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Article de méthode

Méthode d’entraînement en force statique pour les souris diabétiques de type 2

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DOI :

10.3791/65556

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29 mars 2024

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Ce protocole fournit une méthode simple pour fabriquer des équipements d’entraînement statique pour les souris. L’appareil maintient la contraction isométrique musculaire des membres des souris afin de vérifier l’effet d’intervention de l’exercice traditionnel sur le diabète de type 2 (DT2) et fournit une nouvelle thérapie par l’exercice pour le traitement clinique du DT2.

Résumé

Le traitement du diabète sucré de type 2 (DT2) est une difficulté majeure pour améliorer la santé des patients. L’exercice est l’une des principales interventions pour le DT2. L’entraînement en force statique est l’une des principales formes de sports traditionnels en Chine. La recherche montre que l’entraînement en force statique est une méthode clinique efficace pour l’intervention contre le DT2, mais il n’existe aucun dispositif expérimental adapté à l’entraînement statique chez la souris. L’une des difficultés du passage de la recherche clinique à la recherche fondamentale est de concevoir des dispositifs expérimentaux adaptés. Afin d’étudier plus en détail le mécanisme de l’intervention d’entraînement statique dans le DT2, une méthode simple de fabrication d’un dispositif d’entraînement statique pour les souris est présentée dans cet article. Cet appareil présente les avantages d’un fonctionnement simple, d’un matériau bon marché et d’une grande faisabilité. Des études antérieures menées dans le cadre de ce protocole ont montré que l’entraînement statique peut réduire efficacement la glycémie et améliorer la fonction mitochondriale des cellules musculaires squelettiques chez les souris T2DM. L’objectif de l’introduction de ce dispositif est de promouvoir la recherche sur le mécanisme de l’exercice traditionnel dans l’intervention du DT2 et de jeter les bases de l’intervention quantitative de l’exercice.

Introduction

Le diabète sucré de type 2 (DT2) est une maladie chronique caractérisée par une résistance à l’insuline et un dysfonctionnement des cellules β qui constitue une menace importante pour la santé mondiale1. L’exercice est une intervention cruciale dans la prise en charge du diabète de type 2. De nombreuses études ont montré que les méthodes d’exercice traditionnelles chinoises, telles que le Tai Chi et le Ba Duan Jin, améliorent considérablement la glycémie et la qualité de vie des personnes atteintes de DT2 2,3,4,5. Pour exécuter ces mouvements, l’entraîneur doit maintenir une position stable du corps et des articulations pendant un certain temps. La position statique est maintenue en effectuant des contractions musculaires statiques, ce que l’on appelle communément la force statique6.

Cependant, le mécanisme d’intervention de l’entraînement en force statique dans le DT2 n’a pas été clarifié. Pour répondre à cette question, l’expérimentation animale est indispensable. Pendant les exercices isométriques, les muscles sont activés, maintiennent une longueur constante et atteignent en toute sécurité une tension maximale7. Dans les expériences d’entraînement à la force statique, l’animal d’essai doit effectuer des contractions musculaires isométriques et maintenir cet état de contraction musculaire. La mise en œuvre d’un entraînement de force statique sur des souris, des rats et d’autres animaux de laboratoire est devenue un gros problème dans la recherche. Tout d’abord, les animaux ont du mal à obéir aux ordres et à contracter leurs muscles au besoin. Deuxièmement, il est difficile pour l’animal de maintenir une position stable sous la résistance, et l’objectif de la contraction musculaire isométrique ne peut pas être atteint. Tout en laissant les animaux s’entraîner au besoin, il est important de répondre aux préoccupations liées au bien-être des animaux, telles que le soulagement du stress et de l’anxiété, la minimisation de la douleur et l’amélioration des conditions générales. Ce protocole se rapporte à un modèle d’entraînement statique pour les rats 8,9, et nous présentons ici un dispositif simple pour l’entraînement statique des souris. Lorsque les pattes arrière des souris sont levées, leurs muscles abdominaux se contractent en raison du réflexe de redressement, les pattes avant saisissent la barre transversale à l’avant, puis les membres avant et arrière se contractent contre la gravité. Les souris ne peuvent pas bouger après avoir saisi la barre courte, ce qui fait que leurs muscles sont dans un état de contraction isométrique.

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Protocole

Toutes les expériences sur les animaux ont été approuvées par le Comité de soin et d’utilisation des animaux de l’Université de médecine chinoise de Nanjing (autorisation n° 202209A033). Des souris mâles C57BL/6J en bonne santé, âgées de 8 semaines et pesant entre 20 ± 4 g ont été sélectionnées. Les souris ont été logées dans un cycle lumière/obscurité de 12 heures à une température de 20-22 °C, et une humidité relative de 45 % à 50 % a été maintenue. Les animaux mangent et boivent librement.

