Intubation, cathéter veineux central et placement de cathéters artériels chez le porc pour la recherche translationnelle en chirurgie de transplantation abdominale

Résumé

Pour obtenir les meilleurs résultats possibles, les chirurgiens effectuant des expériences de recherche translationnelle doivent maîtriser l’intubation et le placement des lignes vasculaires. Cet article décrit les techniques utilisées par le Toronto Organ Preservation Laboratory pour effectuer ces procédures.

Résumé

Les modèles de recherche chirurgicale translationnelle chez le porc sont essentiels pour développer des protocoles précliniques sûrs. Cependant, le succès des chirurgies expérimentales ne repose pas uniquement sur les compétences chirurgicales de l’équipe de recherche ; Les procédures de soins et de gestion périopératoires, telles que l’intubation, le cathéter veineux central et le placement du cathéter artériel, sont nécessaires et de la plus haute importance pour des résultats d’expérience favorables. Comme il est rare que les équipes de recherche aient des anesthésiologistes ou tout autre personnel que l’équipe chirurgicale, l’équipe chirurgicale impliquée dans la recherche translationnelle doit acquérir et/ou développer les compétences pour effectuer les soins périopératoires. Le but de cet article est de montrer les techniques d’intubation, de cathéter veineux central et de placement de cathéters artériels utilisées et perfectionnées au Laboratoire de préservation d’organes de Toronto au cours des 10 dernières années, afin de servir de référence pour les futurs chercheurs qui se joindront à cette équipe ou à tout autre laboratoire effectuant des protocoles de recherche translationnelle en transplantation porcine et/ou abdominale.

Introduction

Les modèles expérimentaux de porcs sont souvent utilisés dans l’étude des maladies humaines en raison de leurs propriétés anatomiques et physiologiques similaires. Ces modèles sont cruciaux dans le développement de protocoles précliniques sûrs, mais ils sont également soumis à des restrictions légales et éthiques¹. L’utilisation de porcs pour la recherche doit se faire dans les meilleures conditions possibles afin d’éviter des pertes inutiles d’animaux et des souffrances dues à des complications anesthésiques sans rapport avec le projet de recherche.

Les techniques et les compétences préopératoires telles que l’intubation, la mise en place d’un cathéter veineux central et la mise en place d’un cathéter artériel sont essentielles pour obtenir des résultats réussis et reproductibles.

Chaque animal subissant une anesthésie générale pour une intervention chirurgicale doit être intubé pour maintenir une voie respiratoire ouverte, permettant une ventilation assistée et évitant l’aspiration bronchologique². Les positions d’intubation les plus courantes chez les porcs sont le décubitus dorsal, latéral et sternal ^3,4. Le décubitus sternal a tendance à être plus facile pour le personnel formé à l’intubation humaine³, ce qui est le cas dans ce centre de recherche.

Un bon accès vasculaire est essentiel pour l’administration de liquides, de médicaments et de prélèvements pendant et après la chirurgie. L’utilisation de vasopresseurs est fréquente lors des chirurgies de transplantation abdominale en raison de l’instabilité hémodynamique résultant de la lésion d’ischémie-reperfusion. La perfusion de vasopresseurs à travers une ligne périphérique peut provoquer des lésions tissulaires locales en raison des effets vasoconstricteurs⁵. Le placement d’un cathéter veineux central permet d’infuser de grandes quantités de liquides et de vasoppresors. Nous préférons une technique percutanée assistée par fil-guide pour la mise en place du cathéter central, car elle minimise les dommages aux tissus mous et aux vaisseaux⁶.

La stabilité hémodynamique de l’animal pendant l’intervention chirurgicale est requise, et la pression artérielle est le paramètre le plus généralement surveillé à cet effet⁷. Une ligne artérielle permet une mesure continue de la pression artérielle, ce qui est plus précis que la mesure non invasive traditionnelle⁸, car les techniques non invasives sous-estiment les valeurs pendant l’hypertension et les surestiment pendant l’hypotension ^7,8. Une lecture précise de la pression artérielle au cours de ces expériences est fondamentale pour pouvoir contrôler la quantité de liquides et de vasopresseurs qui doivent être administrés au porc.

Le Toronto Organ Preservation Laboratory utilise des modèles porcins depuis plus de 10 ans et a normalisé ces procédures au fil des ans avec d’excellents résultats. Bien que l’on puisse trouver d’autres approches dans la littérature pour les mêmes procédures, l’objectif de cet article est de présenter les techniques développées et perfectionnées au fil des ans dans nos installations.

