Method Article

Protocole de capture-vaccination-remise en liberté pour l’immunisation des mouffettes et d’autres vecteurs de la rage contre la rage

DOI:

10.3791/65117

⸱

November 29th, 2024

 , 
1US Department of Agriculture, Animal and Plant Health Inspection Service, Wildlife Services

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ici, nous présentons un protocole pour démontrer des techniques sûres de piégeage-vaccination-remise en liberté (TVR) pour les carnivores sensibles à la rage.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

La vaccination orale de la faune sauvage contre la rage par la distribution d’appâts chargés de vaccins est largement utilisée comme outil de gestion en Europe et en Amérique du Nord. Au cours des dernières décennies, des programmes fructueux ont ciblé d’importants réservoirs, notamment les coyotes, les renards, les chiens viverrins et les ratons laveurs, à des fins de prévention et de contrôle. Cependant, d’autres espèces (p. ex. les mouffettes) ou certains habitats (p. ex. urbains) peuvent être moins propices à la vaccination orale, ce qui nécessite l’examen de stratégies supplémentaires. Le piégeage-vaccination-remise à l’eau (TVR) est une méthode alternative qui implique l’utilisation de pièges vivants pour capturer les animaux sauvages ciblés. Les pièges sont répartis le long de grilles dans des habitats convenables et accessibles. Les animaux capturés sont identifiés par marquage, vaccinés par voie parentérale avec un vaccin commercial inactivé, sexés, âgés, pesés et relâchés sur le site de capture. Depuis 2001, une transmission inter-espèces du virus de la rage des chauves-souris aux mésocarnivores, tels que les mouffettes, a été détectée à Flagstaff, en Arizona. Au cours des deux dernières décennies, la TVR a été utilisée comme une méthode sûre et efficace pour prévenir et contrôler la rage lors de tels événements dans cette région.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Le virus de la rage (RABV) est une zoonose mortelle qui affecte la santé humaine à l’échelle mondiale. L’Organisation mondiale de la santé (OMS) rapporte qu’environ 59 000 personnes sont tuées chaque année, principalement dans les pays asiatiques et africains. De plus, 29 millions de personnes ont reçu une vaccination post-exposition chaque année après avoir été mordues par un animal. Les impacts sur les populations d’animaux sauvages ne peuvent pas être mesurés avec précision, mais les populations d’animaux sauvages peuvent connaître des taux élevés de mortalité lors d’événements d’épidémie lorsque les conditions géospatiales sont favorables. Rosatte a signalé que la population de ratons laveurs (Procyon lotor) sur 124 km² (48 miles carrés) a diminué d’environ 71% dans les mois qui ont suivi une épidémie de RABVsignalée 1.

Le contrôle et la gestion du RABV sont essentiels pour protéger la santé humaine, les animaux domestiques et les populations sauvages vulnérables. Étant donné que tous les mammifères sont sensibles au RABV, au fil du temps, le RABV s’est adapté à plusieurs espèces de mammifères distinctes, qui agissent maintenant comme des hôtes réservoirs. Ces espèces hôtes et leurs variantes associées habitent généralement des régions géographiques spécifiques. Dans ces régions, il y a effectivement propagation dans des hôtes non réservoirs (transmission interspécifique), mais dans la plupart des cas, les espèces infectées non réservoirs ne transmettent pas l’infection à d’autres individus de la population. Un changement d’hôte est un événement rare au cours duquel le virus a réussi à s’adapter à un nouvel hôte. Ces événements sont les plus dangereux, car ils peuvent influencer la propagation du RABV et saper les efforts de gestion du RABV mis en place2.

En Amérique du Nord, les efforts de gestion des RABV sont axés sur plusieurs espèces spécifiques de la faune terrestre. Les programmes de vaccination orale contre la rage (VHR) se sont avérés efficaces pour gérer la rage à grande échelle. Le VHR utilise le déploiement aérien et manuel de petits appâts contenant un vaccin oral RABV. Ces appâts sont répartis dans le paysage ; tout animal sauvage ciblé qui rencontre ces sachets reçoit le vaccin RABV par voie orale lorsqu’il les mord. L’utilisation du VHR a été essentielle dans la lutte contre le renard roux (Vulpes vulpes), le RABV en Europe3, le raton laveur RABV au Canada, et les coyotes (Canis latrans) et les ratons laveurs aux États-Unis4. Les appâts VHR se sont avérés être un outil précieux dans les programmes de gestion des VHR, car ils peuvent être mis en œuvre dans de vastes régions du paysage et réduire le nombre de personnel nécessaire dans les programmes de gestion. L’un des inconvénients du programme VHR est son inefficacité à vacciner avec succès les espèces de mouffettes. L’absorption insuffisante du vaccin à partir des sachets actuels de VHR semble être le recul actuel de l’efficacité du VHR dans les populations de mouffettes sauvages sur le terrain5.

