et externes pour générer une variété de formes 1,2,3,4. Ces formes sont souvent décrites en termes de courbure de la membrane. Les cellules utilisent une suite diversifiée de protéines capables de s’assembler préférentiellement sur des courbures membranai....

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Protocol

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REMARQUE: La formation de bicouches lipidiques supportées nécessite la préparation de petites vésicules unilamellaires monodispersées (VUS). Veuillez vous référer à un protocole24 publié précédemment sur la formation de SUV. En bref, tous les VUS sont formés par sonication par sonde pendant 12 min au total à 70% d’amplitude via des périodes de sonication de 4 min suivies de périodes de repos de 2 min dans l’eau glacée. Les solutions SUV doivent être bien clarifiées et monodispersées en taille. Les distributions de taille des VUS peuvent être mesurées, par exemple, par diffusion dynamique de la lumière25.

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Results

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Après la préparation de chaque SLB, les septines ou la protéine d’intérêt peuvent être incubées avec le support souhaité et imagées via TIRFM, microscopie confocale ou SEM. Les résultats présentés ici utilisent des septines exprimées de manière recombinante et purifiées à partir d’E. coli17. En utilisant TIRFM sur des SLB planaires, il est possible de déterminer la longueur des filaments et leur flexibilité, de mesurer les coefficients de diffusion et d’observer l’assemblage dans le temps.......

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Discussion

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Les membranes cellulaires prennent de nombreuses formes, courbures et propriétés physico-chimiques différentes. Afin d’étudier la machinerie à l’échelle nanométrique à travers laquelle les cellules construisent des assemblages à l’échelle micrométrique, il est nécessaire de concevoir des systèmes de reconstitution minimaux de mimétiques membranaires. Ce protocole présente des techniques qui contrôlent avec précision à la fois la courbure et la composition de la membrane tout en permettant à l’utilisateur de prendre facil.......

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Disclosures

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Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts.

Acknowledgements

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Ce travail a été soutenu par le National Institutes of Health (NIH) Grant no. R01 GM-130934 et National Science Foundation (NSF) Grant MCB-2016022. B.N.C, E.J.D.V. et K.S.C. ont été soutenus en partie par une subvention de l’Institut national des sciences médicales générales sous le prix T32 GM119999.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Tubes PCR de 0,2 mL avec capuchon plat, NaturalWatson137-211C(EX)
Tubes à faible adhérence de 0,5 mLUSA Scientific1405-2600
Bêta-mercaptoéthanol (BME)Sigma-AldrichM6250-100ML
Albumine sérique bovine (BSA)Sigma-AldrichA4612-25G
Coverglass pour la fabrication de lamelles PEGyléesThermo Scientific152450Richard-Allan Scientific SLIP-RITE Cover Glass 24x50 #1.5
DOPCAvanti Polar Lipids850375
Egg Liss Rhodamine PEAvanti Polar Lipids810146
EMS Glutaraldehyde Aqueux 25 %, EM GradeVWR16220
EMS Tampon de cacodylate de sodiumVWR11652
Éthanol, 200 proofFisher Scientific04-355-223EA
HEPESSigma AldrichH3375-1KG
HexamethyldisilazaneSigma-Aldrich440191
Chlorure de magnésiumVWR7791-18-6
Méthylcellulose 4000cpSigma-AldrichM052-100G
Lambeaux en microverre pour bicouches planesMatsunamiDiscontinué22x22
Mini centrifugeuse
Microsphères de silice non fonctionnaliséesBangs Laboratories, Inc.Dépend de la taille : SS0200*-SS0500*Silice en suspension aqueuse
Adhésif optiqueNorland ThorlabsNOA 68Adhésif flexible pour verre ou plastiques
Tétroxyde d’osmiumMillipore Sigma20816-12-0
ParafilmVWR52858-000
Nettoyeur plasmaPlasmaEtch PE-25Tension : 120V, 60Hz. Courant : 15 AMPÈRES
Chlorure de potassiumVWR0395-1kg
Verre de protection rond, #1.5 12mm  ;   ;VWR64-0712
Bain sonicateurBranson1510R-MTNettoyeur à ultrasons Bransonic. 50-60 Hz. Sortie : 70W
Soy PIAvanti Polar Lipids840044
Centrifugeuse de tableEppendorf22331
Lampe UVSpectrolineENF-260C115 Volts, 60 Hz, 0.20 AMPS
WhatmanGlass Papier filtre en microfibreVWR28455-03042,5 mm de diamètre, grade GF/C

References

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  1. Zimmerberg, J., Kozlov, M. M. How proteins produce cellular membrane curvature. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 7 (1), 9-19 (2006).
  2. Parthasarathy, R., Groves, J. T. Curvature and spatial organization in biological membranes. Soft Matter. 3 (1), 24-33....

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Septin AssemblyMembrane ReconstitutionSupported Lipid BilayersProtein Membrane InteractionSeptin Filament FormationCurvature SensingTIRF MicroscopyConfocal MicroscopyLiposome PreparationBiophysical Properties

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