Protocole

Tous les animaux utilisés pour cette étude ont reçu des soins sans cruauté conformément aux « Principes de soins aux animaux de laboratoire » formulés par la National Society for Medical Research et au « Guide for the Care of Laboratory Animals » publié par les National Institutes of Health, Ontario, Canada. Toutes les études ont été approuvées par le Comité de protection des animaux de l’Institut général de recherche de Toronto. Dans cette étude, des porcs Yorkshire mâles âgés de 11 à 12 semaines pesant de 30 à 40 kg ont été utilisés.

1. L’intubation

1. Hébergez les porcs pendant au moins 5 jours avant la procédure pour leur permettre de s’adapter à l’environnement et de réduire les niveaux de stress globaux
2. Faites jeûner le porc pendant 6 h avant l’anesthésie.
3. Anesthésier le porc à l’aide d’une injection intramusculaire (IM) de kétamine (20 mg/kg) comme anesthésique dissociatif, de midazolam (0,15 mg/kg) pour la sédation et d’atropine (0,04 mg/kg) pour réduire la salivation et les sécrétions bronchiques, dans l’établissement d’hébergement.
4. Donnez de l’O₂ et de l’isoflurane à 5 % à l’aide d’un masque une fois que le porc s’est endormi pendant au moins 5 minutes.
5. Déplacez le porc dans un chariot de transport et transférez-le à la salle d’opération (RO).
6. Placez le porc en position couchée sur la table d’opération.
7. Placez le masque de ventilation avec 2 L/min O₂ et 5 % d’isoflurane.
   REMARQUE : Assurez-vous que le porc a un effort inspiratoire.
8. Positionnez la sonde de saturation en oxygène sur l’oreille des porcs.
   REMARQUE : La sonde peut également être placée sur la langue, la queue, l’ergot³, les lèvres ou le pli inguinal.
9. Demandez à un assistant de placer les électrodes de l’électrocardiogramme et le brassard de tensiomètre.
   REMARQUE : Les électrodes sont placées dans le pli axillaire droit, le pli axillaire gauche et le pli inguinal gauche. Le brassard de tensiomètre peut être placé soit dans la patte avant, soit dans la patte arrière.
10. Vérifiez le relâchement de la mâchoire après 4-5 min de ventilation avec de l’isoflurane à 5 %.
    REMARQUE : si une résistance est notée, poursuivre la ventilation avec de l’isoflurane pendant 3 minutes supplémentaires ou jusqu’à ce que la mâchoire soit détendue.
11. Demandez à l’assistant de tenir la mandibule vers le haut, le maxillaire vers le bas et la langue à l’écart.
12. Insérez un laryngoscope avec une lame de fraisage droite le long de la ligne médiane et soulevez l’épiglotte.
    REMARQUE : Utilisez une sonde endotrachéale pour enfoncer le palais mou et permettre à l’épiglotte de remonter (Figure 1).
13. Visualisez les cordes vocales et vaporisez-les deux fois avec un spray non aérosol de lidocaïne (10 mg/dose mesurée) pour prévenir les spasmes pendant l’intubation.
14. Retirez le laryngoscope et replacez le masque à oxygène pendant 30 s.
15. Retirez le masque à oxygène, insérez la lame droite Miller le long de la ligne médiane et soulevez l’épiglotte. Insérez un tube endotrachéal de 7,0 mm au-delà des cordes vocales.
    REMARQUE : S’il y a une résistance ou un spasme des cordes vocales, répétez les étapes 1.13 et 1.14.
16. Maintenez la sonde endotrachéale en place et faites glisser le laryngoscope et le stylet.
17. Gonflez le ballonnet du tube endotrachéal avec 5 à 8 cc d’air et connectez-le à un capteur de capnométrie pour assurer le bon placement du tube.
    REMARQUE : D’autres méthodes pour assurer un placement correct comprennent la recherche de pulsions thoraciques, la condensation dans le tube endotrachéal et l’écoute des bruits respiratoires bilatéraux.
18. Allumez le ventilateur et ajustez à 15-20 respirations par minute, l’isoflurane à 2 %-2,5 %, le volume courant à 10-15 ml/kg de poids corporel et la pression inspiratoire maximale entre 18-20 cmH₂O ^9,10,11.
19. Fixez le tube endotrachéal avec du ruban adhésif.
20. Appliquez un lubrifiant pour les yeux pour prévenir la sécheresse et l’ulcération pendant la procédure.
21. Assurez-vous d’une anesthésie appropriée en évaluant le tonus de la mâchoire et en ajustant l’isoflurane en conséquence. Les muscles mandibulaires rigides indiquent un niveau léger d’anesthésie³.