Le système de capture-vaccination-remise en liberté (TVR) est un outil alternatif de gestion de la rage, qui est parfois utilisé en même temps que le VHR. L’objectif de TVR est d’augmenter le nombre de personnes vaccinées contre la rage dans une population. Parce qu’il nécessite un piégeage des animaux à forte intensité de main-d’œuvre et qu’il est plus coûteux que le VHR par kilomètre carré6, le TVR est effectué à une échelle beaucoup plus petite que le VHR et est souvent appliqué dans les zones urbaines où il existe de nombreux défis à relever7.

Aux États-Unis, le piégeage-vaccination-libération des mouffettes a été efficace à Flagstaff, en Arizona, à plusieurs reprises. Depuis 2001, Flagstaff a connu des épidémies répétées de la variante RABV de la grande chauve-souris brune (Eptesicus fuscus) dans les populations de mouffette rayée (Mephitis mephitis)8. De 2001 à 2011 (dans le cadre de plusieurs efforts distincts de TVR menés par le département de l’Agriculture des États-Unis, le Service d’inspection de la santé animale et végétale, les Services de la faune), 842 animaux ont été piégés, vaccinés et relâchés, dont 753 mouffettes rayées (Wildlife Services Capture Data). Chaque effort a stoppé les épidémies de rage de chauve-souris chez les mouffettes. En 2021, ce phénomène inter-espèces s’est reproduit lorsque la présence de mouffettes rayées enragées a été confirmée dans deux régions fortement urbanisées de Flagstaff. Les services de la faune ont immédiatement coordonné et lancé un programme TVR dans ces zones pour contenir l’épidémie en coopération avec le département des services de santé de Coconino et plusieurs agences de l’État. L’objectif de ce manuscrit est de démontrer en toute sécurité les étapes d’un programme TVR ciblant les mouffettes.

Le matériel requis pour le piégeage et la vaccination est le suivant :

Équipement de terrain TVR
Une liste détaillée de tous les équipements utilisés se trouve dans le fichier de la Table des matériaux ci-joint. Cependant, il faut clarifier les « pistons en bois » utilisés. Il s’agit d’appareils faits à la main composés d’une cheville en bois pour la poignée. Fixé à l’extrémité de la cheville est un morceau de contreplaqué coupé aux dimensions de l’ouverture du piège. Comme nous avons utilisé trois tailles de pièges différentes, nous avons construit des pistons des dimensions suivantes (6 pouces x 6 pouces, 8 pouces x 8 pouces, 10 pouces x 10 pouces) (figure 1). De plus, les couvercles de piège ne sont nécessaires que lorsque vous travaillez une mouffette. Le matériau de couverture du piège peut être de la toile, une vieille bâche ou une bâche en plastique jetable comme nous l’avons utilisé.

Équipement de protection individuelle (EPI)
Les équipes de terrain doivent avoir reçu des vaccins antirabiques pré-exposition avant de participer à tout programme TVR. Les EPI nécessaires au travail TVR comprennent des protections oculaires telles qu’un écran de sécurité jetable, des lunettes de laboratoire ou des lunettes de sécurité. Une combinaison jetable est la meilleure protection contre les nombreux composés volatils contenus dans le spray d’une moufette. (Remarque : le costume n’est pas requis pour travailler un raton laveur ou un renard). Les gants en nitrile jetables protègent contre divers produits chimiques et liquides et offrent une protection contre la salive et les fluides corporels contenant des agents pathogènes provenant d’animaux capturés.