1. Etablissement d’un modèle murin de DT2

  1. Nourrissez d’abord les souris pendant 1 semaine avec un régime régulier et laissez les souris s’adapter au nouvel environnement du centre animalier. Après 1 semaine, fournissez un régime riche en graisses (composition de l’alimentation : 20,0% de saindoux, 10,0% de saccharose, 2,5% de cholestérol, 1,0% de cholate, 66,5% de régime conventionnel) pendant une période de 4 semaines.
  2. À partir du 1erjour de la 5ème semaine, injecter par voie intrapéritonéale à des souris une solution de streptozotocine à une dose de 35 mg/kg chaque jour pendant 3 jours consécutifs. Préparez 1 mL de solution de streptozotocine avec 10 mg de poudre de streptozotocine, avec 0,1 M/L de tampon de citrate de sodium comme solvant.
    REMARQUE : L’injection doit être terminée dans les 30 minutes suivant la préparation de la solution et la solution doit être conservée à l’abri de la lumière pendant l’utilisation.
  3. Testez au hasard la glycémie le jour 5 et le jour 7 après l’administration de la première injection de solution de streptozotocine. Les animaux dont la glycémie est supérieure à 16,7 mM/L sont considérés comme des modèles de DT2 réussis.
  4. Commencer l’intervention d’entraînement le jour 8 après la première injection de solution de streptozotocine.

2. Groupage et traitement chez la souris

  1. Divisez les souris DT2 en un groupe modèle, un groupe d’entraînement et un groupe de metformine à l’aide de la méthode de la table de nombres aléatoires, avec 6 souris dans chaque groupe.
  2. N’effectuez aucune intervention pour le groupe modèle.
  3. Broyer les comprimés de metformine en poudre et les dissoudre dans de l’eau pure. Donnez de la metformine au groupe metformine par gavage à une dose de 200 mg / kg, une fois par jour, pendant 3 semaines.
  4. Laissez le groupe d’entraînement faire 30 minutes d’entraînement de force statique, une fois par jour, 5 jours par semaine, pendant 3 semaines. La formation a lieu du lundi au vendredi après-midi.
  5. Attribuez au hasard 6 souris non T2DM comme groupe témoin. Ces souris ne subissent pas de modélisation et d’intervention.

3. Fabrication de l’appareil de musculation statique

  1. Préparez un panneau acrylique transparent de 5 mm d’épaisseur aux dimensions de 20 cm x 20 cm. Utilisez une planche transparente afin d’observer l’entraînement des souris.
  2. Procurez-vous des bâtons en bois d’un diamètre de 3 mm et un rouleau de ruban adhésif d’une largeur de 1 cm. À l’aide d’un coupe-papier, coupez deux bâtonnets de 4 cm de long et quatre bâtonnets de 1 cm de long.
  3. Fixez deux bâtonnets d’une longueur de 1 cm chacun aux extrémités d’un bâton d’une longueur de 4 cm à l’aide de ruban adhésif (Figure 1A). Les bâtons courts doivent être fixés du même côté que le bâton long.
  4. Placez la planche transparente sur une surface plane et fixez deux jeux de bâtonnets courts de 1 cm à la plaque à l’aide d’un pistolet à colle chaude. Assurez-vous que les bâtonnets en bois de 4 cm n’entrent pas en contact avec la planche. Laissez un espace de 2 cm entre le long bâton et la planche pour maintenir les souris en place (Figure 1B). Laissez les deux longs bâtons être alignés et parallèles, avec une distance de 6 cm entre eux (Figure 1C).

figure-protocol-1
Figure 1 : Assemblez et fixez les bâtonnets au panneau transparent. (A) Collez le bâton de 1 cm aux deux extrémités du bâton de 4 cm. (B) Utilisez un adhésif thermofusible pour relier le bâton de 1 cm de long et le panneau transparent, et la longueur de l’espace est de 2 cm. (C) Deux bâtonnets de 4 cm espacés de 6 cm. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