2. Placement du cathéter veineux central

REMARQUE : Le choix du cathéter dépend du type de modèle utilisé. Pour les modèles de survie, un cathéter qui peut être creusé à la fin de la procédure est utilisé. Pour les modèles terminaux, un modèle plus simple (voir la table des matériaux) est utilisé.

1. Après l’intubation, avec le porc en position couchée, désinfectez les deux côtés du cou avec une solution d’iode ou de chlorhexidine.
2. Préparez le cathéter en le rinçant avec 5 à 10 ml de solution saline et assurez-vous qu’il n’y a pas d’air à l’intérieur. Placez le dilatateur dans le cathéter.
3. Inspectez et testez le fil-guide pour confirmer les aspects et le fonctionnement corrects.
   REMARQUE : Le fil-guide doit se déplacer librement à l’intérieur de la gaine et ne doit présenter aucun défaut ou pli. Si une altération est constatée, remplacez le fil-guide.
4. Identifiez les trois points de repère suivants sur le cou du porc : (1) la branche caudale de la mandibule, (2) le manubrium crânien et (3) la pointe crânienne de l’épaule droite formée par le grand tubercule de l’humérus⁶ (figure 2).
5. Insérez l’aiguille de recherche attachée à une seringue de 5 ml au centre du triangle formé par les trois points de repère à un angle de 45° par rapport à la peau et dirigée vers le côté caudal, tout en tirant légèrement sur l’embolie de la seringue.
6. Une fois la veine jugulaire trouvée, retirez la seringue de l’aiguille de recherche et stabilisez l’aiguille tout en plaçant le pouce sur l’embout de l’aiguille. Assurez-vous que l’aiguille du chercheur est bien en place.
   REMARQUE : Si l’on soupçonne que le sang provenant de l’aiguille est artériel, retirez immédiatement l’aiguille et appliquez une pression pendant 5 minutes.
7. Introduisez le fil-guide dans l’aiguille du chercheur et avancez dans la veine jugulaire externe (technique de Seldinger¹²). Une résistance minimale, voire nulle, doit être rencontrée. Retirez l’aiguille du chercheur et maintenez le fil-guide en place.
   REMARQUE : Utilisez un tracé ECG pour vous assurer que le fil-guide ne pénètre pas trop profondément. Si des altérations du rythme cardiaque sont notées, retirez légèrement le fil-guide.
8. Insérez l’extrémité d’une lame à 11 lames dans le site de ponction et créez une incision (environ 0,5 cm) pour le dilatateur et le cathéter.
9. Faites passer le dilatateur et le cathéter sur le fil-guide pour dilater la peau et le tissu sous-cutané. Une fois en place, retirez le dilatateur du cathéter.
10. Aspirez à partir de la lumière du cathéter pour assurer un bon écoulement et rincez avec 5 à 10 ml de solution saline.
11. Suturez le cathéter dans la peau avec une suture en soie 0 et assurez-vous que le cathéter est bien fixé¹³.

3. Placement du cathéter artériel

REMARQUE : Le placement carotidien de la ligne artérielle est préféré car il offre une voie plus directe vers le cœur et les vaisseaux du cou sont plus grands que les vaisseaux fémoraux¹¹. De préférence, le cathéter artériel doit être placé du côté controlatéral du cathéter veineux central et sous vision directe ; Si cela n’est pas possible, il peut être placé du même côté que le cathéter veineux.

1. Faites une incision verticale de 5 à 7 cm médialement de la trachée à l’aide d’un stylo cautérisé (Figure 3).
2. Disséquer le tissu sous-cutané et le plan entre les muscles faciaux cutanés et les muscles colli¹¹.
3. Disséquer le plan facial entre la trachée et le muscle sternomastoïde pour localiser et ouvrir la gaine carotide¹¹ (Figure 4).
4. Utilisez la dissection contondante pour isoler l’artère carotide commune (Figure 5).
5. Placez deux attaches en soie 2-0 autour de l’artère carotide pour le contrôle vasculaire et attachez l’artère distale (Figure 6).
6. Placez la pince à angle droit sous l’artère.
7. Demandez à l’assistant de tenir l’attache proximale et d’insérer l’extrémité de l’aiguille d’angiocath dans l’artère carotide à un angle de 45°. Une fois qu’un éclair de sang est visible, avancez légèrement l’aiguille à un angle peu profond, puis avancez le cathéter uniquement dans l’artère.
8. Retirez l’aiguille tout en maintenant le cathéter en place.
9. Fixez le cathéter à la ligne artérielle, aspirez et rincez avec 5 à 10 ml de solution saline pour vous assurer qu’il n’y a pas de résistance.
10. Placez une attache autour du cathéter et de l’artère pour fixer le cathéter.