Préparation et déploiement des pièges
Nous avons utilisé trois tailles de pièges de capture vivante : petit (7 pouces x 7 pouces x 24 pouces), moyen (9 pouces x 9 pouces x 26 pouces) et grand (10 pouces x 12 pouces x 32 pouces) (figure 1). Avant d’être déployés sur le terrain, les pièges doivent être soigneusement lavés à l’eau et au savon. Les pièges doivent être laissés à l’air libre pendant plusieurs semaines à plusieurs mois pour permettre l’élimination des odeurs. Les mécanismes de déclenchement sont testés et réparés si nécessaire avant le réglage. Des étiquettes d’avertissement indiquant « Vecteur de la rage » sont installées sur chaque piège avec du fil de fer. Un panneau d’avertissement supplémentaire est affiché à proximité de chaque piège ; Cet avertissement secondaire fournit des renseignements généraux sur le piégeage et les coordonnées du programme. Les pièges sont placés dans ou à proximité des voies de déplacement et des lieux d’alimentation des animaux. Il faut choisir des endroits qui minimisent le stress de l’animal, y compris les événements météorologiques et les perturbations causées par les activités humaines. Un lieu de piégeage établi reçoit un nom unique et l’emplacement est enregistré dans un appareil GPS portable.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

La manipulation et les soins sécuritaires des animaux démontrés dans ce protocole sont conformes aux normes mises en place par les services de la faune de l’APHIS.

1. Protocole de vaccination

  1. Préparation
    1. Enfilez l’EPI, y compris un écran facial/des lunettes de protection, des gants en nitrile et une combinaison.
    2. Retirez une paire d’étiquettes d’oreille numérotées de l’emballage pour marquer l’animal capturé. Notez les numéros d’étiquette d’oreille sur la fiche technique et placez-les dans un sac en plastique refermable étiqueté avec le numéro d’étiquette d’oreille pour les garder en sécurité et organisés jusqu’à ce qu’ils soient prêts à être déployés.
    3. Approchez-vous tranquillement et calmement du piège. Si une mouffette a été capturée, utilisez un morceau de bâche, de toile de jute ou de bâche en plastique pour couvrir le piège et vous protéger de tout spray de moufette.
    4. Enroulez soigneusement le couvercle autour du piège et utilisez une pince à ressort en acier pour le fixer au piège. Une couverture n’est pas nécessaire pour un raton laveur ou un renard.
    5. Positionnez soigneusement le piège sur son extrémité avec la porte du piège vers le haut (vers le ciel).
  2. Vaccination
    1. Une fois que l’animal capturé s’est déplacé au fond du piège, ouvrez la porte et placez le piston en bois à l’intérieur du piège sur le corps de l’animal.
    2. Appliquez une légère pression sur l’animal pour l’empêcher de se déplacer librement. Utilisez l’immobilisation mécanique pour vacciner et marquer l’animal en toute sécurité.
    3. Récupérez le vaccin antirabique de la glacière et prélevez la dose correcte (1 ml) dans la seringue de 3 ml. Placez les étiquettes d’oreille dans le sac à sandwich de l’animal dans un endroit facilement accessible.
    4. Tirez avec précaution le couvercle autour du piège pour localiser une région où administrer le vaccin.
    5. Insérez soigneusement l’aiguille dans le tissu musculaire de la patte arrière de l’animal et appuyez doucement sur le piston pour administrer le vaccin contre la rage.
    6. Jetez la seringue usagée dans un contenant pour objets tranchants.
    7. Positionnez le piège de manière à ce que les oreilles soient accessibles et placez une étiquette d’oreille en métal dans la rainure de positionnement de la pince.
    8. Positionnez l’extrémité ouverte de l’étiquette d’oreille sur l’oreille et appliquez une pression uniforme et douce jusqu’à ce que les poignées de la pince s’arrêtent. Répétez la séquence sur l’autre oreille.
    9. Avec le piège à son extrémité, retirez le piston, fermez la trappe et fixez l’extrémité du crochet de la balance à main au piège. Soulevez doucement le piège et maintenez-le stable. Notez le poids du piège et de l’animal sur la fiche technique.
    10. Posez le piège à plat et positionnez le couvercle de manière à ce qu’il ne soit plus enroulé autour du piège mais posé sur le dessus du piège.
    11. Soulevez doucement le piège du sol à l’aide de la poignée et placez le miroir à main sous le piège. À l’aide du reflet de l’animal dans le reflet du miroir, déterminez le sexe de l’animal. Enregistrement sur la fiche technique.
      REMARQUE : Un miroir n’est pas nécessaire pour sexer un renard ou un raton laveur.
    12. Estimez l’âge de l’animal adulte ou juvénile. Enregistrement sur la fiche technique.
    13. Terminez de remplir la fiche technique. Un presse-papiers en métal avec une zone de rangement protège au mieux les feuilles par mauvais temps et les maintient au même endroit pendant la séance de piégeage.
    14. Utilisez une pince métallique pour maintenir la trappe en position ouverte. Reculez lentement et laissez l’animal sortir du piège sans pression.
    15. Une fois que l’animal est sorti, pesez de nouveau le piège vide, en vous assurant que les clips et le couvercle de protection restent avec lui. Soustrayez ce poids du poids enregistré précédemment pour calculer le poids de l’animal.

Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nous avons mis en œuvre la technique de gestion du RABV au sol appelée TVR pour lutter contre les épidémies de RABV dans la ville de Flagstaff, en Arizona (Figure 2). L’objectif de ce projet n’était pas d’évaluer l’efficacité des TVR, mais plutôt d’apporter une réponse d’urgence pour vacciner les mésocarnivores à l’intérieur des zones de quarantaine RABV et minimiser les menaces pour la santé publique. D’août 2021 à décembre 2021, plusieurs mouffettes rayées malades ont été signalées au service de police de Flagstaff et au contrôle des animaux de Flagstaff ; ces mouffettes ont par la suite été euthanasiées et testées pour le RABV. Les moufettes mortes signalées par le public au cours de cette période ont également été soumises à des analyses. Au total, 16 mouffettes rayées ont été testées positives pour la grande chauve-souris brune RABV, 4 à l’ouest de Flagstaff et 12 à l’est de Flagstaff. En réponse, nous avons lancé des efforts de TVR au début de décembre 2021 et avons documenté le succès de la vaccination suivant. Dans l’ouest de Flagstaff, nous avons vacciné 27 mouffettes rayées, 3 renards gris et 4 ratons laveurs. De plus, nous avons recapturé des mouffettes rayées à 37 reprises. Dans l’est de Flagstaff, nous avons vacciné 106 mouffettes rayées et 2 ratons laveurs. De plus, nous avons recapturé des mouffettes rayées à 110 reprises. Les efforts de piégeage se sont poursuivis tout au long de l’année 2022. Au cours de cette période, aucune mouffette positive au RABV n’a été détectée dans l’une ou l’autre des zones de piégeage. En juillet et août 2022, 3 mouffettes enragées ont été détectées dans un quartier du sud de Flagstaff (figure 3). Nous avons immédiatement coordonné et lancé la TVR dans cette nouvelle zone, où nous avons vacciné 22 mouffettes rayées, 1 mouffette à nez plat et 10 ratons laveurs. Les animaux recapturés comprenaient 34 mouffettes rayées et 1 mouffette à nez plat. Le piégeage dans le sud de Flagstaff a commencé à la fin de juillet et s’est poursuivi tout au long du reste de l’année 2022. Au cours des mois suivants, aucune autre mouffette enragée n’a été détectée dans le sud de Flagstaff. De plus, 15 mouffettes ont été capturées par des entreprises locales de lutte antiparasitaire à l’extérieur des zones de TVR. Nous nous sommes coordonnés avec les entreprises de lutte antiparasitaire pour vacciner les animaux avant qu’ils ne soient relâchés.

Les programmes de gestion tels que la TVR sont efficaces pour lutter contre le RABV parce qu’ils réduisent le nombre d’individus sensibles présents dans une population d’animaux sauvages. Les résultats présentés ici (tableau 1) démontrent l’efficacité et le succès du protocole pour vacciner la faune sauvage contre le RABV. Comme nous l’avons mentionné, nous n’avons observé aucun nouveau cas de RABV après la mise en œuvre de la TVR. (Graphique 4) La TVR présente un avantage distinct de l’inoculation directe des animaux capturés. En revanche, les VHR ne peuvent pas garantir que les animaux sauvages ciblés utiliseront des appâts distribués au hasard. TVR garantit que chaque animal capturé sera inoculé avec le vaccin. Il est difficile d’évaluer l’efficacité de ces animaux vaccinés pour arrêter la propagation du RABV, mais lorsque nous tentons d’analyser les résultats subjectivement, nous pouvons déterminer que toute menace pour la santé publique est réduite par la présence de 190 mésocarnivores entièrement vaccinés dans ces zones urbaines.

