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Les petites vésicules extracellulaires (sEV) peuvent être libérées de tous les types de cellules et transporter des protéines, de l’ADN et de l’ARN. Les molécules de signalisation servent d’indicateurs de l’état physiologique et pathologique d’une cellule. Cependant, il n’existe pas de méthode standard pour l’isolement des EV, ce qui empêche l’identification des biomarqueurs en aval et les études d’intervention médicamenteuse. Dans cet article, nous fournissons un protocole détaillé pour l’isolation et la purification de 50-200 nm sEV par un trieur de cellules d’écoulement. Pour cela, une buse de 50 μm et une pression de fluide de gaine de 80 psi ont été sélectionnées pour obtenir un bon taux de tri et un flux latéral stable. Des microsphères de polystyrène de taille standard ont été utilisées pour localiser des populations de particules de 100, 200 et 300 nm. Avec une optimisation supplémentaire du seuil de déclenchement de la tension, du gain et de la diffusion directe (FSC), le signal sEV pourrait être séparé du bruit de fond. Ces optimisations fournissent un panel de paramètres de tri critiques qui permet d’obtenir une population représentative de sEV en utilisant uniquement FSC vs diffusion latérale (SSC). La méthode d’isolation basée sur la cytométrie en flux permet non seulement une analyse à haut débit, mais permet également une classification synchrone ou une analyse protéome de sEV basée sur l’expression du biomarqueur, ouvrant de nombreuses applications de recherche en aval.