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Article de méthode

Dissection de souris du système nerveux central et périphérique entier

11K vues

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DOI :

10.3791/64974

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24 février 2023

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Ici, nous présentons un protocole pour compléter la dissection des systèmes nerveux central et périphérique de souris. Les tissus disséqués sont analysés plus en détail dans des applications en aval, telles que la prise de photos grossières ou l’histologie.

Résumé

Les modèles animaux représentent le cheval de bataille du domaine des neurosciences. Malgré cela, il n’existe toujours pas aujourd’hui de protocole étape par étape pour disséquer un système nerveux complet de rongeur, ni de schéma complet le représentant qui soit disponible gratuitement. Seules des méthodes pour prélever le cerveau, la moelle épinière, un ganglion spécifique de la racine dorsale et le nerf sciatique (séparément) sont disponibles. Ici, nous fournissons des images détaillées et un schéma du système nerveux murin central et périphérique. Plus important encore, nous décrivons une procédure robuste pour effectuer sa dissection. L’étape de pré-dissection de 30 minutes permet d’isoler le système nerveux intact à l’intérieur de la vertèbre avec des muscles exempts de viscères et de peau. Une dissection de 2 à 4 heures est suivie sous un microscope de micro-dissection pour exposer la moelle épinière et les nerfs thoraciques, et enfin décoller tout le système nerveux central et périphérique de la carcasse. Ce protocole représente une avancée significative dans l’étude de l’anatomie et de la physiopathologie du système nerveux à l’échelle mondiale. Par exemple, les ganglions de la racine dorsale disséqués d’un modèle de souris de neurofibromatose de type I peuvent être traités davantage pour l’histologie afin de démêler les changements dans la progression tumorale.

Introduction

L’objectif global de cette méthode est d’isoler le système nerveux central et périphérique d’une souris en un seul morceau. Il n’existe actuellement aucun protocole permettant de disséquer l’ensemble du système nerveux d’un rongeur pour l’étudier au niveau mondial. Les neuroscientifiques utilisent généralement le nerf sciatique comme substitut de tout nerf périphérique1, et lesganglions L3 à L5 2 comme substitut de tout ganglion. En utilisant ces méthodes, il est impossible de conclure si les résultats sont spécifiques au nerf/ganglion particulier. Comme on sait qu’au moins certaines pat....

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Protocole

Les protocoles utilisés dans cette étude ont été approuvés par le Comité institutionnel des animaux de l’Université de Sherbrooke, une institution certifiée par le Conseil canadien de protection des animaux.

1. Préparation à la micro-dissection (pré-dissection)

  1. Effectuez une anesthésie avec 5 % d’isoflurane, suivie d’une euthanasie avec 2 % d’isoflurane et 10 psi de CO2 jusqu’à ce qu’il n’y ait plus de signes vitaux.
    REMARQUE : N’effectuez pas de luxation cervicale, car cela endommage la moelle épinière et les ganglions cervicaux.
  2. Placez la souris euthana....

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Résultats

Les rongeurs ont joué un rôle déterminant dans notre compréhension de la biologie du système nerveux et de la physiopathologie10. Curieusement, aucune méthode ne présente la dissection complète du système nerveux central et périphérique d’un rongeur pour évaluer l’anatomie et la variation pathologique dans un modèle en temps réel 1,2,11. La figure 1 présente un aperçu des éta.......

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Discussion

Pour éviter que les muscles et les nerfs ne se dessèchent, la carcasse doit être trempée dans du PBS toutes les 10 minutes. Lors de la luxation des membres inférieurs (étape 1.12.6), il est important de toujours avoir le plexus du nerf sciatique et la L2 en vue pour éviter de l’endommager/déchirer. Lors de la dissection du cerveau (étape 1.14.4), il est essentiel d’éviter d’aller trop loin pour ne pas endommager le cerveau. Lors de la dissection des ganglions de la racine dorsale et des .......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont déclaré aucun conflit d’intérêts.

Remerciements

JPB est un chercheur boursier FRSQ J1 et récipiendaire du Early Investigator Research Award du département de la Défense des États-Unis. LQL est titulaire d’un prix de carrière pour les scientifiques médicaux du Burroughs Wellcome Fund et de la chaire Thomas L. Shields, M.D. en dermatologie.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Mini-pince DumontFine Science Tools#11200-10
Ciseaux de Bonn supplémentairesFine Science Tools#14084-08
Formalin 10 %Fischer Scientific#22-046-361
PBS 1xBioShopCanada#PBS404.500
Pince anatomique standardFine Science Tools#91100-12
Ciseaux chirurgicauxFine Science Tools#140001-12
Ciseaux à ressort VannasKent Scientific#INS600124

Références

  1. Bala, U., Tan, K. L., Ling, K. H., Cheah, P. S. Harvesting the maximum length of sciatic nerve from adult mice: a step-by-step approach. BMC Reserach Notes. 7, 714(2014).
  2. Sleigh, J. N., Weir, G. A., Schiavo, G. A simple....

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Réimpressions et autorisations

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