AnnéeNuits-piègesTotal des capturesMouffettes rayéesRatons laveursRenards grisMouffette à nez plat
T (V)T (V)T (V)T (V)
2021 (déc.)18044 (4)0 (0)0 (0)0(0)
20225,343367346 (166)16 (16)3 (3)2 (1)
Total5,523371350 (170)16 (16)3 (3)2 (1)

Tableau 1 : Mésocarnivores vaccinés contre le RABV lors d’opérations TVR à Flagstaff, en Arizona, en 2021-2022. T = nombre total d’animaux capturés, V = nombre d’individus différents vaccinés et relâchés avec succès.

figure-results-1
Figure 1 : Dimensions des pièges et des pistons. (Gauche) Le plus petit piège 7 pouces x 7 pouces x 24 pouces, (milieu) moyen 9 pouces x 9 pouces x 26 pouces, (droite) et grand 10 pouces x 12 pouces x 32 pouces. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

figure-results-2
Figure 2 : Mouffettes positives au RABV, Flagstaff, Arizona, États-Unis, 2021-2022. Carte des mouffettes positives au RABV détectées dans la ville de Flagstaff, en Arizona, de 2021-2022. Les points rouges indiquent les endroits où des mouffettes positives au RABV ont été détectées. Les polygones bleus montrent les zones de piégeage de TVR à l’intérieur des limites de la ville. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

figure-results-3
Figure 3 : Zone de TVR de South Flagstaff. Carte aérienne d’une ligne de piégeage établie dans le sud de Flagstaff, en Arizona, en 2021. Les points rouges indiquent où les animaux positifs à la rage ont été détectés. Les points verts indiquent l’emplacement des pièges qui n’ont capturé aucun animal. Les points bleus indiquent les emplacements des pièges où un animal a été capturé, vacciné et relâché avec succès. Les chiffres blancs près des points bleus indiquent combien d’animaux ont été vaccinés à ce site de piège. Les points orange montrent des sites de piégeage qui n’ont recapturé que des animaux précédemment vaccinés. Le tableau de données montre combien d’espèces ont été capturées et vaccinées sur ce terrain de piégeage. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

figure-results-4
Figure 4 : Moufettes positives au RABV et vaccinations TVR par mois à Flagstaff 2021-2022. La ligne rouge représente les animaux positifs au RABV détectés à Flagstaff de juillet 2021 à décembre 2022. La ligne bleue montre le nombre d’animaux vaccinés de décembre 2021 à décembre 2022. Les chiffres au-dessus de la ligne bleue indiquent combien de mésocarnivores ont été vaccinés pour ce mois particulier. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Les Centers for Disease Control and Prevention estiment qu’environ 55 000 Américains reçoivent une prophylaxie post-exposition (PPE) chaque année, le coût moyen de chaque exposition étant d’environ 3 600 $9. Les principaux impacts économiques associés à la rage sont le coût de la gestion de la maladie et le traitement pour prévenir les décès humains après l’exposition. La clé de la réduction des problèmes de santé et des impacts économiques est la vaccination réussie des espèces réservoirs terrestres10. Un programme de TVR est un outil de gestion permettant d’intervenir lors d’épidémies menaçant la santé humaine, les animaux domestiques et la faune. La TVR est la plus efficace pour lutter contre les épidémies de rage à petite échelle, car elle est très coûteuse et demande beaucoup de main-d’œuvre à utiliser à de plus grandes échelles de paysage6. Malgré ces inconvénients, la TVR est un outil précieux de gestion de la rage qui s’est avéré efficace à plusieurs reprises pour arrêter la propagation de la maladie en vaccinant les espèces réservoirs11,12. Le protocole TVR démontré dans ce manuscrit est une réponse aux épidémies de rage dans la ville de Flagstaff, en Arizona, qui a connu des épidémies répétées de RABV brun dans les populations de mouffettes rayées depuis 20018. Ce programme de TVR était basé sur une étude TVR menée par Rosatte dans laquelle des mouffettes et des ratons laveurs ont été vaccinés par voie intramusculaire contre la rage dans la région métropolitaine de l’Ontario13. Ce protocole portait sur la façon de vacciner en toute sécurité et avec succès les mouffettes rayées et autres mésocarnivores capturés.