4. Soins après la chirurgie (modèle de survie)

1. Creusez le cathéter veineux et fixez-le au cou du porc.
2. Une fois que l’animal est stables sur le plan hémodynamique et qu’il peut être sevré des vasopresseurs, retirez le cathéter de la ligne artérielle, attachez le côté distal de l’artère carotide et vérifiez l’hémostase. Fermez la plaie avec une suture ininterrompue.
3. Déplacez le porc vers le chariot de transport et placez-le en position sternale.
4. Éteignez l’isoflurane et surveillez le porc jusqu’à ce qu’il y ait des signes de rétablissement de l’anesthésie (mouvements et respiration contre le ventilateur).
5. Éteignez le ventilateur une fois que des respirations spontanées efficaces sont notées, mais maintenez l’approvisionnement en O₂ à 2 L/min.
6. Coupez l’alimentation O₂ après 10-15 min. Le porc doit être capable de maintenir une saturation d’au moins 94 % par lui-même. Si ce n’est pas le cas, rallumez l’O₂ et réévaluez dans 5 à 10 minutes.
7. Ramenez le porc dans son enclos une fois qu’il maintient une saturation en O₂ .
   REMARQUE : Le porc doit être ramené dans son enclos avec la sonde endotrachéale en place.
8. Retirez la sonde endotrachéale une fois que des signes d’ingestion et/ou de mastication sont évidents (entre 2 et 4 heures après la fin de la chirurgie).
9. Surveillez le porc dans son enclos et ne le laissez jamais seul. Une fois que le porc est extubé et peut maintenir une position sternale, il peut être laissé sans surveillance.

Résultats

La surveillance des porcs pendant l’opération est indispensable, et les paramètres normaux attendus pendant l’opération sont indiqués dans le tableau 1 ^3,14. La durée approximative nécessaire pour effectuer chaque procédure est indiquée dans le tableau 2.

Comme mentionné précédemment, ce laboratoire effectue ces procédures depuis 10 ans. Au cours de cette période, 595 expériences sur le foie, 277 sur l...

Discussion

Chaque centre de recherche doit créer ses propres protocoles et lignes directrices pour les modèles de recherche translationnelle ; Cependant, certaines règles de base sont à suivre pour garantir des résultats réussis.

Tout d’abord, le porc doit être soumis à un examen physique dès son arrivée dans l’établissement d’hébergement. Un total de 5 à 7 jours de conditionnement est nécessaire avant la procédure pour réduire les niveaux de stress et permettre au porc ...

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article

Nom	Entreprise	Numéro de catalogue	Commentaires
Chlorure de sodium à 0,9 % pour l’irrigation, USP	Baxter	JF7124	Saline
Angiocath 16 GA 1,88 , 1,7 x 48 mm	BD	381157
Sulfate d’atropine (8 mg/20 mL - 0,4 mg/mL)	West-Ward	17733	Flacon de 20 mL
Cook TPN Ensemble de cathéther à lumière unique	Cook medical  ;	G08132	avec 10 Fr set introducteur pelable
Hickman 9.6 F mono-lumière CV cathether	Bard	600560
Laryngoscope  ;	Heine
Midazolam (5 mg/mL)	Sandoz	46237968	flacon de 10 mL
Lame Miller 4	Heine		185 mm longueur de lame
Narketan (Kétamine - 100 mg/mL)  ;	Vetoquinal	8-00223	Flacon de 50 mL  ;
Sonde trachéale nasale avec ballonnet  ; 7,0 mm I.D.  ;	Covidien	86450
Optixcare lubrifiant pour les yeux pour chiens et chats	Aventix	5914304	20 g
introducteur de gaine percutanée avec valve d’hémostase intégrée/port latéral pour utilisation -7,5 Fr. Cathéters	Arrow	SI-09880	8,5 Fr, 10 cm, 0,035 pouce Ø. Guide de fil à ressort
Tampon électrochirurgical universel : Fendu avec cordon	3M	9165
Crayon à bascule Valleylab Holster	Covidien	E2515H
Xylocaïne 10 % Spray  ;	AstraZeneca	73050036	lidocaïne (10 mg/dose)

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