4. Entraînement de la force statique chez la souris

  1. Coupez deux morceaux de fil de laine de 15 cm de long. À l’aide d’un noeud coulant, attachez un morceau de fil de laine sur la partie supérieure de la cheville de la souris (figure 2A).
    REMARQUE : La corde élastique ne peut pas fixer la posture des souris, et la corde de chanvre portera les chevilles des souris, donc un fil de laine inélastique mais doux est choisi ici.
  2. Placez la planche horizontalement sur la table avec les bâtons vers le haut. Appuyez soigneusement sur la souris entre deux longs bâtons, en positionnant sa tête et sa queue pour qu’elles s’alignent avec les espaces sous les bâtons.
  3. Passez le fil dans l’espace à l’extrémité de la queue. Ensuite, ajustez le fil jusqu’à ce que les chevilles de la souris s’ajustent parfaitement contre le bord du bâton.
  4. Fixez le fil de laine avec du ruban adhésif (Figure 2B). L’extrémité du fil de laine doit être sécurisée, sinon la souris grimpera sur la laine tombée. Tirez la laine aussi fort que possible ou la souris se libérera facilement.
  5. Retournez le panneau transparent. Placez 2 boîtes de la même hauteur (15-20 cm de haut) à chaque extrémité de la planche transparente. Placez la planche horizontalement à une certaine hauteur. La boîte est située à chaque extrémité de la tête et de la queue de la souris. S’il est trop élevé, l’expérimentateur ne pourra pas le manipuler facilement ; S’il est trop bas, la souris peut toucher le dessus de la table.
  6. Une fois le plateau renversé, la souris se suspend à l’envers. En raison du réflexe de redressement, les souris courbent leur abdomen et étendent leurs membres antérieurs pour saisir leurs membres postérieurs ou leurs bâtons. À ce stade, placez un bâton de 20 cm devant la souris et guidez-la soigneusement pour saisir le bâton avec ses membres antérieurs. Répétez le processus jusqu’à ce que la souris devienne capable de saisir le stick mobile.
  7. Utilisez le bâton pour déplacer le membre antérieur de la souris vers un autre bâton de 4 cm sur la planche transparente. Ajustez constamment l’angle du bâton pour permettre aux souris de saisir activement le bâton fixe de 4 cm sur la planche (Figure 2C).
  8. Répétez l’étape précédente pendant que la souris relâche la patte avant jusqu’à ce que la souris soit épuisée. Après 30 minutes, la plupart des rats étaient incapables de soulever le haut de leur corps et de saisir le bâton avec leurs membres antérieurs.
    REMARQUE : Avant de mettre en œuvre l’intervention, une semaine d’entraînement à l’habituation sur les souris est nécessaire. La durée de l’entraînement initial est de 10 minutes par jour, qui doit ensuite être augmentée de 5 minutes chaque jour jusqu’à atteindre un total de 30 minutes par jour.
  9. Après 30 min d’entraînement, relâchez immédiatement la souris et démêlez la laine pour éviter les pieds rouges et enflés causés par un bandage prolongé.
    1. Si des lésions cutanées apparaissent sur la cheville des souris après l’entraînement, arrêtez de dresser les souris et consultez un vétérinaire jusqu’à ce que la cheville soit en bonne santé.
    2. Certaines souris peuvent parfois réussir à se libérer grâce à une lutte intense pendant l’entraînement. Les souris se débattent lorsque leurs pattes arrière n’étaient pas fermement fixées. Pour éviter les blessures dues à la lutte, observez les souris tout au long de l’entraînement. Lorsqu’il est constaté que les membres postérieurs ne sont pas fermement fixés ou que les souris commencent à se débattre, desserrez les souris et fixez-les à nouveau.
      REMARQUE : Des expériences antérieures ont montré que le fait de suspendre des souris à l’envers pendant 30 minutes par jour, 5 jours par semaine, ne provoque pas d’usure de la cheville, à condition qu’elles soient libérées en temps voulu10. Les souris peuvent apprendre et s’habituer à l’entraînement en 1 à 3 séances.

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Figure 2 : Méthode de fixation chez la souris. (A) Attachez le haut de la cheville avec un nœud coulant. (B) L’extrémité de la corde est passée dans l’espace et tirée fermement, puis fixée avec du ruban adhésif. (C) Entraînement de la force statique chez la souris. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

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Résultats

En suivant le protocole ci-dessus, les membres postérieurs de la souris sont fixes et les membres antérieurs saisissent de manière autonome la barre avant. L’amplitude de mouvement étroite maintient la souris dans une position relativement fixe. Il peut être confirmé que les muscles des souris se contractent en touchant les muscles de leur abdomen et de leurs pattes. Ceci est cohérent avec la nécessité de l’état de contraction musculaire isométrique dans l’entraînement de force statique. L’entraînement des souris selon l...

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Discussion

L’entraînement en force statique peut réduire l’accumulation de graisse, aider à perdre du poids et augmenter le métabolisme. De plus, il améliore l’expression de PGC-1α et la biogenèse mitochondriale dans les cellules musculaires squelettiques, ce qui entraîne une amélioration du métabolisme du glucose chez les souris atteintes de diabète sucré de type 2 et une réduction conséquente de la glycémie11. Pour confirmer l’impact et le mécanisme de l’entraînement statique sur le...

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par le deuxième lot de projets de recherche scientifique spéciaux de la Base nationale de recherche clinique de la médecine traditionnelle chinoise (JDZX2015127, basée sur l’hôpital provincial de médecine chinoise de l’Anhui).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
PanneauxPanneaux acryliques transparents de 5 mm d’épaisseur. La taille doit être supérieure à 20 cm& fois ; Boîtes de 20cm
Deuxboîtes de la même hauteur (15 ~ 20cm)
ELISA KITH203-1-2Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute
PistoletÉvitez de toucher la tête du pistolet pour provoquer des brûlures
CouteauxAucune exigence particulière
Pastilles1396309
ciseaux SigmaPas d’exigence particulière
BâtonsPlusieurs bâtons en bois d’un diamètre de 3 mm
StreptozotocineS0130Sigma
TapePas d’exigence particulière
Microscope électronique à transmission (TEM)HT7700HITACHI  ;
acryliques à colle thermofusible de metformine

Références

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