L’une des étapes les plus importantes de ce protocole est d’immobiliser l’animal en toute sécurité. L’animal a besoin d’être en sécurité, mais la force d’immobilisation ne doit en aucun cas nuire à l’animal. Une bonne immobilisation permet de s’assurer que l’animal reçoit une dose complète du vaccin (1 ml) en empêchant l’animal de s’éloigner pendant l’injection. De plus, un animal en sécurité est incapable de mordre et de griffer les outils utilisés pour installer les étiquettes d’oreille. Cela permet de réduire le stress imposé à chaque animal en raccourcissant le temps nécessaire au traitement de chaque animal.

L’un des défis que nous avons rencontrés a été de vacciner et d’étiqueter les mouffettes capturées dans les grands pièges (10 pouces x 12 pouces x 32 pouces). Ce processus peut être difficile, car il donne aux moufettes plus d’espace pour s’éloigner des côtés du piège et hors de portée des outils. Ce problème était encore plus évident lorsque des mouffettes juvéniles étaient capturées. Ces situations ont nécessité une certaine modification de notre technique de traitement. Dans ces situations, nous utiliserions le piston en bois pour les petits pièges afin de piéger la moufette dans un coin du piège et de la traiter par le haut à travers l’ouverture de la porte. Cela a permis de traiter les mouffettes, mais cela s’est avéré être un défi.

Nous avons documenté les captures de mouffettes dans les pièges de trois tailles. Les captures de ratons laveurs ont été documentées dans des pièges de taille moyenne et grande, et les renards gris ont été capturés exclusivement dans les grands pièges. Certains animaux ont tendance à s’habituer aux pièges et à être recapturés fréquemment. Le déplacement constant des pièges vers de nouveaux emplacements permet de minimiser les recaptures et donne la possibilité de capturer et de vacciner de nouveaux individus dans le paysage.

L’une des limites de la TVR est la taille de la zone qui peut être traitée efficacement. Dans les opérations de lutte contre la rage à grande échelle, la TVR est souvent utilisée conjointement avec le VHR pour couvrir de grandes zones du paysage. La TVR, en elle-même, couvre une zone beaucoup plus petite et est mieux utilisée dans les zones urbaines comme réponse d’urgence rapide, ou dans notre cas, pour lutter contre les épidémies de rage dans les populations de mouffettes. Les efforts de TVR peuvent également s’avérer coûteux, avec des estimations de 625,00 $ par km2 traité12. Ces coûts peuvent varier considérablement, car les grandes surfaces nécessitent plus de personnel et d’équipement, ce qui augmente les coûts.

Des travaux antérieurs ont déterminé que l’inoculation de 1 mL de vaccin antirabique était efficace pour stimuler la production d’anticorps antirabiques chez les mésocarnivores14. Il existe plusieurs articles basés sur TVR qui mentionnent la vaccination des animaux 1,12,13,14, mais nous n’avons trouvé aucun article publié offrant une explication détaillée du protocole d’administration du vaccin. Par conséquent, nous n’avons pas pu comparer le protocole proposé dans ce manuscrit aux méthodes existantes. Le matériel et les méthodes partagés dans ce manuscrit permettront aux équipes de terrain d’administrer des vaccinations précises et efficaces aux populations sauvages. Ce protocole s’est avéré efficace et continuera d’être utilisé dans les efforts actuels et futurs de TVR.

Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer. La référence dans ce site à un produit, un processus ou un service commercial spécifique, ou l’utilisation d’un nom commercial, d’une entreprise ou d’une société est fournie à titre d’information et de commodité pour le public et ne constitue pas une approbation, une recommandation ou une faveur de la part du ministère américain de l’Agriculture.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Les auteurs tiennent à remercier les services de santé du comté de Coconino, en particulier Sabrina Kelley, d’avoir facilité la mise en œuvre de la quarantaine contre la rage. De plus, les auteurs tiennent à remercier Dennis Slate et Richard Chipman pour avoir animé l’émission TVR et Tad Theimer pour ses conseils sur le piégeage. Le projet a été entièrement financé par le ministère américain de l’Agriculture, le service d’inspection de la santé animale et végétale, les services de la faune et le programme national contre la rage.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
#8 x 1-1/2 po. R4 Multi-Purpose Star Drive Flat Head Screw (110 par paquet)Home Depot96085Utilisé pour fixer la base à la tige de poussée de l'outil d'aspiration
#8 x 1-1/4 po. #2 Phillips, Vis à tête plate en dôme pour bois (Paquet de 100)Home DepotSD8X1.25-RUtilisé pour fixer le panneau de piège à la cheville
2  po. x 2 po. x 8 pi. Planche de lattes de bois Furring StripHome Depot75800593Tige de poussée pour l'outil d'aspiration
Aiguille 20 G  x 1,5 poKendall monoject8881Utilisée pour vacciner l'animal
Seringue 3 mLKendall monoject513934Utilisée pour vacciner l'animal
Marteau de perçage en acier 48 oz.Home DepotMRF3LBUtilisé pour planter le panneau de piège dans le sol
Lame de scie circulaire OSB/contreplaqué 7-1/4 po. x 140 dentsHome DepotA07140ALame nécessaire pour la scie circulaire pour couper le contreplaqué
Planche à épingles en aluminium - Ouverture supérieure, format LettreULINES-20173Utilisée pour enregistrer et conserver les fiches de données
Scie circulaireHome DepotCSB144LZKUtilisée pour couper le bois pour fabriquer l'outil d'aspiration
Comprimé froid - 6 ozULINES-9902Utilisé pour réguler la température du vaccin
Savon à vaisselleULINES-9975Utilisé pour nettoyer les pièges
Vêtement de protection Dupont Tyvek ULINES-11495Utilisé pour protéger le personnel des éclaboussures de mouffette. La taille sera dépendante de la taille du personnel. Vous pouvez également utiliser le combiné sans capuche S-9636.
Unité GPS portableGarminETrex 32XUtilisé pour enregistrer l'emplacement du piège et des animaux capturés
Miroir portable 6 po. x 7 po.WalmartEquateUtilisé pour déterminer le sexe de l'animal
Lampe frontaleHome DepotHDB32EHPour vérifier les pièges avant le lever du soleil
Pot de beurre de cacahuèteWalmartPot de 40 ozAppât pour piéger les mouffettes. 
Piège vivant pour mouffettesTomahawk103Utilisé pour attraper les mouffettes
Piège vivant pour mouffettes et autres carnivoresTomahawk205; 602Utilisé pour attraper les mouffettes et autres carnivores
Gants en nitrileULINES-14179Utilisé pour protéger le personnel des agents pathogènes. La taille et l'utilisation de gants poudrés ou non poudrés dépendront du choix du personnel.
Kit de perceuse/visseuse 18 V sans fil ONE+ 3/8 po avec batterie de 1,5 Ah, chargeur, outils manuels, accessoires et sac d'outilsHome DepotPCL201K1SBUtilisé pour assembler les panneaux sur les piquets
Stylo à bille Paper Mate Profile 8 paquets Pointe grasse noire de 1,4 mmStaples2095460Utilisé pour écrire sur les fiches de données
Panneau de piège antirabique 9 po. x 12 po.FedEx OfficeNAAttaché au piquet près de l'emplacement du piège
Vaccin contre la rageBoehringer IngelheimImrab®1 mL par animal; https://www.boehringer-ingelheim.com/animal-health/companion-animals-products/rabisin-imrab#:~:text=Rabisin%C2%AE%20%2F%20Imrab%C2%AE%20is,signs%20due%20to%20rabies%20infection.
Panneau d'avertissement contre la rage 4 po. x 6 po.FedEx OfficeNAAttaché au haut du piège
Étiquette d'oreille pour raton laveur et renardNational Band and Tag Company1005-3Étiquettes d'oreilles pour ratons laveurs et renards
Étiquette d'oreille pour raton laveur et renardNational Band and Tag Company1005s3Pince à étiquettes d'oreilles pour attacher les étiquettes d'oreilles aux ratons laveurs et renards
Refroidisseur de repas à lunch 6 packs4imprint.com155149Utilisé pour transporter le vaccin sur le terrain
Rouleau de film plastique 12 pi. x 400 pi.3M6723Utilisé pour calmer l'animal et protéger le personnel
Lunettes de protection ou visière jetableULINES-24607Utilisé pour protéger le visage du personnel contre les éclaboussures de mouffette et les agents pathogènes.
Contreplaqué brut (Commun: 1/2 po. x 2 pi. x 4 pi.; Réel: 0,451 po. x 23,75 po. x 47,75 po.)Home Depot300896Base pour l'outil d'aspiration
Balance 55 lb x 0,5 ozBrecknellModèle 816965007486Utilisé pour peser la cage et l'animal
Stylo permanent Sharpie à pointe fine noire 1 paquetAce Hardware35010Utilisé pour étiqueter les sacs à sandwich
Conteneur à aiguilles - 1 pinteULINES-15307Pour contenir les seringues usagées
Étiquette d'oreille pour mouffetteNational Band and Tag Company1005-1Étiquettes d'oreilles pour mouffettes
Applicateur d'étiquette d'oreille pour mouffetteNational Band and Tag Company1005s1 Pince à étiquettes d'oreilles pour attacher les étiquettes d'oreilles aux mouffettes
Eau du robinetNAUtilisé pour nettoyer les pièges
Fil de ligne de piègeMinnesota Trap Line Products, INC11GA-01Fil de piège pour fixer le panneau au piège https://www.minntrapprod.com/Snares/departments/577/
Bouteilles Ziploc pour sandwichULINES-23777Utilisé pour contenir les étiquettes d'oreilles

References

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Rosatte, R., et al. The elimination of raccoon rabies from Wolfe Island, Ontario: animal density and movements. Journal of Wildlife Diseases. 43 (2), 242-250 (2007).
  2. Marston, D. A., et al. Genetic analysis of a rabies virus host shift event reveals within-host viral dynamics in a new host. Virus Evolution. 3 (2), vex038(2017).
  3. Freuling, C. M., et al. The elimination of fox rabies from Europe: determinants of success and lessons for the future. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 368, 20120142(2013).
  4. Slate, D., et al. Oral rabies vaccination in North America: opportunities, complexities, and challenges. PLoS Neglected Tropical Diseases. 3 (12), e549-e549 (2009).
  5. Wohlers, A., Lankau, E. W., Oertli, E. H., Maki, J. Challenges to controlling rabies in skunk populations using oral rabies vaccination: A review. Zoonoses and Public Health. 65 (4), 373-385 (2018).
  6. Sterner, R. T., Meltzer, M. I., Shwiff, S. A., Slate, D. Tactics and economics of wildlife oral rabies vaccination, Canada and the United States. Emerging Infectious Diseases. 15 (8), 1176-1184 (2009).
  7. Elmore, S. A., Chipman, R. B., Slate, D., Huyvaert, K. P., VerCauteren, K. C., Gilbert, A. T. Management and modeling approaches for controlling raccoon rabies: The road to elimination. PLOS Neglected Tropical Diseases. 11, e0005579(2017).
  8. Kuzmin, I. V., et al. Molecular inferences suggest multiple host shifts of rabies viruses from bats to mesocarnivores in Arizona during 2001-2009. PLoS Pathogens. 8 (6), e1002786(2012).
  9. Shwiff, S. A., et al. Direct and indirect costs of rabies exposure: a retrospective study in southern California (1998-2002). Journal of Wildlife Diseases. 43 (2), 251-257 (2007).
  10. Shwiff, S. A., Elser, J. L., Ernst, K. H., Shwiff, S. S., Anderson, A. M. Cost-benefit analysis of controlling rabies: placing economics at the heart of rabies control to focus political will. OIE Scientific and Technical Review. 37 (2), 681-689 (2018).
  11. Rosatte, R. C., Power, M. J., Machines, C. D., Campbell, J. B. Trap-vaccinate-release and oral vaccination for rabies control in urban skunks, raccoons and foxes. Journal of Wildlife Diseases. 28 (4), 562-571 (1992).
  12. Slavinski, S., et al. Trap-vaccinate-release program to control raccoon rabies, New York, USA. Emerging Infectious Diseases. 18 (7), 1170-1172 (2012).
  13. Rosatte, R. C., et al. The control of raccoon rabies in Ontario Canada: Proactive and reactive tactics, 1994-2007. Journal of Wildlife Diseases. 45 (3), 772-784 (2009).
  14. Rosatte, R. C., Howard, D. R., Campbell, J. B., Maclnnes, C. D. Intramuscular vaccination of skunks and raccoons against rabies. Journal of Wildlife Diseases. 26 (2), 225-230 (1990).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Trap Vaccinate ReleaseRabies VaccinationSkunk ImmunizationWildlife Rabies ControlParenteral VaccinationEar TaggingRabies VirusMesocarnivore ManagementPopulation Density EstimationPersonal Protective Equipment

Related Articles